Возможности применения метода заводского воспроизводства клариевого сома Clarias gariepinus инъецированием сурфагоном

Евгений Пиганов

Возможности применения метода заводского воспроизводства клариевого сома Clarias gariepinus инъецированием сурфагоном

Для воспроизводства клариевого сома в малых УЗВ нужно правильно построить биотехнологический процесс по выращиванию, нагулу и подготовке производителей к искусственной стимуляции гормонами, например сурфагоном и раунатином. Он показал, что инъецируемые производители дали отклик на препарат и успешно отдали половые продукты. Можно инъецировать только сурфагоном, но как показала практика, суспензия с раунатином значительно повышает всасывание в кровь сурфагона и отдача икры и молок происходит легче.

Рыбное хозяйство. Аквакультура

Диссертации

Вуз: Казанский государственный энергетический университет

ID: 5f2e5f00cd3d3e0001b4f2de

UUID: 2b214680-bb7d-0138-1474-0242ac180006

Язык: Русский

Опубликовано: больше 4 лет назад

Просмотры: 168

13.36

Евгений Пиганов

Казанский государственный энергетический университет

Комментировать 0

Рецензировать 0

Скачать - 4,2 МБ

Поделиться работой

МИНИСТЕРСТВО НАУКИ И ВЫСШЕГО ОБРАЗОВАНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «КАЗАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ЭНЕРГЕТИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ» (ФГБОУ ВО «КГЭУ») Институт теплоэнергетики (ИТЭ) Кафедра «Водные биоресурсы и аквакультура» (ВБА) Выпускная квалификационная работа на тему: «Возможности применения метода заводского воспроизводства клариевого сома Clarias gariepinus инъецированием сурфагоном» Работу выполнил магистр 2 курса Пиганов Евгений Сергеевич Научный руководитель: Зав. каф. ВБА, проф. д.б.н. Калайда Марина Львовна

2 Казань, 2020 Оглавление Аннотация………………………………………………………………… 7 ….. Введение…………………………………………………………………… 8 … Глава 1. Клариевый сом как новый перспективный объект индустриального 11 рыбоводства……………………………………………… 1.1.Гибридизация 16 сомов………………………………………………. Глава 2. Заводской метод воспроизводства рыб в индустриальном рыбоводстве с использованием новых 19 гонадотропных препаратов……… 2.1. Половые циклы рыб как основа применения заводских методов 20 воспроизводства……………………………………………………. 2.2. Заменители гормона гипофиза и перспективы их использования…………………………………………………………… 24 ….... 2.2.1.Сурфогон как перспективный ганадотропный 33 препарат ……. 2.3. Биотехнологии воспроизводства сома……………... Глава 3.Материал и клариевого 35 методы 40 исследования…………………………………. 3.1.Характеристика экспериментальной 40 УЗВ………………………. 3.2. Характеристика рыб………………………. Глава 4. Отработка экспериментальных 48 технологических приемов

3 воспроизводства клариевого сома заводским методом на базе УЗВ кафедры ВБА ФГБОУ ВО 51 «КГЭУ»…………………………………………………………………… 4.1. Характеристика пригодных для воспроизводства особей и технология преднерестового 51 содержания…………………………………... 4.2. Оценка возможности использования суспензии сурфагона для инъецированияклариевых 52 сомов…………………………………………… 4.3.Характеристики половых продуктов 61 рыб……………………….. 4.3.1. Характеристика икры плодовитости самок…... 4.3.2. Характеристика полученной семенников и и 61 количества 64 молок самцов…… Глава 5. Рекомендации по воспроизводству клариевых сомов для выращивания УЗВ………………………………………………….. Выводы в малых 69 70 ……………………………………………………………………….. Список использованной литературы 71 ……………………………………….. Приложения………………………………………………………………. 80 ......

4 Аннотация выпускной квалификационной работы на тему: «Возможности применения метода заводского воспроизводства клариевого сома Clarias gariepinus инъецирование мсурфагоном.» Автор: студент гр. АВБм-1-18 Пиганов Е.С. Научный руководитель: зав. Каф ВБА проф. д.б.н. Калайда М.Л. Работа изложена на 78 страницах основного текста, содержит 30 рисунков, в том числе два чертежа, 6 таблиц, 73 наименования источников используемой литературы. Работа состоит из ведения, пяти глав, выводов, списка используемой литературы и приложения. Целью выпускной являетсяисследование заводского квалификационной возможности воспроизводства применения клариевого сома работы метода Clarias gariepinus инъецированиемсурфогоном. Проведен анализ литературных российских источников по и зарубежных биологическим и экологическим характеристикам клаевого сома, методам искусственного воспроизводства этих ценных видов рыб. Особое внимание уделено методам гибридизации сомов. Описана биологическая характеристика клариевого сома в условиях его содержания в УЗВ кафедры Водные биоресурсы и аквакультура ФГБОУ ВО «КГЭУ». Рассмотрены особенности выращивания клариевого сома в УЗВ. Проведен ряд экспериментов по искусственному воспроизводству клариевого сома на базе УЗВ кафедры ВБА

5 ФГБОУ ВО «КГЭУ», включая инъецированние суспензией сурфагона. Проведена оценка эффективности воспроизводства. Даны рекомендации по воспроизводству клариевых сомов при их содержании в УЗВ.

6 Введение Рыбоводство относится к наукоемкой отрасли сельского хозяйства, потребление составляет всего рыбной 11,1-11,3 кг на продукции человека в в России год, что значительно ниже медицинской нормы и в 2,5 раза меньше, чем в странах Европы (Гаврилов, 2006; Мамонтов, 2006). Увеличение выращивания рыбы традиционными методами, основанными преимущественно на экстенсивном использовании природных ресурсов, имеет ряд определенных ограничений. Лимитирующими факторами выступают земельные и водные ресурсы, а также их экологическое состояние. Так, уже в конце восьмидесятых годов прошлого века стало очевидно, что дальнейшее наращивание прудовых площадей нерентабельно, а значительное увеличение производства рыбной продукции возможно только благодаря внедрению современных технологий. В связи с этим, во всем мире бурное развитие получила индустриальная аквакультура, основанная на интенсивных технологиях с использованием высокой плотности посадки рыбы, что значительно увеличивает ее выход с единицы объема или площади.(Бурлаков,1997) Высшей ее формой является выращивание рыбы в установках с замкнутой системой водообеспечения (УЗВ), при эксплуатации которых достигается полная независимость производственного процесса от природно-климатических условий, времени года, его цикличность и непрерывность, гибкость в регулировании различных Благодаря абиотических этому факторов появляется среды возможность обитания. выращивания

7 практически любых видов гидробионтов во всех климатических зонах (Гордеев, 2005;Голод, 2008; Мовсесова, 2011). Одним тепловодного клариевый из наиболее перспективных объектов рыбоводства является индустриального сом, обладающий высоким генетическим потенциалом роста и развития в условиях интенсивной технологии воспроизводства и выращивания рыбы (Подушка, 2006). Продуктивный потенциал, который имеет этот вид рыбы в индустриальных системах, еще далеко не освоен. Для широкого тепловодных распространения хозяйствах страны клариевого необходимо сома в восполнить существующий на данный момент дефицит рыбопосадочного материала, что делает совершенствование выращивания отметить, биотехники крупной что актуальной молоди многие разработку воспроизводства сома. При аспекты этом и и следует искусственного воспроизводства и выращивания молоди клариевого сома в УЗВ, несмотря на актуальность, до сих пор полностью не изучены и не получили должного освещения в современной научной литературе, что и определило выбор темы, цель и задачи диссертационного исследования. С 1996 г. в России начаты работы по рыбохозяйственному освоению клариевого сома (Clarias gariepinus), завезенного из Голландии, обладающего быстрым ростом, высокой плодовитостью и другими хозяйственно полезными признаками. Исследования были проведены в различных условиях содержания и включали в себя получение полноценных половых продуктов, инкубацию икры, выращивание молоди, товарной продукции, формирование стад производителей.

8 Наиболее высокие показатели по выживаемости, скорости роста и плодовитости описаны в литературных источниках, где основные исследования клариевого сома выполнены в установках с замкнутым циклом водообеспечения (Власов, 2004,2007, 2009,2010). Данные о разведении и выращивании сома в УЗВ в отечественной литературе и мировой практике малочисленны. В связи с этим представляет интерес изучение особенностей культивирования данного объекта на разных этапах онтогенеза, различные схемы выращивания сома, при этом важными задачами являются аспекты выращивания товарной продукции и формирования стада производителей, его содержания и эксплуатации. Таким образом, целью нашего исследования является оценка возможности применения метода заводского воспроизводства клариевого сома Clarias gariepinus инъецированиемсурфогоном Задачи исследования: - проанализировать литературу по теме работы; - изучить заводской метод воспроизводства рыб; - описать условия содержания сомов в эксперименте – в экспериментальных установках замкнутого водообеспечения на кафедре Водные биоресурсы и аквакультура; - провести эксперименты по воспроизводству клариевого сома; - проанализировать полученные результаты; - дать рекомендации по воспроизводству клариевого сома. Расчетные и теоретические данные выпускной квалификационной работы могут быть использованы в учебном процессе в таких дисциплинах как «Искусственное

9 воспроизводство рыб», «Биологические основы рыбоводства», «Рыбохозяйственная гидротехника», «Методы рыбохозяйственных исследований», «Товарное гистология рыб», «Зоология». рыбоводство», «Эмбриология и

10 Глава 1. Клариевый сом как новый перспективный объект индустриального рыбоводства Африканский клариевый сом, или мраморный клариевый сом, или нильский клариас (лат.Clarias gariepinus) встречается по всей Африке, включая водоёмы Сахары, в бассейне реки Иордан, в Южной и в Юго-Восточной Азии (Власов, 2007). Развит специальный орган для дыхания атмосферным кислородом. От жаберной полости отходит древовидно разветвлённый наджаберный орган, стенки которого пронизаны множеством кровеносных сосудов и имеют очень большую поверхность. Иными словами, это настоящее лёгкое, заменяющее жабры, когда рыба находится вне воды (рис.1). Рис. 1. Клариевый сом (лат.Clarias gariepinus) Этот вид рыбы уже давно прижился на территории нашей страны (Курская и Московская области) и добрался до Краснодарского края. Как выяснилось, этот вид сома не

11 прихотлив в выращивании и вполне может стать одним из популярных направлений сельскохозяйственной деятельности в Краснодарском крае (Власов, 2004, 2007, 2010). Управляемый и контролируемый процесс размножения африканского сома широко известен еще с прошлого века. Этот метод особенно выгоден и эффективен в условиях производства рыбы хозяйствах, но например, в не и в только в больших рыбоводных специализированных хозяйствах, рыбопитомниках, которые производят посадочный материал. В процессе производства размножения африканского сома необходимо специальное оборудование в виде специальных бассейнов, наполненных очищенной водой из колодцев или вода из открытых водоемов. Одним из основных особенностей возможность инкубатора, применения такого использования теплой что в дальнейшем метода воды является из аппаратов способствует хорошим результатам при выращивании африканского сома. Сом клариевый относится к разряду диетических продуктов. Мясо его прекрасно усваивается организмом человека, оно богато витаминами и минеральными веществами. Но не всегда пищевая ценность этого продукта одинакова, многое зависит от времени лова. Самое высокое качество мяса, конечно после нагула: рыба отъевшаяся, с большим количеством жира. Правда, наша пресноводная и после нагула по жирности мяса относится либо к среднежирным (лещ, сазан), либо к тощим (щука, судак, окунь). После нереста мясо рыбы бывает наихудшего

12 качества, т.к. все силы рыбы ушли на формирование икры или молок, на нерестовый поход, а вместе с силами ушѐл и жир (Власов, 2009). По форме тела напоминает серого сома и угря. Чешуи нет, цвет кожи зависит от цвета воды, обычно мраморный с серо-зеленым оттенком. Есть 4 пары «усов», зубы как у европейского сома. Достигает возраста икрометания (половой зрелости) через 1-1,5 г, его вес в это время составляет 400-500 г, а длина – около 300-400 мм. В длину представители этого вида достигают 170 см и веса 60 кг. Живут около 8 лет. Развит специальный орган для дыхания атмосферным кислородом. От жаберной полости отходит древовидно разветвлѐнный наджаберный орган, стенки которого пронизаны множеством кровеносных сосудов и имеют очень большую поверхность. Иными словами, это настоящее легкое, заменяющее жабры, когда рыба находится вне воды. Специальные исследования показали, что наджаберный орган содержит только воздух и наиболее эффективен при влажности воздуха клариевый сом чувствует себя, 81%. Лучше когда всего концентрация растворѐнного в воде кислорода превышает 4,3 мг/л и доступ к поверхности отвечают возможен. этим Если требованиям, условия он в водоеме уползает в не другой. Оптимальной средой обитания клариевого сома является вода с pH 6,5-8,0 и температурой 25-30°C, но также хорошо он переносит температуру 12-18°C, устойчив к перепадам температуры, переносит уровень соли в воде до 10 промилле. Данный вид достаточно всеяден: он может питаться водяными жуками, моллюсками, рыбой, растительной пищей

13 и даже отбросами органического происхождения, но в природных условиях является, главным образом, хищником. В современных условиях для разведения сома клариевого используются бассейны с установкой замкнутого водоснабжения (УЗВ). Она включает в себя несколько емкостей, в которых живет рыба. Вода, попадая сначала в очищающие механические фильтры, продвигается по системе трубопровода к фильтрам биологическим, и только после этого отправляется в накопительный резервуар. Так как вовремя передвижения объем воды уменьшается за счет испарения и потерь во время фильтраций, то в накопительной емкости потери разведение компенсируются. сома в бассейнах Обязательное – вода, условие обогащенная кислородом. Поэтому продолжает движение вода при помощи насосов в специальную установку, где и происходит аэрация. Следующий шаг позволяющая Дальнейшее – терморегулирующая поддерживать движение воды нужную направлено станция, температуру. еще к одному обеззараживающему блоку, оснащенному ультрафиолетом. Пройдя все этапы, вода попадает в резервуары с сомом. Загрязненная же вода сливается в канализационный блок, проходит механическую очистку. Такая технология разведения позволяет заниматься рыбоводством круглый год, система УЗВ обеспечивает сбережение ресурсов и экологическую безопасность окружающей среды(Завьялов, Власов, 2010). Для этого используется высококачественный материал, в состав которого входят полиэфирные смолы и стекловолокно. Бассейны и УЗВ из стеклопластика и

14 полипропилена отличаются особой ударопрочностью и надежностью. В мясе сома содержится легкоусвояемый белок со сбалансированным составом полиненасыщенных жирных кислот и аминокислот, которые так необходимы людям при нервных и сердечно-сосудистых заболеваниях(Завьялов, Власов, 2010). Также клариевый сом может выдерживать на короткое время снижение температуры до 5°С. Сом обладает большой терпимостью к повышенному содержанию в воде соединений азота. В исследованиях польских ученых установлена летальная концентрация аммиака, которая составяет 6,5мг/л. С. gariepinusустойчивы Поражающая граница к болезням аммиака для (Томеди, разных 2000). видов рыб, следующая: для молоди форели – 0,2 мг/л, для радужной форели – 0,6 мг/л; для ручьевой форели 0,8; для речного окуня – 0,6; для голавля – 1,0; для карпов и линей – около – 2,0 мг/л. Клариевый сом обладает широким спектром питания и в природепитается водными насекомыми, рыбами, моллюсками и высшей водной растительностью (Заки, 1983). Употребляет в пищу также наземных насекомых и фрукты.Этих сомов можно отнести к всеядным рыбам с большой тенденцией к хищничеству. Долгое методичное подстерегание добычи нормальная тактика их охоты. Производственные рыбоводческие фермы начинаются с мощности от двадцати тонн продукции в год и выше (до ста тонн), при этом выращивание клариевого сома

15 технологически ничем не отличается от разведения всех прочих пород. Предприятия по выращиванию сомов, как правило, создаются на основе УЗВ (установок замкнутого водного снабжения), попадает в благодаря которым специальные употребленная фильтры вода (механического или биологического типа) и уже очищенная снова поступает в емкости с рыбой. Безусловно, такая система водоснабжения имеет явные преимущества перед содержанием сома в обычном пруду, поскольку она не загрязняет окружающую среду, более безопасна для рыб и позволяет четко контролировать химические, биологические и физические свойства воды в бассейне, что благоприятствует микроклимату в водоеме(Карасева, 2000). Безусловно, что при таком интенсивном и автоматизированном методе выращивания для рыб создаются оптимальные условия существования, при котором сомы чрезвычайно быстро набирают максимальный вес(Завьялов, Власов, 2010). Производственный процесс выращивания рыб начинается с запуска мальков, обычная масса которых составляет от одного до пяти грамм. Поскольку рыбы подрастают неравномерно, все поголовье постоянно калибруется по весу и размеру (Завьялов, Власов, 2010). Таблица 1 Товарные качества клариевого сома в сравнении с другими видами рыб Выход съедобных частей (вХимический состав мышц (В Виды рыб %) порка %) тушка мышцы влага жиры белок зола

16 Клариевый 83,06 сом Карп (умеренные широты) Карп (тропики) 63,2 40,74 77,7±0,5 5,1 ±0,2 82,9±0,5 56,2±0,3 42,4 78,7±0,6 3,38±0,6 85,4 47,2 76,2±0,9 3,73±0,6 47,2±0,4 71,7±0,4 6,78±0,5 53,1 Форель 81,2±0,4 61,4±0,3 Осетровые 92,3 Тиляпия 84,4± гибридная 0,42 78,97 66-75 48,7±0,48 45,4±0,87 16,1± 1,25± 0,6 0,07 16,04± 0,4 19,9± 0,3 19,7± 0,16 21,3 23,8 1,33± 0,02 0,9- 4,6-16,3 15,7-19 1,4 78,1± 1,22±0,4 0,38 20,05± 0,29 21,9 Как видно из таблицы 1(Завьялов, Власов, Есавкин, 2010), мясо клариевого сома по содержанию белка не уступает карпу и некоторым видам осетровых рыб. По содержанию жира мясо клариевого сома уступает лишь лососевым (форель) и осетровым рыбам. Все это свидетельствует о том, что клариевый сом обладает высокими товарными качествами, что делает его перспективным объектом для выращивания в УЗВ. 1.1.Гибридизация сомов Одной из главных задач современности является увеличение продукции аквакультуры, поскольку роль вылова рыбы из естественных водоемов неуклонно снижается с 1970х годов, Проблемы а численность обеспечения населения на планете продовольственной растет. безопасности выходят на передний план во всех странах (Калайда, 2016, Катасонов,1995). Перспективными объектами аквакультуры являются

17 африканские клариевые сомы, которые позволяют обеспечить высокую рыбопродуктивность в условиях высоких плотностей посадки – до 300 кг/м3. В южных странах Африки и Азии с быстро развивающейся аквакультурой лидирующими объектами рыбоводства являются сомобразные и их гибриды. Не менее популярны в последний период клариевые сомы и в европейских странах. В России они в настоящее время еще не достаточно распространены, но в условиях установок с замкнутым циклом водообеспечения уже показана их перспективность для Республики Татартан. Накоплен определенный размножения на опыт кафедре их «Водные выращивания и биоресурсы и аквакультура» ФГБОУ ВО «КГЭУ» (Калайда,2016, Калайда, Борисова, 2018, Говоркова, Калайда, 2018). Современное развитие биотехнологии выращивания и воспроизводства клариевых сомов в мире связано не только с техникой искусственного воспроизводства, но и с их гибридизацией (Hecht, Lublinkhof, 1985; Tarnchalanukit, 1986, Mukhopadathy, Dehadrai, 1987, Legendreetal., 1992). Все ныне полученные гибриды сомовых рыб обладают хорошими биотехнологическими признаками: высокий темп роста и способность к выживанию. С участием клариевых сомов Юго-Восточной Азии были получены реципрокные гибриды с пангасиусом: Clarias batrachusх Pangasius sutshi и С. Macrocephalusx х Р. sutshi.Все гибридные комбинации показали пониженную жизнеспособность по сравнению с родительскими видами (Tarnchalanukit, 1986). О способности к половому созреванию этих гибридов в литературе не отмечалось. В этот же период

18 были получены гибриды от комбинации С. batrachus х Heteropneus tesjossilis,они обладали пониженной жизнеспособностью (Mukhopadathy, Dehadrai, 1987), об их плодовитости или стерильности также ничего не сообщалось. Самки Clarias Heterobranchus Legendreetal., gariepinusбыли longififis 1992). скрещены (Hecht, Авторы с самцами Lublinkhof, получили 1985; жизнеспособные гибриды, которые имели промежуточные показатели по скорости роста и выживаемости. Гибриды оказались плодовитыми, было получено потомство второго поколения и возвратные гибриды, которые, однако, имели пониженную выживаемость и высокую смертность на личиночной стадии. Скрещивание канальных сомиков рода IctalurisI. puncatusх I. furcatus показали, что гибриды по выживаемости превосходят родительские виды во всех фазах роста, обладают большей устойчивостью к заболеваниям, а также имеют лучшую оплату корма, чем родительские виды. Гибриды плодовиты, при скрещивании между собой и с родительскими видами дают жизнеспособное потомство, однако продуктивность самок возвратных гибридов оказалась заметно хуже, чем у самок первого поколения (Masser, Dunham, 1998). Большой интерес для товарного рыбоводства представляют гибридные сомы. Межвидовой гибрид Clarias gariepinus объект и Clarias выращивания macrocephallus– в Таиланде. Его распространенный ценят за более качественное мясо и высокую устойчивость к заболеваниям. Межродовой гибрид Clarias gariepinusи Heterobranchus longifilis растет быстрее родителей и дает больший выход

19 продукции, связанная гибридов однако с еще отмечается большей и их большей сложность агрессивностью подверженности содержания, поведения инфекционным заболеваниям (Peteri, 1992; Ponzoni, 2008). Проведенный анализ литературы показал, что несмотря на то, что первые опыты по гибридизации сомовых были осуществлены в конце 20-го века, к настоящему времени ряд полученных гибридов, например, гибрид Clarias gariepinus и Clarias macrocephallusуже заняли лидирующие позиции в товарном производстве новых объектов аквакультуры рядя стран, в тоже время, скрещивание некоторых видов пока не увенчалось успехом.

20 Глава 2. Заводской метод воспроизводства рыб в индустриальном рыбоводстве с использованием новых гонадотропных препаратов Заводской метод воспроизводства рыб обычно включает последовательный ряд биотехнических процессов: преднерестовое содержание производителей и получение от них зрелых половых продуктов; осеменение икры и подготовка ее к инкубации; инкубация икры, вылупление и выдерживание личинок до перехода на активное питание. В зависимости от технологической специфики схемы объектов конкретного разведения хозяйства и может меняться группировка этих процессов, их относительная продолжительность 2009). К вопросы и настоящему значимость(Курпуць, времени искусственного были 1995,Кунин, решены воспроизводства рыб основные (способы преднерестового содержания производителей, гипофизарный способ стимуляции созревания, способы искусственного осеменения, возможность инкубации икры различных видов рыб во взвешенном состоянии, жизнеспособность личинок, полученных заводским методом, и др.) (Приложение А). Имелся многолетний опыт заводского воспроизводства лососевых, сиговых и осетровых рыб, получены первые результаты и по клариям (Власов,2009, 2010) (Приложение А). Однако все перечисленные выше способы были разработаны для объектов с неклейкой или слабоклейкой икрой. Для подготовки такой икры к инкубации либо вообще не требуется ее обесклеивания (лососевые, большинство

21 сиговых), либо достаточно простых способов – подкисления воды при набухании икры (пелядь), или промывка взвесью ила (осетровые). Разработка заводского метода воспроизводства карпа, сазана и других весенненерестующих рыб сдерживалась отсутствием приемлемых способов обесклеивания икры с высокой клейкостью. Несмотря на неоднократные попытки, до настоящего времени пригодного для производства способа так и не удалось крупномасштабного инкубации состоянии.(Горизонтов, 1981, разработать промышленного икры в Гершанович, приклеенном 1984, Гмыря, 1984) 2.1. Половые циклы рыб как основа применения заводских методов воспроизводства Сравнительные эколого-морфологические исследования половой цикличности у разных таксономических групп рыб дали возможность судить о формах адаптации в репродуктивной цикличности в прохождении полового цикла у видов рыб с различной экологией размножения. Удалось обнаружить многие особенности в прохождении и изменении половых циклов и ритма размножения рыб(Дрягин 1939, Кулаев 1927, 1944; Мейен 1927, 1939; Кошелев 1959, 1960, 1963; Шихшабеков 1969, 1972, 1979Волкова А.Ю. 2005).Было показано, что у видов рыб с различным характером роста овоцитов (асинхронный или синхронный) имеются разные формы изменения полового цикла. Половая цикличность меняется во многих случаях без изменения ритма

22 размножения, в результате изменения длительности прохождения отдельных стадий зрелости гонад в течение полового цикла. Причем эти изменения неодинакова у видов рыб с разным сезонным ходом овогенеза, с разными сроками и календарной приуроченностью процесса интенсивного вителлогенеза в половых клетках. Сравнительное изучение половых циклов у костистых рыб было начато еще в начале прошлого столетия нашими отечественными учеными (Кулаев 1927, 1944; Мейен 1927, 1939; Дрягин 1939), и в последствии они были продолжены другими учеными (Кошелев 1959, 1960, 1963; Шихшабеков 1969, 1972, 1979 и др.).Проведенные исследования показали, что изменения ритма неблагоприятными размножения рыб условиями в связи с существования производителей более существенны и продолжительны у видов рыб с синхронным развитием половых клеток и единовременным типом икрометания (вобла, кутум, щука, жерех, окунь) по сравнению с видами рыб имеющих неравномерный рост ооцитов и порционный нерест (сазан, линь, красноперка). Еще более интересно протекает половой цикл у рыб режимом, в водоемах где в с измененным одних единовременными, а случаях в экологическим они других являются порционно – нерестующими(сом, рыбец, лещ и судак). Отмечена также видовая и половая специфика прохождения половых циклов и стадий зрелости таксономических морфологических половых групп и желез у рыб.Сообразно физиологических различных изменениям показателей в организме рыб, а также с учетом особенностей прохождения

23 гаметогенеза, весь годичный половой цикл можно рассматривать по отдельным самостоятельным периодам, ясно разграничивающим все эти показатели и их особенности при сравнении между собой. Если это состояние схематизировать по обнаруживается отдельным следующая сезонам сезонная года, то картина физиологического состояния организма: 1. Весенне-летний сезон – это самый ответственный период жизни для всех изученных видов рыб с весеннелетним периодом нереста, который длится с начала марта по июль включительно. Половые железы самок и самцов в течение этого периода в начале находятся в IV, IV - V , а в конце - VI - II стадиях зрелости, и длится он например, у кутума и воблы с марта по апрель; у леща и рыбца – апрель – май; у сазана, линя, красноперки и других – май – июль. Половые клетки их к этому периоду достигают дефинитивных размеров, гонадосоматический максимальную величину, индекс показатели занимает упитанности и жирности – минимальны. Пищевые, а следовательно, и товарные качества рыбы находятся на самом низком уровне. С наступлением благоприятных условий для нереста, главным образом температуры, происходит овуляция. Это самый ответственный период для рыб с весеннее – летним нерестом, куда относится большинство волжско-камских видов рыб. 2. Летне - осенний сезон начинается для одних видов рыб сразу же по завершении нереста (у ранне– нерестующих рыб этот период наступает раньше, а у поздненерестующих – намного позднее), он еще называется посленерестовым или

24 нагульным периодом. Половые железы находятся в посленерестовом состоянии (у кутума, воблы, леща, рыбца, линя и красноперки и др. – VI - II стадии, а у сазана, карася, густеры – VI - III стадии зрелости, с характерными для этих стадий зрелости состоянием фазами половых развития желез). половых Показатели клеток и упитанности и жирности к концу этого периода (периода нагула) достигают максимальных величин, в то же время гонадосоматический индекс имеет минимальную величину. Пищевые и товарные качества рыбы находятся на среднем уровне, а в конце этого периода эти показатели достигают самого высокого уровня. 3. Осеннее - зимний сезон – это самый продолжительный (сентябрь – февраль) и не менее ответственный период. Он характерен для многих видов рыб завершением периода нагула и началом трофоплазматического интенсивного роста овоцитов процесса (вителлогенез), который протекает у одних видов медленнее, у других более интенсивно. Так, у воблы, леща, кутума, сазана и др. он более интенсивно протекает еще в начале осеннего периода, а уже в конце осени перед зимовкой половые железы находятся в IV стадии зрелости, показатель зрелости достигает более 70 %, и зимуют самки в этом состоянии. У других видов (линь, карась и др.) в конце осени яичники находятся в стадии II-III, оогенез замедляется, в ранний весенний период овогенез возобновляется и завершается вителлогенез. За короткий период яичники переходят в IV стадию зрелости (овоциты становятся зрелыми) и коэффициент зрелости достигает максимальной величины перед непосредственным нерестом. Таким образом, у первой группы период интенсивного

25 вителлогенеза протекает в конце лета и длится всего 2-3 месяца, а второй группы он проходит в два этапа (осенью и весной) и длится более 7-8 месяцев. Показатель зрелости у первой группы достигает перед зимовкой около 70 % от максимального, а у второй группы он имеет значительно меньшую величину – 20-25 % от максимального; показатели упитанности и жирности за осенне-зимний период постепенно уменьшаются, т. к. в течение всего этого периода рыбы не питаются, а следовательно происходит уже не накопление жира, а перераспределение уже накопленного запасного жира внутри организма, т. е. запасные жиры организма рыб используются для роста и развития половых клеток, а также формирования гонад. Показатели пищевых и товарных качеств рыб и рыбной продукции в начале периода высокие, но в конце зимнего периода они значительно снижаются. 4. Зимне-весенний сезон – это период с конца февраля (у щуки, окуня, жереха, кутума и воблы) по апрель - май (у леща, судака, рыбца и др.), май-июнь (у сазана, сома, карася, красноперки и др.). Он заканчивается нерестом рыб.Гонады находятся в IV или IV-V стадиях, а в конце VI-II стадиях зрелости (у щуки, окуня, кутума, леща) или в III или III-IV стадиях у рыбца, густеры, карася, красноперки и др., которые быстро и за короткий период (несколько дней) и завершают вителлогенез, после чего происходит нерест и гонады переходят в посленерестовое состояние. Гонадосоматический индекс в этот период достигает максимальной величины, а показатели упитанности и

26 жирности снижены до минимальных величин. Пищевые и товарные качества низкие. Ориентируясь по данной сезонной схеме физиологического состояния видов, обитающих в средней полосе России, можно дать примерную оценку состояния воспроизводства, пищевой и товарной ценности рыб в течение года, что необходимо при установлении оптимальных сроков лова, рынка и получения проведения рыбоводстве высокотоварной племенной продукции работы в для прудовом с учетом видовых, возрастных и сезонных особенностей рыб. В тоже время для новых акклиматизированных объектов рыбоводства данная схема не применима. Поэтому в существующих условиях делаются попытки создания условий среды и использования искусственных методов воспроизводства на базе гормонального инъецирования. 2.2. Заменители гормона гипофиза и перспективы их использования. В связи с расширением масштабов рыбоводства все актуальней становится задача обеспечения этих работ необходимым количеством гипофизов, совершенствования методов гормональной стимуляции созревания половых клеток у рыб, а также поиска новых доноров. Сложность заготовки больших количеств гипофизов рыб, затруднения с точной дозировкой этого препарата и его высокая стоимость ставят вопрос о возможности замены гипофиза рыб другими, более доступными препаратами.

27 С конца 60-х годов XX в. начали выделять, расшифровывать и использовать в качестве стимуляторов созревания половых клеток у рыб гонадотропные гормоны гипофиза.Физиологический метод или метод гипофизарных инъекций применяется для большинства весенне-летне нерестующих рыб (осетр,карп, лещ, судак, белый амур и др.) (Калайда, 2014). Гипофиз – это нижний мозговой придаток – является железой внутренней секреции. Гормоны гипофиза поступают в кровь и в полость мозгового желудочка и влияют на окраску тела и на рост, контролируют развитие половых, щитовидной и надпочечной желёз и обладают некоторыми другими функциями. У высших позвоночных животных в гипофизе вырабатывается два гонадотропных гормона фолликулостимулирующий (ФГ), который вызывает рост и созревание овариального фолликула у самок и процесс сперматогенеза у самцов, и люгеинезирующий (ЛГ), который стимулирует секрецию эстрогенов яичника и овуляцию у самок и влияет на интерстициальные клетки семенника, стимулируя синтез андрогенов. В отношении низших позвоночных в настоящее время нет точных данных о наличии в их гипофизе двух различных гонадотропных гормонов. Для большинства рыб характерно наличие двух форм гонадотропинов. Первая форма более эффективна в стимуляции синтеза эстрадиола. Она доминирует в ходе вителлогенеза и ранних стадий сперматогенеза. Вторая форма стимулирует синтез индуктора созревания ооцитов и доминирует в период (Серпунин, 2009). подготовки рыб к размножению

28 Различные нарушения процессов ооцитов и овуляции, спермиации наблюдаются при определенных нарушениях в деятельности системы, так как и различных органов, органов репродуктивной контролирующих другие функциональные системы организма (Бурлаков, 1997)(рис.2). Рис. 2.Схема формирования зрелости половых клеток и овуляции и механизм выделения гормонов

29 Исследования, проведённые в конце 60-х – начале 70-х годов XX в. в лаборатории акклиматизации рыб ВНИИПРХ, показали возможность использования гипофизов 3-годовалых карпов, выращенных в южных районах, а также гипофизов двухлетков, выращенных в садках, установленных в водоёмахохладителях тепловых электростанций.По сравнению с естественным нерестом заводской способ воспроизводства имеет ряд преимуществ (Катасонов и др.,1991; Привезенцев Ю., 1991). Он позволяет управлять процессами подготовки производителей к нересту, получения зрелых половых продуктов, осеменения и инкубации икры. Заводской метод расширяет возможности проведения селекционной работы. При его использовании исключается совместное содержание производителей и потомства (Крюков, 2007). Заводской наибольшее рыбоводства, метод воспроизводства значение так в как условиях удлиняет рыбы I-IV зон период имеет прудового выращивания сеголеток на 1-3 недели (Крюков, 2007). В условиях воспроизводстве использованы дефицита сазаньих растительноядных гипофизы от крупных гипофизов рыб могут двухлетков при быть белого толстолобика массой от 800 г и более с гонадами в II и III СЗ (от II к III СЗ активность гипофиза возрастает примерно в 2-3 раза). При одной и той же дозе экзогенного гормонального стимулятора конечный биологический ответ репродуктивной системы реципиента регуляцию целого физиологических зависит ряда процессов. от уровния вовлечения в центров и эндокринных Степень такого вовлечения

30 поределяется уровнем собственной функциональной эндокринной физиологической системы подготовленности активности (разная самок и степень самцов к созревенанию) перед началом гормональной стимуляции. Различные нарушения процессов ооцитов и овуляции, спермиации наблюдаются при определенных нарушениях в деятельности системы, как так различных и органов, органов репродуктивной контролирующих другие функциональные системы организма (Бурлаков, 1997). Установлено, существенного что замораживание влияния на не оказывает гонадотропную активность гипофиза. Это даёт возможность проводить исследования по использованию гипофизов рыб морского и океанического лова, доставляемых рефрижераторами на береговые базы. Установлено также, что суточное хранение рыбы при температуре от 0 до 10°С снижает активность гипофизов в 1,5-2 раза. В попытках найти замену гипофиза рыб для стимуляции созревания половых клеток использовались различные гормоны (Калайда, 2014). В числе первых препаратов были гонадотропные гормоны, вырабатываемые плацентой. Применялись и изготовленные из мочи беременных женщин – пролан, гравидан. С помощью этих веществ получали зрелую икру у окуня (Морозова, 1936; Скадовский и Парфёнова, 1937) и вьюна (Гербильский и Киршенблат, 1947). В лаборатории Н.Л. Гербильского был испытан хориальный гонадотропин –хориогонин (ХГ). Этот гормон образуется в плаценте человека и некоторых обезьян и в

31 значительных количествах выделяется с мочой во время беременности. В настоящее время ХГ получен в очищенном виде и представляет собой гликопротеид, который оказывает сильное лютеотропное действие, то есть стимулирует секрецию эстрагенов яичника и овуляцию у самок и влияет на интерстициальные клетки семенника, стимулируя синтез андрогенов. Этот фармацевтической гонадотропный препарат промышленностью, выпускается что облегчает его использование по сравнению с гипофизами рыб. Кроме того, активность хориогонина выражается в биологических единицах, поэтому при его использовании возможно точное дозирование (500 ME XT ~ 1 мг гипофиза сазана). По реакции на введение хориогонина можно выделить рыб трёх основных групп. К первой группе относятся виды, у которых введение ХГ вызывает созревание и овуляцию и вымет зрелой спермы. Положительная реакция самцов и самок на введение ХГ была получена у окуня, ерша, судака, вьюна. Опыты показали, что ХГ является надёжной заменой ацетонированных гипофизов и вполне пригоден для перевода самок судака из IV в V СЗ и получения от них зрелой икры. Эти результаты позволили рекомендовать применение ХГ в дозе 200-250 ME при температуре 12-16°С для стимулирования созревания половых клеток у судака. Замена ацетонированных гипофизов готовым фармакологическим препаратом значительно снижает трудоёмкость работ при заводском воспроизводстве судака. Ко второй группе по реакции на ХГ относятся виды рыб, у которых его введение вызывает частичное созревание самок и которым необходимы повторные инъекции для

32 получения овуляции. К этой группе относится толстолобик. От самок белого и пёстрого толстолобика при введении от 1000 до 2500 ME на 1 кг массы путём двух инъекций (первоначальной и разрешающей) удаётся получить зрелые половые клетки, а затем личинок и мальков. Созревание самок при воздействии ХГ наступает на 4-6 ч позже, чем при обычной гипофизарной инъекции. К третьей группе относятся рыбы, у которых при применении хориогонина гормонального половых воздействия клеток. представители К этой в различных вариантах не происходит созревания группе относятся многие семейства карповых: плотва, сазан, лещ, рыбец, белый амур. Отрицательные результаты получены на осетровых. Не удалось получить созревания половых клеток у русского осетра при однократной инъекции от 3000, 4500 до 6000 ME ХГ, а также при общих дозах от 8000 до 30 000 ME, вводимых многократно (7-9 раз). Таким образом, можно рекомендовать полную замену гипофизов хориогонином для судака, а также белого и пёстрого толстолобиков. Однако нужно иметь в виду, что при применении ХГ наблюдаются иммунные реакции, особенно у «домашних» рыб, которых инъецируют многократно в течение нескольких лет (товарное рыбоводство). Имеются положительные результаты, дающие возможность получать в искусственных условиях зрелые половые клетки у производителей угря при индукции полового созревания, начиная с ранних стадий развития гонад. Сложность получения зрелых половых клеток у угря

33 связана с тем, что гонады у этой рыбы к началу катадромной нерестовой миграции достигают лишь II III СЗ. Установлено, что в условиях эксперимента созревание половых клеток угря происходит под влиянием следующих гормональных стимуляторов. - для самок – суспензия ацетонированных гипофизов сазана и угря; - для самцов – ХГ и суспензия гипофиза сазана Развитие и созревание мужских половых клеток от сперматогоний до спермиев происходит при еженедельном введении препаратов постоянными разовыми дозами в течение 1,5-2 месяцев. Для роста и развития ооцитов в каждый период оогенеза требуется градуальное введение гонадотропных гормонов. Применение гонадотропин-рилизинг гормонов (ГнРГ) и их аналогов для стимуляции созревания половых клеток у рыб. В последние годы интенсивно развивается направление, связанное с применением гормонов и их синтетических аналогов, регулирующих синтез и секрецию гонадотропного гормона гипофиза. Положительные результаты получены при использовании гипоталомического гормона –люлиберина и его синтетических аналогов(два аналога люлиберина синтезированы в лаборатории синтеза пептидов. Института экспериментальной кардиологии ВКНЦ РАМН), стимулирующих выделение гипофизом лютеинезирующего гормона, который стимулирует секрецию эстрагенов яичника и овуляцию у самок и синтез андрогенов у самцов.

34 После воздействия люлиберином получено созревание осетра, севрюги, стерляди. Созревание осетровых наступает в результате дробной инъекции суммарной дозой 10-40 для самок и 7-30 мкг/кг для самцов. Правда, продолжительность созревания после воздействия люлиберином несколько больше, чем после инъекции препаратов гипофиза. Выяснено, что осетровые рыбы обладают высокой чувствительностью к синтетическому аналогу люлиберина– ЛГРГ-А (сурфагону). Сравнение эффективности его действия с действием гипофизов осетровых рыб не выявило достоверных различий ни в проценте самок, отвечающих созреванием на инъекцию, ни в проценте оплодотворения, ни в качестве эмбрионов, предличинок и мальков. Получены положительные результаты при воздействии сурфагона на осетре, севрюге, белуге, стерляди, белом осетре (Киселев, 1995). При созревание применении в синтетических большинстве случаев аналогов наступает ГнРГ после однократного введения невысокой дозы препарата. Так, для севрюги оказалась достаточной дозировка 0,15-0,20; для белуги – 0,6-1,1, а для стерляди значительно более высокие дозы – 100 мкг/кг. Продолжительность созревания половых клеток при использовании синтетических аналогов люлиберина на 10-25% больше, чем у рыб, инъецированных препаратом гипофиза. Карповые нерестом.Многие и другие виды представители с весенне-летним семейства карповых являются объектами рыбоводства. Для карповых основным способом получения зрелых половых клеток является МГИ.

35 Только в последнее время накарповых стали применять ГнРГ и их синтетические аналоги. Показана высокая эффективность применения ЛГРГ-А и ГГнРГ-А на лине. Наилучшие результаты (100%-ное созревание самок) получены при однократном введении сравнительно высоких доз препарата – 100 мкг/кг. Долгое время не удавалось эффективно стимулировать созревание карпа. Применение ЛГРГ и ЛГРГ-А стимулировало спермиацию у самцов. На самках карпа не удавалось получить стимуляции овуляции. Лишь при использовании комбинированных воздействий аналогов ГнРГ и веществ, действующих на синтез катехоламинов (например, пимозида– ПИМ), были получены стабильные положительные результаты и на самках карпа. В настоящее время комбинированные воздействия ПИМ и ГнРГ широко применяются на карпе и многих других видах, в частности на таких важных объектах рыбоводства, как растительноядные рыбы. Благодаря профессора работам, И.А. выполненным Баранниковой, в под руководством настоящее время существует возможность разведения леща без использования дефицитного препарата гипофиза карпа (стимуляция созревания самок леща ЛГРГ-А в дозах от 30 до 90 мкг/кг и ПИМ от 3 до 9 мг). Высокая эффективность применения комбинированных воздействий ПИМ и ЛГРГ-А в соотношении 100:1 показана для индукции созревания и овуляции африканского сомика– перспективного объекта аквакультуры. Для индукции

36 созревания обыкновенного сома можно использовать только ЛГРГ-А. Кроме ГТГ, у отдельных видов эффективным оказалось воздействие высокими дозами ряда стероидов. Так, воздействие на сомика 17-гидрооксипрогестероном приводит к созреванию и овуляции. Положительные результаты получены на сомике при использовании антиэстрогенов – кломифена и тамоксифена. Стимуляция меньшей созревания степени изучена морских рыб.В значительно эндокринология репродукции морских рыб. Лишь в последние годы выполнены работы по индукции созревания рыб различных семейств. Успешно на ряде видов рыб используется сур фа гон как в виде однократных или двукратных инъекций, так и комбинированных воздействий ПИМ и сурфагона. Положительные результаты получены иривведениисурфагона кефали. Введение зубатке сурфагона в комбинации с пимозидом также приводит к созреванию. В опытах на белом морском окуне, который не размножается в неволе, получено созревание в результате имплантации пилюль, содержащих два разных синтетических аналога ГнРГ. Преимуществом имплантации пилюль является более длительное действие гормона. Лососевые. Стимуляция созревания лососевых возможна с применением гормонов, относящихся к различным уровням системы гормональных взаимодействий в регуляции репродуктивной функции. Получена овуляция у кижуча после введения ЛГРГ, а также ЛГРГ-А (сурфагона). Наиболее эффективно ускоряют

37 созревание и овуляцию ооцитов у самок кижуча двукратные инъекции сурфагона или комбинированные инъекции этого препарата и гонадотропина. Имплантация в брюшную полость или в мышечную ткань капсул с сурфагоном (чем достигается его пролонгированный эффект) приводит к ускорению овуляции у атлантического лосося более чем на месяц по отношению к срокам естественного нереста. Однако в этом случае у некоторых самок отмечено снижение качества полученной икры. Введение сурфагона самцам лосося приводит к спермиации. Через 8-10 суток после двукратных инъекций сурфагона самкам кеты, далёким от зрелости (отловленным в период миграции в реки), происходит овуляция у 75-100% рыб (в контроле 12-20%). Введение сурфагона самцам вызывает спермиацию, правда, менее интенсивную, чем после введения ГТГ. Для получения положительного результата при работе с кетой необходимо применение сравнительно высоких доз сурфагона (до 100 мкг./кг.). Введение кете низких доз сурфагона (15 мкг./кг.) стимулирует созревание и овуляцию у самок кеты при предварительном введении ПИМ. Положительные результаты при применении ГнРГ получены на хариусе. Применение антиэстрогенов на лососях также даёт положительный эффект, в частности использование тамоксифена в комбинации с ГТГ. В этом случае оказывает положительное влияние наличие обратной связи между половыми стероидами и гипоталамогипофизарной системой. В экспериментах используются также стероиды; наиболее эффективными для ускорения овуляции у лососевых

38 являются 17-гидроокси-20-дигидропрогестерон фдигидро прогестерон. и Комбинированное 20- введение прогестинов с ГТГ ускоряет созревание самок кижуча. Андогены (в частности, тестенат) предложено применять на самцах атлантического лосося и сигов для продления периода функциональной зрелости гонад, что имеет большое значение для рыбоводства. Кроме эндогенной регуляции репродуктивной функции рыб за счёт введения препаратов гипофиза, гормонов гонад, гипоталамических рилизинг-гормонов (гонадолиберинов или ГнРГ), весьма перспективна эндогенная регуляция за счёт использования половых феромонов. Так, если самцов рыб содержать с самками, у которых в результате инъекций препарата гипофиза начинается происходит спермиация. Для овуляция, стимуляции у первых созревания половых клеток у рыб используют также воду с добавлением овариальной и спермиальной жидкостей, содержащих высокие концентрации феромонов. 2.2.1. Сурфогон как перспективный ганадотропный препарат Заготовка гипофизов – трудоёмкая и дорогостоящая процедура. Поэтому синтетических ведутся препаратов, интенсивные заменяющих поиски препараты гипофиза. С учётом всех гормональных взаимодействий, поиски препаратов ведутся в трех направлениях. Первое направление связано с заменой гонадотропина гипофиза рыб другими гонадотропными препаратами,

39 имеющими гипофизарное или плацентарное происхождение. В качестве заменителя гонадотропинов рыб в настоящее время используется хорионический гонадотропин, имеющий плацентарное овуляцию происхождение. у белого и Этот пестрого гормон вызывает толстолобиков и у лабораторной рыбы-вьюна. В экспериментальных условиях хорионический гонадотропин вызывает созревание у европейского и японского угрей. Однако этот гормон не является универсальным препаратом, стимулирующим созревание всех разводимых видов рыб. Например, карп и белый амур не созревают после инъекции хорионического гонадотропина. Второе направление релизинг-гормона, который предполагает мог бы использование активизировать собственный гипофиз рыб. В настоящее время получены синтетические аналоги этого гормона. Их использование для стимулирования созревания карпа, толстолобика, осетровых, дает, как правило, хороший эффект. Применение аналогов релизинг-гормона для созревания радужной форели давало нестабильные результаты, а при обработке производителей канального сома – отрицательные. Третье стероидных направление гормонов, связано которые, с использованием воздействуя на ооциты, привели бы к их созреванию и овуляции. Эти гормоны влияют не только на гонады, но и на гипоталамус, гипофиз, поэтому необходим детальный анализ их физиологического действия. При использовании гормональной стимуляции развития и созревания половых желез и созревания половых клеток следует учитывать важный аспект. Гормоны, являясь

40 биологически активными веществами, вызывают значительные изменения физиологии рыб. Последствия этих изменений пока не ясны. «Сурфагон» применять для осетровых исключительно при рыб работе рекомендуется в традиционные рыбоводные сроки при оптимальной нерестовой температуре. В отличие от гипофизарных препаратов, релизинг-гормоны не повреждают ооциты даже при 400-кратном превышении доз (Гончаров, 1998). Препараты могут вводиться единовременно, дробно или градуально. Наиболее эффективен «Сурфагон» при работе с самками проходных видов – севрюги, русского осетра и белуги, и самцами всех видов, для которых оптимальной дозой является 1 мкг/кг. Для стерляди и ленского сибирского осетра препарат менее отсутствия гипофизарных нерестовой температуре эффективен, препаратов его можно однако при в случае оптимальной применять, однако дозировки в этом случае следует увеличить. 2.3. Биотехнологии воспроизводства клариевого сома. Выращивание товарного сома в течение года проводится в режиме полицикличной технологии, когда этапы выращивания рыбы и изъятие продукции осуществляются периодически через каждые 100 суток (число циклов выращивания в год – 3-4) (рис. 3). Длительность одного рыбоводного цикла (выращивание рыбы от личинки до массы 1000 г товарной навески) составляет 170 суток (Власов,

41 2010). Все нормативные данные были разработаны Власовым В.А. в 2010 г. масса тела, в кг. 1 0.8 0.6 0.4 0.2 0 время, в месяцах Рис. 3. График полицикличного выращивания клариевого сома Получение личинок и их выдерживание Получение половых продуктов, инкубация проводятся по общепринятой методике, при температуре воды 28-30°С. Инкубацию оплодотворенной не обесклеенной икры проводят в аппаратах личинки лоткового выдерживаются типа. в При лотке температуре до этапа 28-30°С наполнения плавательного пузыря, т.е. выхода их на «плав». После этого с переходом на внешнее питание, при такой же температуре воды их начинают кормить науплиями рачка Артемии салина или мелким зоопланктоном в течение трех-пяти суток. Пересадку личинок из инкубационно-личиночного лотка проводят при температуре воды 26-28°С. Такой же температураводы должна быть и в рыбоводных емкостяхбассейнах. Личинок кормят только науплиями и сырыми декапсулированными яйцами Artemia salina.

42 Подращивание личинок до массы 20-50 мг Плотность посадки личинок при подращивании составляет 50-100 тыс., шт./м3 в зависимости от желаемой конечной массы 20 или 50 мг. При выращивании молоди плотность посадки не должна превышать 50 тыс. шт/м3. Сортировку личинок проводить нежелательно до тех пор, пока их масса не достигнет 1 г. При этом водообмен рыбоводных должен емкостях в обеспечивать пределах качество воды установленных в норм. Содержание растворенного кислорода в воде на вытоке должно быть не менее 5 мг/л. Нежелательно перенасыщение воды кислородом в первые пять суток, так как молодь перорально поглощает пузырьки и теряет способность плавать. Максимальная скорость течения 1-3 см/сек при штучной массе молоди до 0,2 г. Вода подается фронтально через флейту и сбрасывается через фонарь в центральной нижней части бассейна. При 27-28°С в первые сутки при переходе на экзогенное питание личинки получают 200% от их живой массы зоопланктона, или 100% декапсулированных яиц артемии. К десятым суткам количество живого корма уменьшается до 10% от массы личинок. За этот период суточный рацион комбикорма рецепта РПС-45/15-КЭ уменьшают со 100 до 80%. Науплииартемии или декапсулированные яйца выдают 10 раз в сутки, комбикорм РПС-45/15-КЭ и другие сухие корма – вручную или кормораздатчиками до 90 раз в сутки. В рыбоводных емкостях сброс отстоя проводят один раз в

43 сутки. Обеспеченность кормом на данном этапе чрезвычайно важна, так как в случае его неритмичного внесения возможен каннибализм, а также очень большой разброс молоди по массе. Время подращивания молоди при температуре воды 26-28°С составляет около десяти суток, а выход молоди при этом – 75-80%. Выращивание молоди массой от 50 мг до 1 г Проводится при температуре воды 26-28°С и плотности посадки до 35 тыс. шт./м3. Требования к водообмену такие же, но максимальную скорость течения у сброса воды нужно увеличить до 3-5 см/с. По достижении рыбой массы 400-500 мг воду необходимо подавать сверху фронтально, а сброс – через нижний сток и устанавливать вертикальную решетку (с пятью – тремя ячейками на 1 см). Выращивание занимает 20 суток, выход молоди составляет 80% . Если выращивание до массы 1 г ведется с нуля, то выход молоди составляет 50%, плотность посадки – 30-40 тыс. шт./м3. В этот период суточный рацион молоди уменьшают с 30 до 20% от их массы. Корма раздаются вручную или кормораздатчиками. Сброс осадков из рыбоводных емкостей проводится один раз в сутки. По достижении рыбой массы 1 г ее сортируют и рассаживают на дальнейшее выращивание. При этом плотность посадки рыбы в рыбоводных емкостях может достигать 25-30 кг/м3. Выращивание молоди массой от 1 до 50 г

44 Выращивание молоди массой до 50 г проводят при температуре воды 26 - 28°С. Ее рассаживают по 2-2,5 тыс. шт./м3 из расчета выживаемости за этот период 85-90%. Водообмен регулируют по уровню содержания кислорода на вытоке из бассейнов не менее 5 мг./л. Вода подается флейтой по поверхности. Сброс воды происходит через нижнюю часть бассейна. Смена воды в рыбоводной емкости осуществляется до трех раз в сутки и контролируется по уровню накопления в ней метаболитов рыб (аммиак, нитриты, нитраты) и осадка органических веществ. Перед эксплуатацией в рыбоводной емкости устанавливают нижние решетки (стаканы). На этом этапе суточный рацион постепенно снижают с 20 до 7% от их массы. Корма раздаются с использованием автоматических кормораздатчиков круглосуточно. Режим их работы регулируют по пищевому поведению рыбы в каждом конкретном последующих случае. этапах Хорошие результаты выращивания рыбы на этом и обеспечивает применение маятниковых автокормушек типа «Рефлекс». Плотность посадки рыбы к концу выращивания достигает 100-120 кг/м3. Время выращивания сома массой от 1 до 50 г занимает около 40 суток. Выращивание сома массой от 50 до 500г Выращивание сома до массы 500 г продолжается в течение 50 суток. Особенностью этого периода является снижение потребности рыбы в кислороде, так как начинает работать наджаберный орган. При посадке на откорм рыбу следует рассортировать на размерные группы, после

45 достижения ею массы 200-300 г проводится вторая сортировка, возможно и рассадка рыбы по полу (раздельное содержание самцов и самок). Расход воды уменьшается, водообмен в бассейнах может быть сокращен до 120 мин. Снижаются требования и к качеству используемой воды. Для кормления рыбы используется комбикорм РПС-40/20-КЭ. Режим кормления – круглосуточный, способ раздачи корма – с помощью маятниковых автокормушек или кормораздатчиков. Выращивание товарной продукции массой до 1 кг Этот этап проводится при той же температуре воды, как и на предыдущих этапах. Его продолжительность не более 50 суток. При посадке на интенсивный откорм рыбу сортируют, что позволяет реализовывать товарную продукцию в течение всего периода откорма. Используется корм такой же, как и на предыдущем этапе.

46 Глава 3 Материал и методы исследования 3.1. Характеристика экспериментальной УЗВ УЗВ – этоустановка замкнутого водоснабжения для выращивания рыбы. Аквакультура находятся в бассейнах с высокой плотностью посадки. Подпитка в сутки свежей водой составляет не менее 5% от объема воды в установке. Это достигается путем применения системы механических и биологических фильтров для очистки отработанной воды для ее дальнейшего использования. Вся установка делается компактной и поэтому ее можно разместить в отапливаемом помещении, что делает УЗВ независимой от внешних условий среды. Такие УЗВ для выращивания и содержания рыб уже используются в мире примерно 30 лет. В последние активизировалось, Строгие 5 лет т.к. они экологические минимизацию аквакультурных строительство обладают ограничения, загрязнений хозяйств от в таких рядом достоинств. направленные рыбоводных странах установок заводов Северной на и Европы послужили стимулом к быстрому технологическому развитию установок замкнутого водоснабжения (УЗВ). Кроме того, рециркуляция воды обеспечивает более высокое и стабильное производство продукции аквакультуры с меньшим риском возникновения болезней, а также лучшие возможности для контроля параметров, влияющих на рост, в инкубационных цехах. Развитие данных технологий находится в полном соответствии с принципами Кодекса ведения ответственного рыболовства ФАО и должно приветствоваться. Технология

47 рециркуляции воды также подразумевает, что более нет необходимости в размещении рыбоводных заводов в нетронутых районах возле рек. Теперь они могут строиться почти в любом месте, где имеется – намного меньший, чем прежде – источник чистой, не содержащей патогенов воды. Поэтому ФАО с удовольствием поддержала реализацию данных проектов, которые смогут воодушевить рыбоводов и помочь им водоснабжения Замкнутого во в внедрении будущем. Водоснабжения установок замкнутого Преимущества Установок (УЗВ) (рис.4) –Выращивание различных видов рыб вне зависимости от природных условий; – Полная управляемость режимами выращивания рыбы: температурным, гидрохимическим (кислородным, pH), кормовым; – Ускоренные темпы роста рыб и повышение эффективности выращивания; – Экономия в расходовании воды; – Рациональное использование водных, земельных и людских ресурсов; жизнедеятельности – Упрощение рыб; – утилизации Проведение продуктов комплекса мероприятий по лечению и изоляции зараженных особей значительно легче, чем в открытых водоемах.

48 Рис.4. Схема УЗВ Эксперименты клариевых сомов биоресурсы и по воспроизводству проводились аквакультура», где на и содержанию кафедре стоят две «Водные установки замкнутого водообеспечения Первое УЗВ (Рис.5,6) обьемом 2,1м3 состоящая из 2 кубов, 4 аквариумов, механического фильтра и 2-х биофильтров а так же УФ-лампы и теплообменника.В А-кубе сидят самцы производители и в Б-кубе самкиклариевых сомов.

49 Рис.5. Первое УЗВ. био фил ьтр А Б А Рис.6. Схема первого УЗВ Ультрафиолетовая кварцевый чехол лампа способна для воды, очистить воду облаченная от в бактерий, вредоносных микроорганизмов без использования химически активных реактивов. Из основных преимуществ, которыми

50 обладают ультрафиолетовые лампы, можно выделить следующие: •Технология, благодаря которой работают УФ-лампы, является безопасной, как для человека, так и для окружающей среды • УФ-лампы для пруда компактны и удобны в эксплуатации • Невысокая стоимость УФ-ламп Лампа ультрафиолетовая преобразует электрическую энергию в мощные уф лучи, позволяющие достаточно эффективно обеззараживать воду, как в закрытых, так и открытых источниках. Благодаря этим лучам, уф лампа аккумулирует их в специальной кварцевой камере, которая помещается в корпус из нержавеющей стали или пластика, защищающая ее от попадания влаги и механических повреждений. УФ лампы для воды с открытым свечением работают, непосредственно контактируя с водой, их корпус надёжно защищён от проникновения влаги, но требует особой осторожности при эксплуатации (рис.7).

51 Рис.7. УФ лампа первого УЗВ Теплообменник.В процессе очистки воды и поддержания температуры воды необходимо довести технологическую воду до температуры, соответствующей биотехническому нормативу. Как правило, она предусматривает подогрев воды (рис. 8). Рис.8. Терморегуляция первого УЗВ

52 Второе УЗВ обьемом 3,737м3состоящая из биофильтра, 8 лотков,раздатки с УФ лампами, барабанного фильтра и приямком(рис. 9,10). Рис.9. Вторая УЗВ вид с верху 194 45 40 Рис. 10. Габаритный чертеж лотка Бактерицидная обработка происходит двумя способами: ультрафиолетом и озоном. УФ – фильтр, или бактерицидная уменьшения циркулирующей обработка степени воды, специализированас бактериального появляющегося при целью загрязнения повышенных биологических нагрузках в системе УЗВ (рис. 11).

53 Рис.11.Раздатка с УФ лампами второго УЗВ Рис.12. Вторая УЗВ - вид на биологическую и механическую очистку. Биологическая очистка

54 Она является распространенным методом очищения воды в установках замкнутого водоснабжения, и принцип работы состоит в утилизации растворенных загрязнений с помощью микроорганизмов посредством процессов минерализации, нитрификации и денитрификации (рис. 12). В процессе биологической очистки итоговым продуктом белкового обмена представляется аммиак(рис. 12,13). Рис.13. Биофильтр с плавающей загрузкой вид сверху, второе УЗВ Механическая очистка воды При удалении водыприменяют взвешенных методы веществ осаждения и из оборотной фильтрации. Осаждение взвешенных веществ совершается в отстойниках разного вида: вертикальных, горизонтальных, радиальных и тонкослойных, оснащенных с целью сбора осадка. Главным отрицательным их фактором являются большие размеры и

55 низкий результат очистки (как правило, не более 35-40%) (рис. 14).. Рис.14. Вторая УЗВ вид на механический барабанный фильтр.1 – воздушный вентиль; 2 – цилиндрический корпус; 3 – фильтрующий элемент; 4 – промывной корпус; 5 – манометр; 6 – входной патрубок; 7 – патрубок для отвода отстоя; 8 – полый вал; 9 – патрубок вывода очищенной воды. Насыщение кислородом является одним из главных компонентов установки замкнутого водоснабжения, так как все биологические большом процессы количестве в установке использования происходят кислорода. в Он распределяется как на дыхание рыб, так и на осуществление окислительных процессов при биологической обработке (рис. 15). Рис.15. Компрессор для подачи воздуха в бассейн

56 3.2. Характеристика экспериментальных рыб В экспериментах по воспроизводству клариевых сомов были использованы 13 самок табл.2 и 18 самцов табл.3. Были произведены морфометрические измерения. Всего проведено 2 эксперимента по воспроизводству. Во время содержания наблюдали за поведением самок и самцов. Таблица 2 Морфометрические измерения самок H, см (ширин масса, № 1 2 3 г. 1200 660 1900 L, l,см h см. . (высот (обхват 52 42 69 а), см 8,5 6,5 8 ), см 26 20,5 28 58 48 66 O а H(ширина головы ),см ) 8 8,5 7 7 9 9,5 Продолжение таблицы 2 43, 4 760 5 39 6 20,5 6,5 6,5 5 6 7 8 9 2222 1640 560 560 650 66 60 42 45 46 47, 56,5 52 39 41 41,5 8,5 8 5 5 5,5 30 29 17,5 16 19 9 9 5,5 5 6,5 9 7,8 6 6,5 6,6 10 650 1 46, 43 5 18,5 6,5 6 11 12 670 600 5 45 48, 42,5 40,5 5 5,5 19 20 6,5 6 7 6,5 13 700 5 50, 44 4,9 20,5 6,5 7 ср. 982,5 9 46,3 6,3 21,9 7,0 7,2

57 Таблица 3 Морфометрические измерения самцов L, H, см см. L,см. H, см длин промысло h, см O, см шири а масс а вая высо обхв голов № 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 а, г. 1452 3274 1560 700 600 900 1500 700 620 620 1150 404 690 510 635 тела 61 71 63 50 51,5 58 64 45 45 46,5 53 42,5 49,5 48 44,5 длина 54 52 56,5 43,5 45 51,5 59 40,5 40,5 42 48,5 37 45 42 40 та 7 9 7 5,5 5 5,5 6,5 5,5 5,5 5 6 4 5 5 5 16 17 18 ср. 640 610 522 949,3 47 49 45,5 51,9 41 43 40 45,6 4,5 5 5 5,6 на ширин ат тела ы 25 7,5 9 31 9 11 23 7,5 9 18 5,5 7 16,5 5 7 18 5,5 8 23 6,5 9,5 18 6 7 18,5 5,5 6,5 16,5 5 6,5 22 8 8 15 4,5 6 17 5 7 17 5,5 6,5 19 5 7 Продолжение таблицы 3 16,5 5,5 7 17 5,5 7 16 5,5 6,5 19,3 6,0 7,5 По результатам проведенных экспериментов проведен анализ и сделаны рекомендации по воспроизводству сомов на кафедре.

58 Глава 4. Отработка технологических приемов воспроизводства клариевого сома заводским методом на базе УЗВ кафедры ВБА ФГБОУ ВО «КГЭУ». 4.1. Характеристика пригодных для воспроизводства особей и технология преднерестового содержания Преднерестовое содержание производителей клариевого сома проходило на кафедре в экспериментальных установках замкнутого водоснабжения при температуре воды 26°С. Кормили рыб гранулированными комбикормами «ЛимКорм». Норма кормления составляла 1-3% от массы тела, количество кормлений варьировало от одного до трех раз в день. Как видно из представленных в таблице 2, рис.16 данных половозрелые самки имели длину тела от 42 до 66 см и массу от 560 до 2222г. Самки клариевого сома 2500 Масса , г 2000 1500 f(x) = 49.7 exp( 0.06 x ) R² = 0.94 1000 500 0 40 45 50 55 60 65 Длина тела, см Рис.16.Размерно-весовая характеристика самок производителей клариевого сома 70

59 Самцы клариевого сома 3500 Масса , г 3000 2500 f(x) = 34.69 exp( 0.06 x ) R² = 0.88 2000 1500 1000 500 0 40 45 50 55 60 65 70 75 Длина тела, см Рис.17.Размерно-весовая характеристика самцов производителей клариевого сома Из представленных в таблице 3, рис.17 данных видно, что половозрелые самцы имели длину тела от 42,5 до 71 см и массу от 522 до 3274 г. При преднерестовом содержании сомы содержались в бассейнах объемом 0,4 м3 при плотности посадки до 30 кг/м 3 и температуре воды 26-27оС. За два дня до стимуляции рыба не кормилась. 4.2. Оценка возможности использованиясуспензиисурфагона для инъецированияклариевых сомов. Стимуляция производителей проводилась суспензией сурфагона гормона (синтетический (ГнРГ) – аналог ганадотропин-рилизинг люлиберина).Для эксперимента были

60 отобраны две крупные самки (№5 и №6) и два самца (№1 и №3). После инъецирования отбирались половые продукты (рис.18,19), количество которых отражено в таблице 4. Рис.18Семенники самца клария Рис.19Икра клария

61 После инъецированияклариевые сомы были помещены в бассейны для дозревания икры и молок. Созревание сомов наступало через 10 - 20 часов в зависимости от индивидуальных особенностей рыб. Через 10 часов самки проверялись на текучесть икры через каждый час. Время созревания самок наступило через 12 часов после инъекции и через 16 часов.Самок, хорошо отдающих икру, отсаживали в отдельную емкость и начинали подготовку к получению молок. При отборе икра сцеживалась в сухую продезинфицированную емкость от каждой самки отдельно (рис.19). Из-за биологических особенностей половой системы самцов семенники получали методом забоя. Семенной материал сцеживался из семенников для оплодотворения икры. Затем икра оплодотворялась в течение 2-3 минут сухим способом (рис.20) и затем обесклеивалась раствором танина в течение 40 секунд. Икра размещалась в аппаратах Вейса при температуре воды 27 Вейса длилась до 18 часов. о С. Инкубация икры в аппарате

62 Рис.20 Оплодотворение икрыклария сухим способом Результаты инъецирования представлены в таблице4, рис.21-24. Таблица 4. Характеристики производителей африканского клариевого сома Пол Масса Кол- плодовитос Масса рыбы особи, во ть, шт./кг семенника семенного г икры, самки 2222 1640 самцы 1452 1560 г 3,3 127 ,г Кол-во материала ,г 891,0 46463,4 30,3 12,77 23,03 9,71 Как видно из приведенных в таблице 1 и на рис. 18 и 19 данных относительная рабочая значительно варьировала – от 0,9 рыбы до 46 тыс. шт/кг. плодовитость самок тыс. икринок/кг массы

63 масса рыбы, г 2500 2222 2000 1640 1500 1000 500 0 самка 5 самка 6 Рис.21.Масса экспериментальных самок производителей клариевого сома относительная рабочая плодовитость, тыс.шт/кг 46.46 0.89 самка 5 самка 6 Рис.22.Относительная рабочая плодовитость самок производителей клариевого сома Проведенный эксперимент показал, что отсутствует прямая зависимость рабочей плодовитости самок от их массы. Этот факт может быть связан как со старением самок,

64 так и с возможной резорбцией икры.Половые циклы самок требуют дальнейшего воспроизводства. В возможность и то исследования же время для задач эксперимент показал эффективность использования суспензиисурфагона для инъецирования. масса рыбы, г 1580 1560 1540 1520 1500 1480 1460 1440 1420 1400 1380 1560 1452 самец 1 самец 3 Рис.23. Масса экспериментальных самцов производителей клариевого сома 35 30.3 30 Масса,г 25 23.03 20 15 12.77 9.71 10 5 0 самец 1 масса семенника, г самец 3 количество семенного материала,г Рис.24. Масса семенников и семенного материала экспериментальных самцов производителей клариевого сома У самцов масса семенников варьировала от 0,82 до 2,09% от массы тела. Проведенный эксперимент показал

65 возможность и эффективность использования суспензии сурфагона для инъецирования самцов однократной дозой препарата. Таким образом, эксперимент выявил:  возможность преднерестового содержания клариевых сомов в условиях малой УЗВ (рис.25); Рис.25.Клариевые сомы вУЗВ  применимость воспроизводства технологических клариевого сома заводским приемов методом (рис.26,27,28);  возможность использования для инъецирования суспензиисурфагона;  необходимость забоя самцов для получения половых продуктов ;

66  возможность получения икры у самок методом сцеживания и сохранения им жизни;  оплодотворения икры сухим методом;  применимость танина для обесклеивания оплодотворенной икры;  удобство инкубации в инкубационном аппаратеВейса (рис.26). Рис.26.Инкубация обесклеенной икры клариевого сома в аппаратах Вейса на кафедре Водные биоресурсы и аквакультура Инкубация проходила в штатном режиме в аппаратах Вейса (Рис.26).Выклев начался через 20 оплодотворения при температуре воды 27℃. часов после

67 Рис.27. Молодь кларивых сомов, выращенная на кафедре Водные биоресурсы и аквакультура Рис.28.Подросшая молодь кларивых сомов, выращенная на кафедре Водные биоресурсы и аквакультура Как отмечается в работах по разведению клариевого сома (Власов, 2010), в процессе производства размножения африканского сома необходимо специальное оборудование в виде специальных бассейнов, наполненных очищенной водой из колодцев или вода из открытых водоемов. Особенностью

68 применения такого метода является возможность использования теплой воды из аппаратов инкубатора, что в дальнейшем способствует хорошим результатам при выращивании африканского сома (Schulz,2003, Никифоров А,2005, Завьялов,2010). В проведенных экспериментах для содержания производителей сома использовались отдельные бассейны УЗВ. С целью эффективного получения здоровых половых продуктов производили стимуляцию заменителем гормональных препаратов. Проведенный дозировки эксперимент позволил гонадотропныхпрепаратов, воспроизводстваклариевых определить эффективные сомов. для Стимуляция производителей проводилась суспензией сурфагона синтетического аналогаганадотропин-рилизинг - гормона (ГнРГ) – люлиберина. Дозировки в эксперименте использовались 3мг/кг массы тела сома. В сурфагон добавлялась добавка растительного происхождения сурфагона. Для - раунатин однократной для лучшего инъекции всасывания использовалось суспензия сурфагона с раунатином в количестве 3 мг/кг от массы производителей. Фармакологическое действие раунатина – Раувольфии алкалоиды – гипотензивноеи антиаритмическое. Седативное или успокаивающее действие выражено меньше, чем у резерпина, но по гипотензивному действию не уступает резерпину и часто переносится лучше. 4.3. Характеристики половых продуктов рыб

69 Для количественной искусственного оценки воспроизводства инъецированиясурфагоном были эффективности клариевого сома использованы 12 путем самок (таблица 5) и 9 самцов (таблица 6). 4.3.1. Характеристика полученной икры и плодовитости самок Таблица 5 Характеристика плодовитости самок клариевого сома № масса самки тела, г 1 2 3 4 2222 1640 1900 760 масса кол-во Рабочая % икры, шт в 1 плодовитость,т от массы г 3,3 127 197 66 г. 600 600 580 507 тела 0,15 7,74 10,37 8,68 ыс.шт 1980 76200 114260 33462 икры Продолжение таблицы 5 5 6 7 8 9 10 11 12 средне е 1200 650 560 4000 1780 1650 2300 1800 165 89,4 19 520,6 163 75 180 193,5 450 609 741 365 603 467 600 380 74250 54445 14079 190019 98289 35025 108000 73530 13,75 13,75 3,39 13,02 9,16 4,55 7,83 10,75 1705,2 149,9 541,8 72794,9 8,6 В приведенной таблице 5 представлены показатели, характеризующие плодовитость самок клариевого сома. Масса самок, отдавших икру, варьировала от 560 до 4000 г.

70 Среднее количество икры в грамме составило 540 шт., средняя масса одной икринки – 1,852 мг (рис.29). Рис.29. Икринки клариевого сома во время инкубации

71 Рис.30.Личинки клариевого сома после выклева Для оценки зависимости количества икры от массы тела самок были построены графики рис.31,32. Масса рыбы, г Самки клариевого сома 4500 4000 f(x) = 967.09 exp( 0 x ) 3500 R² = 0.44 3000 2500 2000 1500 1000 500 0 0.00 100.00 200.00 300.00 400.00 500.00 600.00 масса икры, г Рис.31.Зависимость количества икры у самок клариевого сома от массы тела . Самки клариевого сома Масса самок, г 4000 3000 2000 f(x) = 870.55 exp( 0.01 x ) R² = 0.43 1000 0 00 . 0 00 . 20 00 . 40 00 . 60 0 0 00 00 00 00 00 . . . . . .0 .0 0 0 0 0 0 0 0 8 10 12 14 16 18 20 Рабочая плодовитость, тыс. шт. Рис.32. Зависимость рабочей плодовитости самок клариевого сома от массы тела

72 Средняя рабочая плодовитость самок клариевого сома составила 72,8 тыс. шт. Икра оплодотворялась оплодотворяемость икринок сухим составила от методом, 70 до 90%. Выклюнувшиеся личинки представлены на рис.30. 4.3.2. Характеристика семенников и количества молок самцов Характеристика половых продуктов самцов клариевых сомов представлена в таблице 6. Таблица 6 Характеристика плодовитости самцов клариевого сома семенн Масса семенника, г Масса № рыбы , полный без молок г 1 2 3 1452 1560 1500 30,3 12,77 13,6 7,272 3,064 4,8 семенн ик в % ик в % от от массы массы тела тела без 2,09 0,82 0,91 молок 0,50 0,20 0,32

73 4 5 6 7 8 9 600 900 635 1150 610 522 5,12 9,9 1,05 3,6 3,8 4,22 1,31 1,1 0,39 1,6 2,5 1,77 0,85 1,10 0,17 0,31 0,62 0,81 0,22 0,12 0,06 0,14 0,41 0,34 В приведенной таблице 6 представлены показатели, характеризующие плодовитость самцов клариевого сома. Масса самцов, участвующих в размножении, варьировала от 522 до 1560 г. Средняя масса семенников составила 9,37 г. Зависимость массы семенника от массы тела рыбы представлена на рис.28, а связь массы полного семенника с массой пустого – на рис. 29. Масса рыбы, г Самцы клариевого сома 1800 1600 1400 1200 1000 800 600 400 200 0 0.00 f(x) = 658.92 exp( 0.03 x ) R² = 0.48 5.00 10.00 15.00 20.00 25.00 30.00 масса семенника, г Рис.28. Зависимость массы семенников самцовклариевого сома от массы тела рыбы 35.00

Масса пустого семенника, г 74 Самцы клариевого сома 8 7 6 5 4 3 2 1 0 0.00 f(x) = 0.98 exp( 0.07 x ) R² = 0.6 5.00 10.00 15.00 20.00 25.00 30.00 35.00 масса полного семенника, г Рис.29. Зависимость массы полных и пустых без молок семенников самцов клариевого сома Чтобы оценить зависимость количества молок от массы тела самцов клариевого сома был построен рис.30.

75 35 30.3 30 Масса семенников, г 25 20 f(x) = 0.06 x² + 1.31 x + 0.88 15 13.6 12.77 9.9 10 7.27 5 5.12 4.2 4.8 3.8 3.6 f(x) = 0.44 x + 0.46 1.8 3.06 2.5 1.31 1.05 0.39 1.6 1.1 0 522 600 610 635 900 1150 1452 1500 1560 Масса рыб, г полный семенник Столбец1 Polynomial (полный семенник) Linear (Столбец1) Рис.30. Зависимость массы полных и пустых без молок семенников самцов клариевого сома от их массы тела.

76 Как видно из данных таблицы 6 и рис.30, масса пустых семенников у разных самцов отличается в процентном отношении к массе тела значительно меньше, чем полных. Из данных рис.30 видно, что масса полных семенников зависит от массы рыбы. Уравнение зависимости представлено на рисунке 30. Эти данные говорят о том, что масса семенной жидкости зависит от рациона питания и хороших условий содержания. Проведенная оценка качества молок показала, что молоки всех самцов имели хорошую подвижность спермиев. Таким образом, проведенная экспериментальная оценка половых продуктов производителей клариевого сома выявила:  Средняя рабочая плодовитость самок клариевого сома составила 72,8 тыс. шт.  Икра оплодотворяется сухим методом, оплодотворяемость икринок составила от 70 до 90%.  Среднее количество икры в грамме составило 540 шт., средняя масса одной икринки – 1,85 мг.  Средняя масса семенников составила 9,37 г.  Уравнение связи массы полного семенника массы самца клариевого сома y=0,061х2+ 1,3113х +0,8833 от

77 Глава 5. Рекомендации по воспроизводству клариевых сомов для выращивания в малых УЗВ. Для воспроизводства клариевого сома в малых УЗВ нужно правильно построить биотехнологический процесс по выращиванию, нагулу искусственной и подготовке стимуляции производителей гормонами, к например сурфагоном и раунатином. Он показал, что инъецируемые производители дали отклик на препарат и успешно отдали половые продукты. Можно инъецировать только сурфагоном, но как показала практика, суспензия с раунатином значительно повышает всасывание в кровь сурфагона и отдача икры и молок происходит легче. Инкубация начинается проходит через 20 в аппаратах часов после Вейса. Выклев оплодотворения при температуре воды 27℃. При проведении экспериментальных работ выявились некоторые проблемы. Самки клариевого сома нагуливают икру в течение одного - двух месяцев в зависимости от условий содержания. Условия содержания могут приводить к быстрому созреванию икры. Если опоздать, то начинается резорбция икры. Полученная икра не развивается, а погибает. Если самка еще не созрела, то стимуляция не приводит к отдаче икры. УЗИ диагностику для Возможно, необходимо добавить повышения эффективности воспроизводства сомов. Поскольку самцы при искусственном воспроизводстве погибают, то стадо производителей быстро теряет самцов,

78 что для проблемой. задач воспроизводства становится значимой

79 Выводы 1) Анализ литературных данных показал, что ресурсы океанического промысла истощены и в настоящее время большинство стран, в том числе и Россия, переходит на выращивание рыб и других гидробионтов в искусственных условиях. 2) Индустриальные методы аквакультуры, в том числе и рыбоводство в установках замкнутого водоснабжения, в наибольшей степени отвечают условию значительного увеличения продуктивности разводимых видов рыб, при этом выращивание рыбы ведется экологически чистым по ресурсосберегающим технологиям. Клариевый сом и – перспективный объект выращивания в индустриальных УЗВ. 3) Преднерестовое содержании сомов проходит в бассейнах при плотности посадки до 30 кг/м 3 и температуре воды 26-27оС. За два дня до стимуляции рыба не кормится. 4) Эффективна суспензией стимуляция сурфагона ганадотропин-рилизинг - гормона производителей синтетического (ГнРГ) – аналога люлиберина с добавкой растительного происхождения – раунатина - для лучшего всасывания сурфагона. Дозировки - 3мг/кг массы тела сома. 5) Проведенная экспериментальная оценка половых продуктов производителей клариевого сома выявила:  Средняя рабочая плодовитость самок клариевого сома составила 72,8 тыс. шт.  Икра оплодотворяется сухим оплодотворяемость икринок составила от 70 до 90%. методом,

80 Среднее количество икры в грамме составило 540  шт., средняя масса одной икринки – 1,85 мг.  Средняя масса семенников составила 9,37 г.  Уравнение связи массы полного семенника от массы самца клариевого сома y=0,061х2+ 1,3113х +0,8833 Список используемой литературы 1. Безгачина Т.В., санитарно-эпизоотического форелевого садкового С.Е.Мельникова, А.Н. Результаты состояния хозяйства Козицкий // исследования пресноводного // Т.В.Безгачина, Марикультра Северо- Запада России: Тез. докл. науч.-практ. конф. – Мурманск: ПИНРО, 2000. – С. 16-17. 2. Бурлаченко И.В. Использование пробиотиков на ранних стадиях развития рыб и их влияние на микрофлору, рост и выживаемость личинок ленского осетра // И.В.Бурлаченко, И.В.Банщикова, К.Б.Аветисов, Е.В. Малик // Аквакультура осетровых рыб: достижения и перспективы развития: матер, докл. IV Междунар.науч.- практ. конф., 1315 марта 2006 г., Астрахань. – М.: ВНИРО. – 2006. – С. 227213. 3. Бурлаков, формирования искусственном А.Б. качества Физиологические половых воспроизводстве рыб. механизмы продуктов Первый при конгресс ихтиологов России. Москва, издательство ВНИРО. 1997. - с 213. 4. Власов В.А. Выращивание африканского сома в индустриальных условиях //В.А.Власов, М.Фатталахи, А.О.

81 Касумян// Современное состояние и перспективы развития аквакультуры в России. – М.: МСХ РФ. – 2007. – С. 41-50. 5. Власов В.А. Выращивание клариевого сома (Clarias gariepinus Burchell) при различных условиях содержания и кормления // Научные основы сельскохозяйственного рыбоводства: состояние и перспективы развития. Сборник научных трудов ВНИИ ирригационного рыбоводства. 2010.– С.168-179. 6. Власов В.А. Выращивание клариевого сома при астатичном температурном режиме в УЗВ //В.А. Власов, Е.Ю.Никитина // Сборник студенческих научных работ. М.: МСХА, 2004. – С. 283-287. 7. Власов В.А. Результаты выращивания африканского сома при различных условиях кормления и содержания // Известия ТСХА. – М., 2009. Вып. 3. – С. 136-146. 8. Волкова А.Ю. Зависимость роста молоди ленского осетра от температуры и плотности посадки // Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов Материалы Международной научной конф( 6-9 сентября 2004 г, г Петрозаводск, Республика Карелия, Россия) – Петрозаводск, 2005. – С. 26-31. 9. Гершанович А. Д. Влияние плотности посадки на рост рыб // Успехи современной биологии, 1984. – Т. 98. – № 1. – С. 134-149. 10. Гмыря И.Ф. Рост и физиологическое состояние карпа в зависимости от обеспеченности пищи витаминами авторефдискандбиол наук ВНИИПРХ, 1984. – 27 с. 03 00 10 – Ихтиология -М

82 11. Говоркова Л. К., Калайда М. Л. Проблемы и перспективы использования теплых вод ГРЭС в решении обеспечения населения рыбой.- Международный водно- энергетический форум -2018: сборник материалов докладов/ в 2 т. Т.1.-Казань: Казан.гос.энерг.унт, 2018.- 373 с.- С.113119. 12. Головина Н.А. Итоги и перспективы гематологических исследований в ихтиопатологии // Труды зоологического института АН СССР Вопросы паразитологии и патологии рыб под ред. О.Н. Бауера – Л., 1987.– Т. 171. – С. 115-125. 13. Горизонтов П.Д. Стресс система крови в механизме гомеостаза стресса и болезни //Гомеостаз – М Медицина, 1981. – С. 538-570. 14. Жигин выращивания А.В. Пути объектов и методы аквакультуры интенсификации в установках с замкнутым водоиспользованием(УЗВ): Дис. д.с-х.н. МСХА – М.: 2002 – С.328. 15. Завьялов Рекомендации по А.П., Власов В.А., воспроизводству Есавкин и Ю.И. выращиванию клариевого сома с использованием установок с замкнутым циклом водообеспечения производств. -практич.изд., практич.рук-во - М.: Росинформагротех ФГНУ, 2010 48 с. 16. Заки М. Размножение и развитие Clariasgariepinus (из озера Манзала (Египет)) // Абдула А.// Вопр. ихтиологии. – 1983. – Т. 51. –Вып. 23. – С. 48-58. 17. Карасева Т.А. Влияние препарата "сухая бактериальная культура ацидофильной палочки" на здоровье и рост радужной форели //Т.А.Карасева, Н.К.Воробьева, М.Л.

83 Лазарева // Тез доклнаучпрактконф«Марикультура СевероЗапада России» – Мурманск, 2000. – С. 22 -23. 18. Калайда, М. Л. Биологические основы рыбоводства. Краткая теория и практикум : учеб.пособие / М. Л. Калайда. — СПб. ISBN 978-5-906109-АА-А. Санкт-Петербург : Проспект Науки, 2014. — 224 с 19. Калайда М.Л.Современное состояние и задачи развития аквакультуры в Республике Татарстан/ Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации в свете импортозамещения безопасности и обеспечения страны: материалы продовольственной национальной научно- практической конференции, Саратов, 4-5 октября 2016 г..Саратов: изд. «Научная книга»,2016.-С.38-45. 20. Калайда М.Л. Аквакультура как основа для улучшения качества вод в Республике Татарстан .- Вестник НЦ БЖД.- 2016а.-№3(29).- С.115-122. 21. Калайда развития М.Л., биогазовых Борисова технологий С. на Д. Перспективы водоемах объектов энергетики.- .- Международный водно-энергетический форум -2018: сборник материалов докладов/ в 2 т. Т.1.-Казань: Казан.гос.энерг.унт, 2018.- 373 с.- С.131-137. 22. Катасонов, В. Я. Гомельский Б. И. Селекция рыб с основами генетики. – М.: Агропромиздат. 1991. – С. -208 с. 23. Карпуць Т.Л. Факторы влияющие на иммунную систему циплятбройлеров // Весщ Акад. Акрар. Навук Белорус. – 1995. – № 932. –С. 126-129. 24. Киселев А.Ю. Агрогидроэкосистема: безотходное производство сельскохозяйственной рыбной продукции

84 //А.Ю.Киселев, В.Н.Коваленко, В.А.Борщев// Рыбоводство. – 1997. – № 2. – С. 13. 25. Киселев А.Ю. Технология выращивания товарного осетра в установках с замкнутым циклом водообеспечения //А.Ю.Киселев,В.А. Слепнев, В.И. Филатов //– М.: ВНИИПРХ ,1995 – С.19. 26. Ковалев К.В. Выращивание клариевого сома (Clariasgariepinus) в УЗВ при различных плотностях посадки // К.В.Ковалев, В.А. Власов // М.: МСХА, – 2002,–С.309-312. 27. Колганова Т.А. К вопросу о механизме защитного действия пробиотиков // Биомедицинские технологии. – 2001. –Вып. 16. - С. 23-29. 28. Коморкин Н.А. Влияние комбикормов с окисленным жиром на осмотическую резистентность эритроцитов и заболеваемость карпа в процессе зимовки//Н.А.Коморкин, Г.И. Тихомирова // Тез.докл. IV Всесоюз. совещ. по рыбохоз. использ.теплых вод. – М.: Минрыбхоз СССР, Атомэнергопроект, 1990. – С. 169-170. 29. Корвоин Р.Н. Справочник ветеринарного врача птицеводческого предприятия (ВНИВИП). – Спб. – 1995. - Т. 2. – С. 92-94. 30. Крыжановский С. Г. Эколого-морфологические закономерности развития карповых, вьюновых и сомовых рыб // Тр. Ин-та морфологии животных АН СССР.–1949.вып.1.236с. 31. Крюков, В.И., Ю.А. Музалевская, П.А. Юшков. Рыбоводство. Разведение карпа заводским способом. Учебнометодическое пособие. –Орёл: Издательство А. Вопобьёва. 2007. -44.

85 32. Кулаков Г.В. Применение пробиотика «Субтилис» в промышленном рыбоводстве: итоги и перспективы. // Г.В. Кулаков, B.C.Крюков Всероссийской // научно Сборник – тезисов практической докладов конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов». Российская академия наук, 16-18 июля 2003 г. – С. 86-87. 33. Матишов Г.Г. Опыт выращивания осетровых рыб в условиях замкнутой системы водообеспечения для фермерских хозяйств // Г.Г. Матишов, Д.Г. Матишов, Е.Н. Пономарева и др// Ростов-на-Дону, Изд-во ЮНЦ РАН, 2006. 72 с. 34. Микодина Е.В. Биологические основы и биотехника аквакультуры африканского сомикаClariasGariepinus //Е.В. Микодина, Е.Н. Широкова //Информ. материалы ВНИЭРХ. – Вып. 2. – Сер. Аквакультура. – 1997 г. – С.44. 35. Мовсесова, Н.В. Замкнутые системы в аквакультуре: необходимы экономические исследования / Н.В.Мовсесова, А.В.Жигин // Научные труды Дальневосточного государственного технического университета. - 2011. - №23. С. 250-255. 36. Микряков В.Р. Влияние транспортировки на состав лейкоцитов стерляди //В.РМикряков.Л.В.Балабанова, Д.В. Микряков // Тепловодная аквакультура и биологическая продуктивность водоемов аридного комплекса. Международный симпозиум, 16-18 апреля 2007: материалы и доклады., Астрахан. гос. тех.ун-т. – Астрахань: изд-во АГТУ, 2007.– С. 492-494.

86 37. Микряков Acipenserruthenus Микряков, В.Р. на Реакция лейкоцитов гормониндуцируемый Л.В.Балабанова, Д.В. стерляди стресс Микряков // //В.Р. Вопросы ихтиологии – 2009. – Т. 49 – № 4 – С. 554-557. 38. Микряков Д.В. кортикостеройдных гормонов Влияние на некоторых структуру и функцию иммунной системы рыб авторефдискандбиол наук – М ИПЭЭ РАН, 2004. - 24 с 39. Микряков Д.В. Влияние транспортировки на состав лейкоцитов периферической крови и иммунокомпетентных органов стерляди Acipenserruthenus L //Д.В. Микряков, Л.В.Балабанова, В.Р.Микряков //Осетровое хозяйство, 2010. № 4 – С. 10 - 15. 40. Мусселиус В.АБолезни рыб и борьба с ними в условиях современного рыбоводства // Труды зоологического института АН СССР Вопросы паразитологии и патологии рыб под ред. О.Н. Бауера – Л. , 1987. – Т. 171. – С. 14-21. 41. Никифоров строения А.И. Особенности африканского сома морфологического Clariasgariepinus // Аквакультура и интегрированные технологии: проблемы и возможности: Сборник научных трудов ГНУ ВНИИР и РГАУМСХ им. К.А.Тимирязева по итогам Международной научнопрактической конференции. М. 2005 С. 215-219. 42. Остроумова И.Н. Проблема повышения качества кормов в индустриальном рыбоводстве // Инф. пакет. Сер. Аквакультура корма и кормления рыб. – М.: ВНИЭРХ, 1997. – Вып.1 – С. 1-12. 43. Панасенко кормах для рыб В.В. Использование компании «Провими» пробиотиков // Состояние в и

87 перспективы развития фермерского рыбоводствааридной зоны: Тез.докл. междунар. науч. конф. (Азов, июнь 2006 г.). – Ростов н/Д: ЮНЦ РАН, 2006. – С. 70-71. 44. Пинегин Б.В. Дисбактериоз кишечника. //Б.В.Пинегин, В.П.Мальцев, В.М.Коршунов // М., – 1984. - 168 с. 45. Проскуренко И.В. Замкнутые рыбоводные установки. – М.; ВНИРО 2003 – С. 143. 46. Привезенцев, Ю. А. Интенсивное прудовое рыбоводство. – М.: Агропромиздат. 1991. – С. 85-99. 47. Серпунин Г.Г. Гематологические показатели адаптации рыб дисс д-ра биол наук – Калининград, 2002. - 482 с 48. Серпунин, Г.Г. Биологические основы рыбоводства. -М: Изд. Колос , 2009. – с 384. 49. Скляров В.Я. Корма и кормопроизводство в России // Рациональное использование перспективное направление пресноводных реализации экосистем – национального проекта «Развитие АПК» (2007, Москва). Международная научно-практическая конференция, 17-19 декабря 2007 г.: материалы и доклады / ГНУ ВНИИР Россельхозакадемия. – М.: Изд-во Россельхозакадемии, 2007. – С. 74-75. 50. Томеди Э.М.Клариевый сом – перспективный объект аквакультуры II //Э.М. Томеди, А.М.Тихомиров //Рыбоводство и рыболовство. – М– 2000. –Вып. 4, –С.14. 51. Уинтон Ч. Техническое обеспечение рыбоводства М.: Агропромиздат.1986 – С. 342.

88 52. Хаитов Р.М. Иммунитет и стресс // Р.М.Хаитов, В.П. Лесков // Российский физиологический журнал им ИМ Сеченова, 2001 – Т 87 -№8 – С. 1060-1072. 53. Шаляпина Т.С. Создание фермерского хозяйства по промышленному выращиванию клариевого сома в условиях установок замкнутого инвестиционный водоснабжения проект, (УЗВ)// технико-экономическое предложение Харьков 2012. – С. 1-15. 54. Шивокене Я.С. Численность и биомасса бактерий пищеварительного тракта прудовых рыб в зависимости от особенностей их питания // Вопросы ихтиологии. – 1985. – Т.25, Вып. 5. – С. 821-827. 55. Щербина М.А. Кормление рыб в пресноводнойаквакультуре. // М.А. Щербина, Е.А. Гамыгин// – М.: Изд-во ВНИРО, 2006. - 360с. 56. Юхименко субалина для профилактики Л.Н. коррекции БГС // Перспективы микрофлоры Л.Н.Юхименко, использования кишечника Г.С.Койдан, и Л.Я. Бычкова // Тезисы доклнаучпрактконф "Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре" – М. МИК, 2000. – С. 133 -136. 57. Яржомбек А.А. Биологические ресурсы роста рыб – М.: ВНИИРО. 1996 – С.165 58. Bruton M.N. The breeding biology and early development of Clariasgariepinus (Pisces, Clariidae) in Lake Sibaya, South Africa, with a review of breeding in species of the subgenus Clarias (Clarias). // Trans. Zool. Soc. Lond. 1979. 35,–P. 1-45.

89 59. Casillas E., Smith L.S. Effect of stress on blood coagulation and haematology in ainbow trout (Salmogiardneri). – J. Fish Biol., 1977. – Vol. 10. – № 5. – P. 481-491. 60. Chervinski, J. Salinity tolerance of young catfish, Clariaslazera (Burchell) // Journal of Fish Biology. 1984. 25, – P. 147-149. 61. Clay D.Preliminary observations on salinity tolerance of Clariaslazera from Israel.// Bamidgeh 1977. 29, – P.102-109. 62. Conceicao L., Verreth J., Scheltema T. and Machiels M. A simulation model for the metabolism of yolk saclarvae of the African catfish, Clariasgariepinus (Burchell). //Aquaculture and Fisheries management 1993. 24, –P. 431-443. 63. De Kimpe P. Micha, J.C. First guidelines for the culture of Clariaslazera in Central Africa.// Aquaculture 1974. 4, – P. 227-248. 64. Diab S. Feeding up wards prevents waste //Fish Farm.Int. –1995.-22, № 2.–P. 29. 65. Eckel B. Probiotics can improve intestinal microbe balance and feed hygiene // Feed tech. – 1999. – №7. – P. 39 - 41. 66. Legendre M. Seasonal changes in sexual maturityand fecundity, and HCG-induced breeding of the catfish. Heterobranchuslongifilis Val. (Clariidae) reared in Ebrie lagoon (Ivory Coast). // Aquaculture, 1986. 55,–P. 201-213. 67. Li Gui-feng, Li Hai-yan, Bi Ying-zuo // Y. Fish.Sci China,2001–v.8, 2, – P.72-75. 68. Pickering A.D. Introduction: the concept of biological stress // Stress and Fich. A.D. Pickering (ed.). – London-N.Y.: Acad. Press, 1993. – P. 1-9.

90 69. R.W. Schulz, W. van Dijk J, Bogerd//Sertoli cell proliferation and FSH signalling in African catfish, Clariasgariepinus March 2003, Volume 28, Issue 1– 4, pp 223– 224 ISSN0920-1742 70. Rijn J.V. Chemical, physiclal and biological parameters of superintensive concrete fish ponds / J.Van Rijn, S.P.Stutz, S.Diab, M.Scilo // Bamidgeh. –1986. – 38, № 2. – P. 35-43. 71. Sanders, M.E., Morelli, L., Tompkins T.A. Sporeformers as Human Probiotics: Bacillus, Sporolactobacillus, and Brevibacillus // Compr. Rev. Food Sci. and Food Safety. – 2003. – Vol. 2. – P. 101-110. 72. T. T. Gbem J. K. Balogun F. A. Lawal P. A. Annune J. Auta//Sublethal Effects of Tannery Effluent on Some Hematological Indices and Growth of Clariasgariepinus (Teugels) December 2003, Volume 71, Issue 6, pp 1200–1206 Cite ISSN0007-4861 73. Wedemeyer G. The role of stress in the disease resistance of fishesin // Symposium on Disease of Fishes and Shellfishes. – Washington, 1970. –Spec. Publ. No. 5. – P. 30 - 35. 74. Гибритизацияклариевого сома [Электронный ресурс]URL:http://aquavitro.org/2011/03/06/poluchenie-malkovgibridov-soma/(дата обращения 30.05. 20).

91 Приложение А Нормативы по воспроизводству и выращиванию сома в УЗВ (Власов, 2010) Показатели Значение Содержание производителей и ремонтного молодняка Возраст производителей (самки и самцы) при нересте: первом 12 мес. втором 14 мес. Масса производителей (самки и самцы) в донерестовый период, кг 1-1,5 Соотношение самок и самцов 1:1 Резерв производителей (самки и самцы), % 100 Средняя масса ремонтной группы во время отбора, г: первого 40-60 второго 400-500 третьего 800-1000 Площадь маточных бассейнов для 3-5 ремонтной группы, м2 Рекомендуемая глубина бассейна, м 0,8-1 Время водообмена в бассейне, мин 60-80 3 Плотность посадки рыб, кг/м : ремонтная группа 100-120 производители 80-100 Температура воды При нагуле производителей и в 26-28 преднерестовый период, °С Содержание в воде растворенного Не менее 2 кислорода для самцов и самок, мг/л Предельно допустимая концентрация веществ в воде, мг/л: аммонийный азот До 10 нитриты До 1,0 нитраты До 100 взвешенные вещества До 30 pH 6-8 Отход ремонтного молодняка массой 1-5 от50 до 500 г, % : за время откорма производителей 1-5 в преднерестовый период 1-5

92 Продолжение таблицы за период нереста: самки самцы Воспроизводство сомов Доза гипофизарных инъекций, мг/кг живой массы самки: предварительная разрешающая Время между инъекциями, ч. Количество спермы на 1 кг икры, мл Оплодотворяемость икры, % Способ оплодотворения Рабочая плодовитость, тыс. шт./кг Масса оплодотворенной икринки, мг Объем эякулята, мл Длительность поступательного движения спермиев, баллы Цвет спермы (молок) Консистенция спермы (молок) Инкубационный цех Тип инкубационного аппарата Расход воды на 1 кг икры, л/мин Температура воды, °С Содержание кислорода, мг/л Продолжительность инкубации, ч Освещенность аппаратов Глубина слоя воды, см Выход свободных эмбрионов, % Требования к среде для выдерживаниясвободных эмбрионов; температура, °С содержание кислорода, мг/л аммонийный азот, мг/л нитриты, мг/л нитраты, мг/л pH Подращивание личинок Плотность посадки, тыс. шт/м3 5 100 0,3-0,5 3-4 12 3-5 (от трех самцов) 50-70 сухой 60-100 Не менее 1-1,1 2,5-3,5 4-5 Белая, кремовая Густая (сливковидная) Лотковый 8-10 26-28 Не менее 5,0 22-24 Затенение (сумерки) 5-10 45-65 26-28 Не менее 5 Не более 4 0,2 До 50 6,5-7,5 100-200

93 Водообмен, мин Глубина воды, см Световой режим 80-100 10-15 Затенение Продолжение таблицы Время до выхода на «плав», ч 48-72 Скорость течения воды, см/с 1-3 Подращивание личинок до массы20- 10 50 мг, сутки Сохранность, % 75-80 Науплии Артемии Корм салина Норма кормления, % 100-80 Кратность кормления в сутки, разы 12-24 Выращив ание молоди массой до 50 мг П 5 3 лотность посадки, тыс. шт/м 0-100 О 0 3 бъем бассейна, м ,5-1,0 Г 1 лубина слоя воды, см 5-20 В 8 одообмен, л/мин 0-100 Т 2 емпература, °С 6-28 С Н одержание кислорода, мг/л е менее 5 А Н ммонийный азот, мг/л е более 4 Н 0 итриты, мг/л ,2 Н Д итраты, мг/л о 50 p 6 H ,5-7,5 Выращив ание молоди массой от 50 мг до 1 г П 2 родолжительность, сутки 0 П 3 3 лотность посадки, тыс. шт./м 5,0 С 3

94 корость течения воды, см/с -5 Р ецепт комбикорма (стартовый), %: с ырой протеин 5 0-55 с ырой жир 1 2-14 Н ормы кормления от массы рыбы, % 3 0-20 К ратность кормления в сутки, разы 1 2-24 З атраты корма на 1 кг прироста, кг ыход рыбопродукции, кг/м бъем бассейна, м 3 3 0 ,7-0,8 В 2 5-30 О 0 ,5-1 Г лубина воды, см 2 0-30 В одообмен, мин 8 0-100 Т емпература, °С 2 6-28 С одержание кислорода, мг/л Н е менее 5 А ммонийный азот, мг/л Н е более 4 Н итриты, мг/л 0 ,2 Н итраты, мг/л Д о 50 p H 6 ,5-7,5 Выращив ание молоди массой от 1 до 50 г П 4 родолжительность, дни 0 Продолжение таблицы П З оказатели начение С 8 охранность, % 5-90 С

95 ортировка: п 4 ервая при массе -6 г в торая ыход рыбопродукции, кг/м 2 0-30 г В 3 Д о 100 П оказатели лотность посадки, тыс. шт/м З начение 3 П 2 -2,5 В 6 одообмен, мин 0-80 Г 4 лубина воды, см 0-50 Р ецепт комбикорма А К-1ФП Н 2 орма кормления, % 0-7 З 0 атраты корма, кг/кг прироста ,8-1 К 1 ратность кормления в сутки, разы 2-8 Т 2 емпература,°С 6-28 С одержание кислорода, мг/л: д о массы рыбы 25-30 г Н е менее 5 с выше 25-30 г Н е менее 2 А ммонийный азот, мг/л Н е более 6 Н итриты, мг/л 0 ,3 Н итраты, мг/л Д о 60 p H ание рыбы массой от 50 до 500 г П родолжительность, сутки 6 ,5-7,5 Выращив 5 0

96 С охранность, % 9 0-95 С ортировка: п ервая при массе 5 0г в торая 50-300 г ыход рыбопродукции, кг/м лотность посадки, шт/м 2 3 3 В д о 200 П 3 50-400 В одообмен, мин 8 0-120 Г лубина воды, см 6 0-80 Т ип комбикорма А К-2ФП Н орма кормления, % 7 -4 З атраты корма, кг/кг прироста 1 -1,2 К ратность кормления в сутки, разы 8 -6 Т емпература, °С 2 6-28 П оказатели З начение С одержание кислорода, мг/л Н е менее 2 А ммонийный азот, мг/л Н е более 8 Н итриты, мг/л 0 ,3 Продолжение таблицы Н итраты, мг/л о 80,0 p H д 6 ,0-8,0 Выращив ание товарной рыбы до массы 1кг П 5

97 родолжительность, дни 0 С охранность, % 9 5-98 Сортировка: п ервая при массе 5 00 г в торая ри реализации ыход рыбопродукции, кг/м лотность посадки, шт/м П 3 3 В Д о 350 П 3 00-350 В одообмен, мин 8 0-120 Г лубина воды, см 8 0-120 Т ип комбикорма А К-2ФП, АК-ЗФП Н орма кормления от массы, % 3 -4 З атраты корма, кг/кг прироста 1 ,2-1,4 К ратность кормления в сутки, разы 4 -6 Т емпература, °С 2 6-28 С одержание кислорода, мг/л Н е менее 2 А ммонийный азот, мг/л Н е более 10 Н итриты, мг/л 0 ,4 Н итраты, мг/л Д о 100 p H 6 -8

Рецензии:

Авторизуйтесь, чтобы добавить рецензию

- у работы пока нет рецензий -

Отзывы:

Авторизуйтесь, чтобы оставить отзыв