БАЛАНС АЗОТА У ЛАКТИРУЮЩИХ КОРОВ ПРИ ВКЛЮЧЕНИИ В РАЦИОН РАЗНОГО УРОВНЯ БЕЛОГО ЛЮПИНА

Алешин Дмитрий Евгеньевич

БАЛАНС АЗОТА У ЛАКТИРУЮЩИХ КОРОВ ПРИ ВКЛЮЧЕНИИ В РАЦИОН РАЗНОГО УРОВНЯ БЕЛОГО ЛЮПИНА

Высокая реализация генетического потенциала молочной продуктивности крупного рогатого скота в полной мере проявляется при полноценном и сбалансированном кормлении, оказывающее значительное влияние на здоровье, рост, молочную продуктивность и высокую экономическую эффективность производства. Потребности дойных коров в энергии могут восполняться за счет окисления углеводов, жиров и белков, а в незаменимых аминокислотах – только за счет потребления в составе кормов рациона. Несбалансированность рациона по энергии и протеину приводит к увеличению стоимости продукции, а расход концентратов увеличивается в 1,4-1,6 раза. Проблема дефицита кормового протеина в молочном скотоводстве остается наиболее актуальной. В Российской Федерации и за рубежом особое внимание уделяется вопросам протеинового питания высокопродуктивных коров. Исследованиями доказано, что восполнение дефицита белка невозможно решить без знания процессов распада кормового протеина и микробного синтеза в рубце жвачных животных. Дефицит кормового протеина или незаменимых аминокислотах у животных с низкой продуктивностью может быть восполнен за счет микробного синтеза в рубце, а потребность у высокопродуктивных молочных коров удовлетворяется за счет образования в рубце микробного протеина и аминокислот и поступлением в кишечник полноценного белка нерасщепляемого в рубце. Для оптимизации рубцового пищеварения в рационах дойных коров должны находиться легкопереваримые неструктурные углеводы, богатые энергией, необходимой микрофлоре для использования аммиака и синтеза микробного протеина. В кормлении крупного рогатого скота необходимо учитывать: расщепляемый, нерасщепляемый, растворимый, нерастворимый протеин; степень его расщепления и растворимости в рубцовой жидкости; незаменимые аминокислоты. Доля концентрированных кормов, богатых энергией и сырым протеином, в кормопроизводстве в основном представлены кормами животного происхождения: зерном сои, соевым жмыхом и шротом и др. Однако, жесткие требования к использованию генетически модифицированной сои и запрет её использования в кормлении животных в отдельных странах Евросоюза способствует поиску новых источников растительного белка, в том числе к люпину. В Российской Федерации культивируют несколько видов люпина (узколистный, желтый и белый), которые выращивают во многих регионах. Испытания различных зернобобовых показали, что белый люпин имеет ряд преимуществ перед другими культурами и перед соей: высокую урожайность, пониженный уровень клетчатки (7- 10 %). Основное преимущество белого люпина – высокое содержание протеина (до 43 %), сбалансированного по аминокислотному составу, он является хорошим источником углеводов, жира с высоким уровнем ненасыщенных жирных кислот, минеральных веществ и витаминов. Зерно белого люпина сорта Дега относится к низкоалкалоидным сортами с концентрацией алкалоидов 0,025 % и ниже (при предельно допустимой концентрации 0,04 %). Зерно не нуждается в термической обработке, перед скармливанием, поскольку не содержит ингибиторов трипсина и высокого уровня уреазы. В связи с вышеизложенным, научный и практический интерес представляет изучение баланса азота у лактирующих коров при включении в состав комбикорма разного уровня зерна белого люпина. DOI: 10.25970/nauchkor.v043-rn48

Сельское и лесное хозяйство

Дипломы

Вуз: Российский государственный аграрный университет- МСХА имени К.А. Тимирязева (РГАУ-МСХА)

ID: 5a13247c5f1be75e65655f54

UUID: eaf99fc0-b051-0135-c62a-525400003e20

Язык: Русский

Опубликовано: больше 6 лет назад

Просмотры: 959

166.84

Алешин Дмитрий Евгеньевич

Российский государственный аграрный университет- МСХА имени К.А. Тимирязева (РГАУ-МСХА)

Комментировать 10

Рецензировать 3

Скачать - 0 байт

Поделиться работой

АННОТАЦИЯ Дипломная работа выполнена в соответствии со структурой выпускной квалификационной работой и требованиям к ее содержанию и состоит из введения; обзора литературы; методики и материалов исследования; результатов исследований; выводов; предложений производству; библиографического списка и приложений. Освещены особенности строения желудочно-кишечного тракта, процессов пищеварения у жвачных животных и обмена веществ. Особое внимание уделено микрофлоре пищеварительной системы лактирующих коров. В собственных исследованиях рассмотрены вопросы применения комбикормов, содержащих зерно белого люпина в рационах лактирующих коров. Полученные данные позволяют сделать предложения производству по использованию комбикорма с зерном белого люпина и его влиянию на баланс азота и использование питательных веществ высокопродуктивными коровами. Библиографический список содержит 132 источника, в том числе за последние 5 лет – 53, монографии – 23, иностранные источники – 16.

4 СОДЕРЖАНИЕ С ВВЕДЕНИЕ ...................................................................................................................... 6 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ ............................................................................................... 8 1.1 Особенности пищеварения и обмена веществ у крупного рогатого скота ... 8 1.2 Потребности в протеине ................................................................................... 20 1.3 Потребности в аминокислотах ......................................................................... 33 1.4. Источники кормового протеина ..................................................................... 35 1.4.1 Небелковые азотистые соединения......................................................... 35 1.4.2 Зернобобовые культуры и корма микробиологического синтеза ....... 37 1.4.2.1 Горох кормовой...................................................................................... 38 1.4.2.2 Соя кормовая .......................................................................................... 39 1.4.2.3 Люпин кормовой .................................................................................... 42 1.5 Баланс азота........................................................................................................ 53 2. МЕТОДИКА И МАТЕРИАЛ ИССЛЕДОВАНИЙ ................................................. 61 2.1 Цель и задачи исследования ............................................................................. 61 2.2 Материал и методика исследований................................................................ 61 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ ......................................................................... 67 3.1 Анализ зерна люпина по аминокислотному составу ..................................... 67 3.2 Молочная продуктивность и качественные показатели молока .................. 75 подопытных коров ................................................................................................... 75 3.3 Баланс азота подопытных животных .............................................................. 84

5 ВЫВОДЫ ....................................................................................................................... 88 ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ.......................................................................... 89 БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК ......................................................................... 90 ПРИЛОЖЕНИЯ ........................................................................................................... 105

6 ВВЕДЕНИЕ Высокая реализация генетического потенциала молочной продуктивности крупного рогатого скота в полной мере проявляется при полноценном и сбалансированном кормлении, оказывающее значительное влияние на здоровье, рост, молочную продуктивность и высокую экономическую эффективность производства. Потребности дойных коров в энергии могут восполняться за счет окисления углеводов, жиров и белков, а в незаменимых аминокислотах – только за счет потребления в составе кормов рациона. Несбалансированность рациона по энергии и протеину приводит к увеличению стоимости продукции, а расход концентратов увеличивается в 1,4-1,6 раза [44]. Проблема дефицита кормового протеина в молочном скотоводстве остается наиболее актуальной. В Российской Федерации и за рубежом особое внимание уделяется вопросам протеинового питания высокопродуктивных коров. Исследованиями доказано, что восполнение дефицита белка невозможно решить без знания процессов распада кормового протеина и микробного синтеза в рубце жвачных животных [61, 111]. Дефицит кормового протеина или незаменимых аминокислотах у животных с низкой продуктивностью может быть восполнен за счет микробного синтеза в рубце, а потребность у высокопродуктивных молочных коров удовлетворяется за счет образования в рубце микробного протеина и аминокислот и поступлением в кишечник полноценного белка, нерасщепляемого в рубце. Для оптимизации рубцового пищеварения в рационах дойных коров должны находиться легкопереваримые неструктурные углеводы, богатые энергией, необходимой микрофлоре для использования аммиака и синтеза микробного протеина. В кормлении крупного рогатого скота необходимо учитывать: расщепляемый, нерасщепляемый, растворимый, нерастворимый протеин; степень его расщепления и растворимости в рубцовой жидкости; незаменимые аминокислоты.

7 Доля концентрированных кормов, богатых энергией и сырым протеином, в кормопроизводстве в основном представлены кормами животного происхождения: зерном сои, соевым жмыхом и шротом и др. Однако, жесткие требования к использованию генетически модифицированной сои и запрет её использования в кормлении животных в отдельных странах Евросоюза способствует поиску новых источников растительного белка, в том числе к люпину. В Российской Федерации культивируют несколько видов люпина (узколистный, желтый и белый), которые выращивают во многих регионах. Испытания различных зернобобовых показали, что белый люпин имеет ряд преимуществ перед другими культурами и перед соей: высокую урожайность, пониженный уровень клетчатки (7-10 %). Основное преимущество белого люпина – высокое содержание протеина (до 43 %), сбалансированного по аминокислотному составу, он является хорошим источником углеводов, жира с высоким уровнем ненасыщенных жирных кислот, минеральных веществ и витаминов. Зерно белого люпина сорта Дега относится к низкоалкалоидным сортами с концентрацией алкалоидов 0,025 % и ниже (при предельно допустимой концентрации 0,04 %). Зерно не нуждается в термической обработке, перед скармливанием, поскольку не содержит ингибиторов трипсина и высокого уровня уреазы. В связи с вышеизложенным, научный и практический интерес представляет изучение баланса азота у лактирующих коров при включении в состав комбикорма разного уровня зерна белого люпина.

8 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 Особенности пищеварения и обмена веществ у крупного рогатого скота Потребление объёмистых кормов у крупного рогатого скота осуществляется путём захвата языком, который имеет острые ороговевшие сосочки. Корова захватывает траву на пастбище, удерживая её между дентальной пластинкой резцовой кости и нижней челюстью. Отрывает траву резким движением головы в сторону. Сочные грубые корма из кормушки крупный рогатый скот захватывает с помощью языка, а потребление концентрированных кормов происходит при помощи губ. Корм заглатывают жвачные животные недостаточно прожеванным [2, 4, 23, 68, 69, 111, 121]. Объёмистые корма в процессе пережёвывания обильно смачиваются слюной, образуя пищевой ком с содержанием воды до 93 % [1, 4, 48]. Жвачка (руминация) – комплекс реакций, который проявляется рефлекторно и состоит из периодов и циклов. Время, когда коровы повторно пережёвывают отрыгиваемое содержимое, называется жвачным периодом, который состоит из нескольких циклов [1, 4, 16, 23, 85, 121]. В процессе жевания грубые корма измельчаются, что способствует повышению выделения слюны. Кормовой ком в ротовой полости обильно смачивается слюной и измельчается до длины частиц – 1,6 мм [1, 2, 4, 23, 48, 69, 111, 121]. Продолжительность жвачки у лактирующих коров составляет около 6 – 10 часов в сутки, основная часть, которой происходит в вечернее и ночное время. Один жевательный цикл у дойной коровы длится около 50-60 секунд [121]. По мнению авторов, оптимальное время жвачных периодов, для нейтрализации образовавшихся в рубце коров кислот брожения, составляет не менее 500-600 минут в сутки [73]. Период руминации у коров должен составлять не менее 8 часов и должен проявляться у 60 % коров в период отдыха [2, 4, 23, 68, 71, 111]. Процесс руминации влияет на моторику преджелудков жвачных животных, способствуя более качественному измельчению кормов, перемешиванию и

9 обеспечивает поступление химуса в сычуг. Создаются оптимальные условия для микрофлоры преджелудков скота [1, 3, 4, 23, 68, 71, 111, 121]. В зависимости от вида корма, продолжительности потребления, влажности и структуры рациона зависит выделение слюны, в среднем у коров образуется около 160-200 литров с рН 8,0-8,5 [16, 23, 114, 121]. Плотность слюны составляет 1,001-1,009 г/см3 [16, 69, 85, 94]. При недостаточном содержании объёмистых кормов и высокой долей концентратов в рационе дойных коров, приводит к снижению выделения слюны до 30-50 литров в сутки [2, 16, 94]. В процессе жвачки выделяется слюна с высоким содержанием бикарбонатов в особенности мочевиной, фосфатом и бикарбонатом натрия, которые участвуют в снижении кислотности рубцового содержимого, тем самым поддерживая оптимальную рН среды, необходимую для жизнедеятельности микрофлоры и активности ферментов [4, 18, 23, 37, 61, 90, 111, 114, 115, 121, 124]. Слюна состоит из биологически активных веществ: глюкопротеида – муцина, белков – иммуноглобулинов, ферментов – липазы, щелочной и кислой фосфотазы, нуклеазы. Электролиты – катионы: натрия, кальция, калия, магния; анионы: Cl-, J-, HCO3-, H2PO4- [1, 2, 16, 71, 111]. Выделение слюны происходит по двум типам: постоянная, которая содержит секрет околоушных желез богатых минеральными веществами в особенности карбонатами, но не содержит мукопротеидов и в процессе приёма корма – подъязычных и подчелюстных желез [16, 23, 48, 91, 111]. Одной из особенностей пищеварения жвачных является отсутствие в желудочно-кишечном тракте инвертазы, которая расщепляет сахарозу до глюкозы и фруктозы. Переваривание сахаров происходит при помощи ферментов, выделяемых микроорганизмами рубца, в основном бактериями и простейшими [1, 16, 111]. В рубце крупного рогатого скота клетчатка, крахмал и сахара перевариваются на 55-95 % с образованием ЛЖК – 4,5 кг, которые удовлетворяют потребности организма коров в энергии на 70 % [48, 76, 91].

10 Желудок крупного рогатого скота состоит из 4-х камер: рубца, сетки, книжки и сычуга – истинного желудка, который имеет пищеварительные железы [1, 16, 23, 50, 54, 73, 85, 121]. По мнению авторов, объем желудка у взрослого скота достигает следующих размеров: рубец – 180-300 л, сетка – 5-12 , книжка – 7-18, сычуг – 13-20 л [2, 16, 23, 48, 85, 91]. Рубец – это самая объёмная камера желудка крупного рогатого скота заселённая микроорганизмами, которые выполняют функцию биологической обработки корма. Масса его составляет около 80-85 % от сложного желудка жвачных [1, 2, 4, 16, 23, 68, 85, 111, 115, 121]. В зависимости от вида корма вида корма ферментация в рубце может проходить до 30-80 часов, что способствует перевариванию медленно распадающихся фракций кормов. Причиной длительного нахождения кормов служит наличие в нем труднопереваримых составляющих кормов и, в следствие, это может привести к снижению потребления кормов животными [111, 121, 124]. В рубце переваривается 65-70 % всех питательных веществ поступивших в составе рациона [2, 4, 23, 68, 76, 111]. Рубец состоит из вентрального и дорсального мешков, которые ограничены друг от друга левым и правым продольными желобами, имеет слизистую пищеводного типа, которая состоит из плоского ороговевшего многослойного эпителия и покрыта сосочками. Листовые выросты (сосочки) разнообразны по толщине и высоте, в пределах 0,3-1,2 см [85]. Различают в рубце: дорсальную и вентральную кривизны, париетальную и висцеральную поверхности, краниальный и каудальный концы. Дорсальный и вентральный мешки разделены между собой продольным жёлобом и сплющены с боков [48, 85, 111]. Попадая в рубец, корма увлажняются рубцовым соком, набухают и фильтруются. Корма, при нахождении в рубце жвачных, постоянно перемешивается в связи с ритмичными сокращениями стенок рубца [1, 2, 4, 48, 69, 121]. В рубце здоровых коров его содержимое располагается послойно и состоит из верхнего слоя, который содержит, образовавшиеся в процессе брожения газы и

11 воздух, среднего слоя – лёгкий объёмистый (грубый) корм и сок рубца, нижний слой – содержит более тяжёлые концентрированные корма рациона. В процессе ферментации кормов в рубце коров образуются газы: метан, азот, углекислый газ, водород и их объем достигает до 600-700 л в сутки [4, 23, 121]. Накопление образовавшихся в процессе ферментации газов происходит в заднем слепом выступе и дорсальном мешке рубца и увеличение давления на эти области приводит к возникновению отрыжки [48]. В рубце происходят циклические сокращения, которые способствуют подниманию тяжёлой фракции рубцового содержимого над уровнем рубцового сока, а лёгкую фракцию спуститься, что приводит к улучшению переваримости рациона [1, 4, 16, 111, 121]. Оптимальная среда содержимого рубца находится при постоянном значении рН среды в пределах 6,5-7,4 и может изменяться, как в кислую, так и щелочную сторону, она зависит от следующих факторов: вида и качества корма, способа подготовки его к скармливанию, структуры рациона и прочее [54, 73, 121]. Температура в рубце в зависимости от периода суток колеблется от 38 до 41°С [48, 53, 56, 85]. Снижение концентрации ионов водорода рубцового содержимого до 4,0-5,0 единиц или увеличение до 7,5 ед. приводит: к нарушению процесса пищеварения, снижению потребления и переваримости кормовых средств и возможно возникновению тимпании рубца у коров [121]. Переваримость питательных веществ в рубце жвачных зависит от факторов: приспособленности микроорганизмов к виду корма, химического состава кормовых средств, видовых и индивидуальных особенностей животных, уровня продуктивности, соотношения питательных веществ корма и скорости прохождения его через желудочно-кишечный тракт животных [25, 54, 121]. Переваривание сухого вещества рациона в рубце лактирующих коров составляет около 70 % и она происходит при участии ферментов микробиоты рубца [1, 4, 23, 37, 54, 75, 85, 94, 111, 113].

12 Оптимально сбалансированный рацион должен находиться в рубце коров не менее 8-10 часов [1, 76, 120]. При скармливании жвачным животным кормов в виде смеси приводит к выравниванию уровня рН рубцового содержимого, увеличению потребления сухого вещества и снижению сортировки кормов животными. Если кормить корову чаще, то это приводит к незначительному изменению рН рубца, тем самым увеличивается использование азотистых веществ и синтез микробного протеина. Для сохранения оптимального качества кормосмеси на кормовом столе она должна находиться не более 6 часов, при периодически перемешивании и продвижении её к животным [23, 86, 120]. При силосном типе кормления в процессе адаптации импортного молочного скота увеличивается переваримость сырого жира и протеина [53]. Преобладание в рационе сочных и объёмистых кормов у жвачных животных приводит к повышению функции коры надпочечников и щитовидной железы [15]. Установлено, что гормоны щитовидной железы усиливают процессы катаболизма в организме животных и при дефиците протеина стимулируют наиболее эффективное использование аминокислот. Например, кортизол способствует высвобождению свободных аминокислот и осуществляет их перенос в молочную железу для синтеза молока [3, 46, 53, 55, 56]. При сенажно-концентратном типе кормления молочных коров наблюдается увеличение переваримости клетчатки и её фракций, снижение – сырого жира, а переваримость других питательных веществ остается такой же, как при силосном типе [54]. Данный тип кормления способствует более эффективному процессу адаптации микрофлоры рубца, переваримости компонентов кормов и увеличению молочной продуктивности коров [53, 54, 55, 100, 110]. При проведении исследований было установлено, что содержание доступной обменной энергии в рационе в пределах 9 МДж на 1 кг сухого вещества переваримость сухого и органического веществ, сырого протеина снизилась на 1 %, клетчатки – 10 %, БЭВ – 4 %, а сырого переваримость жира при этом повышалась на 6 %. Содержание обменной энергии (доступной) 10,4 МДж на 1 кг сухого вещества переваримость

13 сухого вещества изменялась незначительно (0,2-0,7 %), а переваримость протеина увеличивалась на 4,7 %, сырого жира – 3,3 %, сырой клетчатки – снизилась – 6,3 % [27]. При введении в состав комбикорма селена в количестве 0,1-0,3 мг на 1 кг сухого вещества приводило к уменьшению образования свободного аммиака в рубцовом содержимом на 1,9-2,2 мг%. При введение селена в количестве 0,2 мг на 1 кг сухого веществ авторы получили изменения переваримости: повышению – сухого вещества, сырого протеина, жира, клетчатки до 9,7 %, содержания микробного азота на 31 % и снижения содержания аммиака на 11 % [41]. Переваримость питательных веществ рациона в период раздоя у высокопродуктивных животных наиболее эффективно осуществляется при содержании сырого протеина не менее 18 % в 1 кг сухого вещества [63]. Симбиотическая микрофлора необходима в процессах пищеварения жвачных, так как она способствует перевариванию объёмистых кормов, богатых целлюлозой, гемицеллюлозой, лигнином, крахмалом и так далее [76]. Субстратом для микроорганизмов рубца могут служить и использоваться в процессе жизнедеятельности разные части и питательные вещества рациона [4, 75, 76, 91]. В рубце клинически здоровых животных содержится около 2,5-4,0 кг микробной массы [76, 111]. Из всех трёх подцарств микроорганизмов, находящихся в рубцовом содержимом жвачных животных, в зависимости от плотности популяции и количества видов доминирующее значение имеет Bacteria [126]. Концентрация бактерий в рубце колеблется в пределах 1010 – 1011 в 1 мл рубцового содержимого и зависит от структуры рациона, видов и способов приготовления кормов, типа кормления и т.д. В рубцовом содержимом их находится около 200 видов [50, 120, 126]. Среди бактерий особенно высока концентрация целлюлозолитических бактерий семейства: Lachnospiraceae, Ruminococcaceae, Eubacteriaceae, Clostridium и термоанаэробактерии, которые сбраживают целлюлозу кормов до летучих жирных кислот (ЛЖК) и на их долю в рубцовом сообществе, должно приходиться не менее 20-25 % [64]. Основными и

14 наиболее важными группами микроорганизмов рубца коров являются руминококки и лахноспиры так как они наиболее чувствительны к изменению рН. Оптимальное значение рН находится в пределах 6,3-7,0, если оно снижается, ниже 6,2 происходит снижение переваримости клетчатки [73]. Целлюлозолитические бактерии имеющие кокковидную форму в основном принадлежат видам Ruminicoccus albus и R. Flavefaciens [105]. На их долю приходится около 50 % от общего количества целлюлозолитических микроорганизмов. Набольшее содержание этих видов бактерий наблюдается в рубце сухостойных коров, а у дойных коров превалируют бактерии семейства Eubacteriaceae, Clostridium [48, 75, 105]. Амилолитические бактерии гидролизуют крахмал концентратов до кислот: молочной и янтарной, доля которых составляет 15-17 % [4, 76, 91, 105, 111]. Молочнокислые бактерии в рубце сбраживают сахара: мальтозу, глюкозу, сахарозу и галактозу [76, 85]. В рубце так же обнаружены витаминсинтезирующая бактерия Flavobacterium vitarumen, которая синтезирует в рубцовое содержимое нитратразлагающие ферменты (нитрат- и нитритредуктазы) до аммиака, что способствует в свою очередь улучшению использования небелковых азотистых веществ в рубце и увеличению образования аммиака [107]. В рубце крупного рогатого скота концентрация инфузорий находится в пределах от 200 до 1 200 тысяч в 1 мл содержимого. Доминирующее место занимают инфузории подкласса Spirotricha (мелкореснитчатые) доля которых составляет 60-80 % в рубцовом содержимом [69, 76, 120]. Наименьшее количество в микробном сообществе рубца отводится анаэробным грибкам, концентрация которых составляет 103 микроорганизмов в 1 мл содержимого [120]. Известно, что подкласс protozoa, обитающий в рубце коров, более эффективно разрушают нерастворимый в рубце кормовой протеин, чем растворимый [1, 4, 75, 111]. Микроорганизмы, относящиеся к данному подклассу, имеют преимущественно овальную, продолговатую или овально-продолговатую форму, различат имеющие реснички (простейшие) с величиной тела 20-200 мкм

15 [75, 105]. Организм инфузорий состоит из трехслойной кутикулы, зернистой эктоплазмы, сократительными вакуолями и цитоплазматической сетью с высокой долью рибосом, содержащих rRNA, которая участвует в образовании белка [105]. В составе рубцовой жидкости в основном различают две группы простейших (инфузорий): Holotricha (голотрихии), которые покрыты равными по размеру ресничками, не соединяющиеся между собой и друг с другом и Oligotricha (энтодиниоморфы), которые преимущественно сосредоточены около ротового отверстия и имеют мало ресничек [105, 120]. Группа голотрихий представлена в рубце в основном родами Butschlia, Isotricha и Dasytricha. Наиболее встречаются 2 вида микрооргиганизмов из рода Isotricha – I. intestinalis и I. рrostoma, а из Dasytricha – D. ruminanium, которые по отношению к другим родам по размерам более мелкие и обнаруживаются в высокой концентрации в содержимом рубца [75, 105]. На долю простейших рода Dasytricha приходится до 2 % от общей популяции простейших рубца [75]. Энтодиниоморфы представлены в основном семью родами: Opisthotrichum, Diplodinium, Ophryoscolex, Epidinium, Caloscolex и Cunhaia [105]. Инфузории выполняют функцию физической обработки кормов, то есть измельчают и разрыхляют кормовые частицы [4, 48, 76, 91, 111, 127, 128]. Внутри клеточного организма простейших, которые не способны синтезировать аминокислоты из аммиака, протеин кормов переваривается до образования аминокислот и пептидов. Они снабжают рубцовое содержимое аминокислотами, пептидами и протеолитическими ферментами – пепсидазами [1, 4, 75, 105, 124, 125], а также имеют способность запасать в своем организме полисахариды, которые в последствии по мере необходимости перевариваются [4, 76, 124]. Экологическое взаимодействие микроорганизмов рубца зависят от типа кормления и состава рациона, в связи с этим рекомендуется смену рациона производить постепенно, в течение 2 недель [53, 69, 86].

16 Под воздействием бактерий и простейших содержимого рубца расщепляется: моно- и дисахаров – 85-95 %, крахмала – 75 %, переваримой клетчатки до 70 %, сырого протеина – 40-60 % [76]. Кормление крупного рогатого скота разными по составу кормами ведёт к изменению микробного сообщества желудочно-кишечного тракта, например, при кормлении зимним рационом или круглогодовым монокормом приводит к закислению рубца, а летний рацион с преобладанием зелёных кормов, наоборот, к защелачиванию рубцового содержимого [32, 54]. Летом происходит увеличение концентрации симбиотной микробиоты: целлюлозолитических бактерий, простейших и транзитной микрофлоры. При кормлении молочных коров в зимний период рубцовые показатели зависят от периода лактации, например, динамика концентрации ионов водорода в рубце в период: раздоя составила 5,7, середины лактации – 6,3, запуска – 6,3 и менее, приближаясь к нейтральной [23, 54, 111]. По мнению авторов [110] происходит увеличение содержание инфузорий в рубцовом содержимом в период запуска коров на 1,3 % и снижение при раздое – 30,6 % по отношению к середине лактации. Количество инфузорий в пастбищный период увеличивается в зависимости от периода раздоя до запуска [54]. В процессе микробной ферментации структурных углеводов корма в рубце образуются ЛЖК до 95 % в соотношении: уксусная – 55-70 %, пропионовая – 15-25, масляная – 10-20 %, соотношение ацетата к пропионату должно быть 3:1 [14, 69, 73, 111, 120]. Общая концентрация летучих жирных кислот в рубце жвачных находится на уровне 60-140 ммоль/л [69]. По мнению авторов, у взрослого здорового животных в среднем переваривается и усваивается приблизительно 10 кг органического вещества, из которых образуется до 7 кг ЛЖК и происходит синтез микробной биомассы рубцового содержимого более 3 кг [4, 91, 111]. В рубце могут образовываться и другие ЛЖК: капроновая, валерьяновая изомасляная и изовалериановая кислоты и иногда молочная, а олеиновая и линолевая кислоты в организме коров не образуются [4, 23, 48, 75, 91, 111].

17 В процессе ферментации углеводов микроорганизмами образуется преимущественно масляная кислота и после кормления её концентрация в содержимом рубца находится на уровне 1,5-5,0 ммоль/л [69, 73, 111, 121, 126]. Под действием ферментов микроорганизмов рубца масляная кислота способна превращаться в пропионовую [69]. Образованные в процессе ферментации в рубце коров кислоты обеспечивают организм коров в обменной энергии на 60-80 % [73]. Масляная и уксусная кислоты оказывают влияние на химический состав молока, участвуют в образовании молочного жира [23, 69, 121]. Основная доля бутирата в стенках рубца трансформируется в кетоновые тела, а именно β-гидроксибутираты, которые совместно с глицерином образуют жир молока [28]. Молочный жир синтезируется из глицерина и различных жирных кислот, которые могут быть синтезированы из ацетата, масляной кислоты и других источников, а так же влияет на состояние гидрогенизации ненасыщеных жирных кислот и синтез фосфолипидов [90, 91, 121]. В зависимости от уровня уксусной кислоты, которая стимулирует работу липазы, может меняться степень депонировании жировых веществ и повышать активность использования НЭЖК из жировых депо. Дефицит ацетата приводит к снижению воспроизводительных функций коров, а именно, на снижении синтеза стероидных гормонов [91] При увеличении доли концентратов и снижении длины резки длинностебельчатых кормов это отрицательно действует на микрофлору рубца, увеличивает концентрацию пропионовой кислоты и снижает долю ацетата. Все это способствует увеличению пировиноградной кислоты и активации глюконеогенеза, при этом оксалоацетат снижает скорость использования уксусной кислоты, тем самым приводя к дефициту энергии в организме коров [25]. При высокой степени измельчения и влажности кормосмеси (более 75 %), происходит нарушение микробиологических процессов брожения в рубце коров и приводят к его закислению, что может стать причиной возникновения ацидоза [86].

18 В системе пищеварения крупного рогатого скота отсутствуют ферменты – сахаразы в кишечнике, поэтому и большая часть сахаров кормов сбраживается рубцовой микробиотой с образованием ЛЖК [1, 2, 4, 15, 16, 23, 111, 121, 124, 126]. Из крахмала в процессе ферментации в рубце образуется преимущественно пропионат – 70 %, а при прохождении «защищённого» крахмала образуется глюкоза – 30 % [73]. Крахмал, попадая в тонкий кишечник, ферментируется до образования моносахаридов и через капиллярные сосуды крипт кишечника всасывается в кровь и направляется по капиллярам в воротную вену, потом в печень. Содержание глюкозы в организме животных относительно постоянно и пределы нормальных колебаний 60 – 200 мг/% [48]. При наличии высокой доли сахаров это приводит к увеличению образования масляной кислоты до 30 – 60 ммоль/л и это может послужить причиной возникновения ацидоза рубца [69, 85]. При избытке протеина, сахаров и крахмала – гликозиз проходит с высокой скоростью и образованием плохо реализуемой уксусной кислоты в цикле трикабоновых кислот [91,115]. Глюкоза, образовавшиеся в процессе пищеварения у коров, всасывается через стенки слизистой оболочки тонкого кишечника [3]. Она показывает степень обеспечения и сбалансированность углеводного питания коров. Оптимальным этот показатель в сыворотке крови должен быть около 3,61 ммоль/л (65 мг%) [3, 56]. По мнению Л.В. Романенко оптимальный уровень глюкозы в крови способствует тому, что при первом осеменении оплодотворяются – 53 % коров, при повышенном – 56, а при пониженном уровне только 22 % [86]. Синтез глюкозы в печени жвачных животных обеспечивается за счёт глюкогенных аминокислот, в том числе глутамата и аланина на 30-50 % [26, 31, 86, 91, 115, 121]. При уменьшении количества гепатоцитов и разрушении паренхимы снижает функциональность обмена веществ в печени. На образование 1 кг молока приходится около 45 г глюкозы, в процессе раздоя потребность возрастает в 3 раза [91]. Нарушение обмена белка в печени приводит к возникновению: избыточного

19 содержания γ-глобулинов, геморрагическому синдрому, увеличению концентрации аминокислот в моче и крови, повышению содержания остаточного азота, гипопротеимии, повышению концентрации в сыворотке крови ГГТ, АСТ, АЛТ [79, 81,83,91]. Каротин в сыворотке крови является показателем, характеризующим обмен веществ, и он оказывает влияние на рост и развитие животных, молочную продуктивность [3, 56]. При концентрации в крови витамина A ниже 10 мг% наблюдаются признаки гипопавитаминоза [3,46,56]. По мнению Ю.А. Александрова [3] в пастбищный период возрастает содержание каротина в сыворотке крови, но в опытах наблюдали значения ниже нормы из-за нитратно-нитритного токсикоза. Скармливание жвачным животным витаминов в составе премиксов витаминно-минеральных концентратов не влияют на содержание каротина в крови [86, 88]. Лимонная кислота принимает активное участие в обмене жирных кислот, переносит ацетильную группу в цитоплазме клеток из митохондрий, усиливает глюконеогенез в печени путём усиления процессов переаминирования и дезаминирования. По мнению Сизовой Ю.В. глюкоза, кетокислоты, образуемые в процессе дезаменирования аминокислот, расщепляемой фракции протеина, являются предшественниками жира молока [99]. Рубец от сетки отделен только серповидной складкой, и они имеют общую полость [48]. Во время отрыжки складка поднимается, способствуя проникновению жидкого содержимого в сетку, и не позволяет попасть в нее грубым частицам [85]. Сетка – второй отдел многокамерного желудка, отвечающий за сортировку кормовых частиц, поступающих из рубца. Поверхность покрыта складками в виде ячеек. Она соединена с рубцом широким отверстием, а с книжкой наоборот, также она соединена с пищеводом посредством пищеводного желоба [2, 4, 23, 28, 48, 85, 111, 121]. Слизистая оболочка сетки не имеет желез и выступает внутрь в виде складчатых образований, формируя ячейки до 12 мм в высоту [85].

20 В книжку, после обработки кормовой массы в рубце и сетке, попадают только частицы, измельчённые до размеров менее 1-2 мм, и плотностью более 1,2 г/мл. Здесь происходит всасывание через стенки воды, ионов натрия, хлора и остаточного количества летучих жирных кислот [2, 23, 85, 111]. Нахождение химуса в этом отделе желудка составляет приблизительно 5 часов. Здесь происходит уплотнение кормовой массы и в сычуг поступают порции с содержанием сухого вещества не менее 22 % [121]. Сычуг по своим функциям схож с желудком моногастричных животных [2, 85]. В сычуге вырабатываются пищеварительные ферменты и соляная кислота, и питательные вещества круглосуточно находятся в нем. Время нахождения перевариваемой массы в сычуге колеблется от 1 до 2 часов [23, 85, 111]. Жир кормовых средств не подвергается расщеплению в преджелудках, и начало процесса переваривания происходит в двенадцатиперстной кишке под действием ферментов поджелудочной железы и печени [121]. При недостаточном поступлении липидов (менее 3-5 % от сухого вещества) в составе рациона снижается усвоение жирорастворимых витаминов, что приводит к поражению волосяного и кожного покрова [69, 121]. В толстом кишечнике не переварившиеся в предыдущих отделах желудочно-кишечного тракта питательные вещества корма происходит процесс разложения с участием Bacteroides Coli, стрептококками и стафилококами [85]. 1.2 Потребности в протеине Синтез микробного протеина в рубце коров ограничен. Он удовлетворяет только 40-50 % потребностей молочного скота в белке, а остальное количество высокоценного протеина должно поступать с рационом в виде «защищённого» от действия микрофлоры рубца [60, 69, 73, 85, 113, 120]. Согласно нормам ВИЖа (2016) потребность организма дойных коров в протеине складывается из потребностей на: прирост живой массы, поддержании жизни, молокообразование, развитие плода, матки и плаценты. Доступность протеина для подержания жизни составляет – 70 %, на прирост массы тела, матки и плода – 50, а на молокообразование белка молока около 72 % [52, 96].

21 Для оптимизации микробного синтеза протеина в рубце коров должно приходиться на 1 МДж обменной энергии 7,16-7,8 г разрушаемого в рубце кормового белка, при рН 6,2-6,5, который достигается однотипным и сбалансированным кормлением [66, 98]. На синтез микробного протеина в рубце жвачных влияет содержание в рационе минеральных веществ, поступление азота, витаминов и энергии [28]. В зависимости от уровня молочной продуктивности и физиологического состояния коров потребность в перереваримом протеине на 1 ЭКЕ может варьироваться от 79 до 133 граммов [26, 98]. По мнению Ижболдиной С.Н. [48], что 50 % азотсодержащих веществ и белковых компонентов кормов в рубце под действием микроорганизмов превращаются в микробный белок [5, 31, 91]. На долю микробного протеина в химусе кишечника приходится до 70-80 % азота, при этом около 30 % синтезируемого в рубце микробного протеина в нем и распадается [4, 63, 75, 76, 91]. При поступлении в двенадцатиперстную кишку микробного протеина на долю азота бактерий приходится 68-77 %, а на долю простейших 23-32 % [75, 76]. Переваримость протеина в желудочно-кишечном тракте зависит от состава аминокислот, структурной связи, соотношению его фракций в белке, дисперсности и т.д. [5, 30, 47, 69, 99]. На переваримость сырого протеина кормов оказывает влияние на удовлетворение высокопродуктивного молочного скота в аминокислотах, белках, при высокой переваримости в кишечник поступает до 50 %, при низкой – 50-65 % аминокислот в виде нераспадаемой фракции [60, 61]. Переваримость сырого протеина влияет содержания в кормах белкового и небелкового азота, содержание легкорастворимой фракции вследствие чего происходит расщепление белка кормов в пределах 40-80 % [91, 120]. Белки условно можно разделить на 2 группы – простые (глобулярные и фиброзные) и сложные [14]. К простым глобулярным белкам относятся: альбумины, которые растворяются в воде и содержатся в плазме крови до 60 %, глобулины, глобины, гистоны, проламины, глютелины, протамины, а к простым фиброзным белкам –

22 коллаген, кератин и эластин. В печени происходит синтез протромбина, альбумина, фибриногена и глобулинов. В крови белки разделяются на альбумины и α-, β-, γ-глобулины [14, 23, 91, 107, 111, 117, 128]. Сложные белки состоят из протеиновой части и содержат небелковые компоненты и включают следующие категории: нуклеопротеиды, фосфопротеиды, хромопротеиды, глюкопротеиды, липопротеиды [14, 115, 125]. Выделяют пять категорий кормовых средств по расщепляемости и четыре категории – по скорости деградации протеина в рубце. Растворимость протеина – физико-химическое свойство сырого протеина кормов, характеризуется степенью растворения (перехода) белка в растворимый вид под действием рубцового сока или идентичным по свойствам буферным растворам, имитирующий его [60, 76, 121]. В рационе дойных коров оптимальное содержание водорастворимой фракции белка находится на уровне 40-50 % от сырого протеина [26]. Степень растворимости напрямую влияет на распадаемости протеина кормов в рубце, только при одном условии, если в ферментации участвуют быстрорастворимые фракции кормового белка [76, 121]. В нерастворимом протеине выделяю две фракции: протеин, связанный с КДК, протеин – частично подвергающийся расщеплению в рубце, но остающийся доступным для жвачных животных [76]. Ращепляемость (распадаемость, разрущаемость, деградируемость) протеина – это ферментация микрофлорой рубца небелковой и белковой частей сырого протеина рациона до образования конечных продуктов белкового обмена: аминокислот, аммиака и пептидов [23, 26, 60, 73, 76, 94, 111]. Распадаемость является показателем, который характеризует величину и скорость микробного гидролиза протеина до конечных продуктов обмена, которые участвуют в синтезе микробного белка, и выражается в процентах от поступившего нераспавшегося нерасщепляемого кормового протеина в двенадцатиперстную кишку от сырого протеина принятого с рационом [4, 76, 111].

23 Основными факторами, влияющими на распад протеина в рубце: растворимость, молекулярная структура, скорость распада белков и степень дисперсии кормовых частиц рациона [76]. По Корнельской системе сырой протеин подразделяется по степени рубцового расщепления на 5 фракций: фракция A – содержит легкорасщепляемый протеин и небелковые азотистые вещества, С – является нерасщепляемым протеином и содержит белок связанный с лигнином, танинами и термоустойчивыми протеинами, фракции В – представляют собой расщепляемый истинный протеин [89, 127, 94]. На расщепляемость протеина кормов в рубце крупного рогатого скота оказывают факторы: протеолитическая активность микроорганизмов, физико-химические свойства протеина, концентрация ионов водорода, время задержки протеина в рубце [5, 73, 111]. Расщепляемость протеина кормов у дойных коров составляет 40 – 80 % и зависит от наличия ЛПУ, соотношения белковой и небелковых веществ в рационе, а также его растворимости [80]. Кормовые средства распределяют на фракции в зависимости от скорости расщепления протеина: быстро-, медленно- и нерасщепляемую [4, 76, 94, 111, 117, 125, 127]. К быстрорасщепляемой фракции относят: небелковые азотсодержащие вещества (пептиды, амиды, аминокислоты, пурины, соли аммония, нитраты и т.д.), быстрорастворимые белки – альбумины и глобулины, а к медленнорасщепляемой фракции – проламины, пептиды, глютелины [4, 23, 76, 86, 88, 94, 111] К нераспадающей – относят азотсодержащие вещества, которые недоступны для переваривания, входят белки клеточных стенок растений и дрожжевых грибов, комплексы белков и аминокислот с другими соединениями [76, 115, 118, 126, 127]. Скорость распада сырого протеина, нейтрально-детергентной клетчатки, органического вещества кормовых средств увеличивается при скармливании гранулированных кормов [14, 15, 100].

24 Подготовка зерна методом плющения или дробления не влияет на распадаемость в рубце, а шелушение зерна сопровождается увеличением распадаемости и содержания сырого протеина [77, 128]. Содержание протеина в рационе для лактирующих коров с годовой продуктивностью свыше 6000 кг молока должно приходиться около 15-18 % от сухого вещества, а по периодам лактации: раздой до 18 %, середина – 15 %, предзапуск – 13 % [91, 98]. В рационах дойных коров уровень протеина нерасщепляемого в рубце должен составлять – 35-30 %, легко- (65-90 %), средне- (50-70 %) и труднорасщепляемого – 30-50 % [23, 26, 94, 111]. Фракции с легкораспадаемым протеином (70-90 %) относятся корма: рапс, овсяно-гороховая дерть, подсолнечный шрот и жмых, экструдированнный горох, дерть соевая и гороховая, а также силос кукурузный, шрота и жмыхи, бобы кормовые, свекла кормовая. К среднераспадающей фракции протеина (50-70 %) – дерть соевая (жареная и автоклавированная), экструдированой и тостированной сои, сенаж, сено, отруби, травяная мука, соевый шрот. Корма, характеризующиеся низкой степенью распадаемости протеина, являются – дерть пшеничная, солома, мука: рыбная, кровяная, мясокостная, зерно кукурузы, глютен кукурузный, дробина сухая и соевый шрот [52, 94, 121]. По мнению Д.Г. Погосяна, одни и те же корма могут изменять степень расподаемости сырого протеина в зависимости от многих факторов, влияющих на ферментацию рубцового содержимого, при этом наиболее эффективны распад наблюдается при рН равной 6 единицам [76]. Потребность коров в распадаемом протеине составляет в период: раздоя – 60-65 %, середине лактации – 70-73, запуска – 70-72 % [94]. Потребность высокопродуктивных коров в расщепляемом протеине согласно нормам РАСХН составляют: в период раздоя 60-65 %, се6редина лактации – 65-70, при угасающем периоде лактации свыше 70 % [98]. Расщепляемая фракция сырого протеина служит источником поступления азота для ферментации микроорганизмами рубца, а нераспадающая фракция

25 совместно с микробным протеином снабжает организм животного аминокислотами [5, 39, 111]. Небелковый азот в составе растворимой фракции протеина занимает приблизительно 80 %, исключение составляют злаковое сено и соевый шрот 50,7 и 55,2 % соответственно [5]. В состав растворимой фракции входит небелковый азот всех видов кормов, содержит высокое количество заменимых аминокислот и имеет наименьший аминокислотный индекс, а нерастворимая распадаемая – незаменимых [5, 111]. Кормление дойных коров высококонцентратными рационами приводит к снижению рН, повышению уровня амилолитических бактерий, аммиака, летучих жирных кислот, пропионовой кислоты при сохранении целлюлазной активности микрофлоры рубца, что в свою очередь приводит к снижению расщепляемости сырого протеина кормов на 10 %, а скорость распада до 30 % [23, 32, 68, 111]. В идеально сбалансированном рационе для дойного стада коров на каждый 1 кг расщепляемых углеводов постоянно должно освобождаться 32 г азота (DLG, 2001) [94]. Известно, что на 100 г ферментируемого органического вещества приходится около 2,5-3,5 г микробного азота [61, 28]. Суточное образование микробного белка колеблется в пределах 3-5 кг /сутки [23, 94, 111]. Основную роль в микробной обработке кормового протеина в рубце принадлежит инфузориям и бактериям, с их помощью расщепляется не менее 40 % протеина кормовых средств [69, 71]. Приблизительно 33 г сырого протеина на 1 кг сухого вещества выводится из организма животного вместе с каловыми массами, а также с молоком – 30 граммов на 1 кг молока [28, 121]. Высокая доля бобовых культур в рационе приводит к избыточному содержанию сырого протеина, что в свою очередь приводит к защелачиванию рубца (рН выше 7,3), снижению усвояемости и повышенной потере кальция [69]. Происходит угнетение и гибель симбиотных бактерий и инфузорий, увеличение гнилостных бактерий, нарушаются процессы брожения в рубце, и повышается концентрация аммиака до 25 мг на 100 мл рубцового содержимого [69, 111, 126]. При переизбытке кормового протеина в рационе свыше 25 % приводит к

26 возникновению анорексии, снижению живой массы, а также приводит гепертрофии поджелудочной железы, нефромегалия, гепатомегалии и нарушению обмена кальция [52, 71, 73, 75, 95]. Также происходит увеличение активности процессов дезаминирования аминопуринов и аминокислот, с увеличением концентрации аммиака и щавелевой кислоты, алантоина и продуктов их метаболизма в сыворотке крови и печени, а также приводит к снижению активности альбуминов крови и повышению синтеза кетоновых тел, протромбина, фибриногена, глобулинов, албуминов из-за усиления активности преаминирования и дезаминировния ферментов [4, 91]. Недостаточное поступление в организм коров сырого протеина кормов приводит к снижению потребления кормов, переваримости, проходимости химуса через пищеварительную систему, уменьшению молочной продуктивности, снижается содержание сухого обезжиренного молочного остатка и живая масса, которая в последующем плохо её набирают [26, 96, 97]. При длительном дефиците протеина снижается, в первую очередь, его концентрация в плазме крови (до 40 %) и печени (30-50 %) и мышцах (до 67 %) [48]. Наблюдается отрицательный баланс азота в рубце, если его содержание в рационе коров было менее 9 % [28]. Все это приводит к снижению незаменимых аминокислот в крови, накоплению воды и натрия в организме, снижению содержания калия и нарушению минерального обмена, нарушению активности калий-натриевого насоса в клетках [48]. Для восполнения образовавшегося дефицита сырого протеина в рационе его восполнение происходит за счёт включения высокопротеиновых компонентов таких, как зерно зернобобовых культур, шротов и жмыхов, кормовых дрожжей [7, 23, 32, 68, 115]. При включении в рацион дойных коров амидоконцентратной добавки в него обязательно включают в состав легкоферментируемые углеводы для обеспечения микрофлоры доступной энергией [32, 59, 61]. Из-за этого на каждые введённые 10 г карбамида должно приходиться не менее 100 г неструктурных углеводов, а именно крахмала и сахаров. Наиболее

27 эффективным методом восполнения недостатка протеина, который находится в пределах 10-12 % от сухого вещества, наблюдается при скармливании мочевины и САВ (синтетические азотсодержащие вещества) [59, 26]. Введение в рацион жвачным многокомпонентной кормовой добавки, которая содержит в своём составе L-карнитин, пробиотик, адсорбенты, «защищённый» лизин и холин оказывает липотропно-протекторное действие [89, 92, 104]. Оптимальное содержание сырого протеина в период раздоя коров должно быть в пределах 17-19 %, а обменной энергии более 11,5 МДж в сухом веществе [23, 111]. При суточном удое до 14 кг молока содержание сырого протеина в сухом веществе рациона должно составлять 10,9 %, при удое 24 кг – 14,1 %, а с продуктивностью более 35-40 кг – 17,5-19 % [66]. При избыточном содержании сырого протеина в рационе (более 20-40 % от сухого вещества) проявляются симптомы аммиачного токсикоза, появление кетоза и алкалоза у высокопродуктивных коров, понижение рН, снижение потребления кормов, высокое содержание ядовитых метаболитов распада протеина в желудочно-кишечном тракте [48, 69]. В последствии нарушается поступление легкопереваримых углеводов, возникает метаболический стресс и снижается молочная продуктивность. Все это в свою очередь приводит к усилению синтеза гормонов надпочечников, что приводит к снижению синтеза белка и повышению его распада в тканях организма [48,114, 115]. При воздействии токсинов плесневых грибов и бактерий приводят к возникновению патологического окислению липидов и накоплению продуктов их метаболизма в крови и печени, снижению содержания желчных кислот, повышается концентрация перекисей, кетоновых тел, альдегидов в печени, вызывая ее разрушение и снижение синтеза альбуминовых белков [79, 81, 83, 88, 91, 92, 94, 114, 115]. При воздействии на организм животных отравляющих веществ в сыворотке крови увеличивается концентрация α-глобулинов.ю фосфора неорганического,

28 кальция при одновременном снижении содержании общего белка, щелочной фосфотазы, каротина, альбуминов и глюкозы [56, 91, 114, 115]. Корова с удоем более 30 кг в сутки выносит с молоком около 1 кг белка, 1,5 кг лактозы и 1,2 кг жира [28]. Высокопродуктивные коровы, по мнению авторов [91], выносят с молоком обменной энергии 15 084 МДж, протеина – 300 кг, жира 200-300, лактозы – 7-9, кальция и фосфора до 5-7 кг. Для получения 1 кг молока у высокопродуктивных коров через молочную железу должно пройти 500-700 литров крови [16, 23, 37, 91]. Качественные и количественные показатели крови отражают эффективность биохимических процессов, происходящих в организме жвачных животных и состояние протекающих в нем процессов [88]. Оценку протеинового питания крупного рогатого скота проверяют по содержанию в сыворотке крови: общего белка, глобулинов и альбуминов, мочевины, активности аминотрансфераз [3, 4, 46, 48, 114, 115]. Аминотрансферазы в крови и тканях организма выполняют главную функцию по разрушению и синтезу аминокислот. Повышенная активность свидетельствует о синтезе белка в тканях, либо о недостаточной концентрации аминокислот в организме. Кетокислоты, участвующие в цикле Кребса, образующиеся при взаимодействии аспарагиновой, аланиновой и глутаминовой аминокислот с аминотрансферазами. Наиболее значимыми аминотрасферазами являются при трансаминировании аспаргиновой кислоты – аспартатааминотрансфераза (АСТ) и аланиновой – аланинаминотрансфераза (АЛТ) [71, 94, 115]. Нормальная концентрация общего белка в крови животных является 70-85 г/л. Избыток протеина при низкой доле крахмала и сахаров ведет к повышению общего белка в крови более 9 г% [31]. Несбалансированность рациона может быть следствием увеличения концентрации γ-глобулинов белков, что в свою очередь приводит к повышению содержания белка в сыворотке крови выше нормы. Содержание в крови глобулинов свидетельствует о состоянии обмена веществ в организме [69, 115].

29 Оптимальное значение разных фракций глобулинов составляет: альфа- – 10-20 %, бета- – 7-18 и гамма- – 17-25 % от общего белка сыворотке крови. Повышенный уровень β-глобулинов свидетельствует о нарушении липидного и белкового обмена, а также о нарушении и заболевании печени [111, 114, 115]. Самой низкой бактерицидной активностью сыворотке крови обладают коровы голштинской породы, а коровы черно-пестрой породы на 6,3-10,4 % выше [53]. Группа белков, которые обладают высокой активностью в организме животного, а так же используются для синтеза специфических белков тканей организма – альбуминами [15, 69]. В сыворотке уровень альбуминов в норме составляет 3,30-5,36 г%. При снижении альбуминов до 1,9-2,6 г% приводит к снижению воспроизводительных способностей и живой массы. В крови они быстро распадаются и вновь синтезируются, в среднем они содержат 10-16 г белка. Альбумины в крови переносят гормоны, минеральные вещества и липиды [25, 67]. В крови молодых животных содержится высокая доля альбуминов и низкое – γ-глобулинов. С увеличением возраста происходит увеличение альбуминовых соединений с фосфорсодержащими продуктами [3, 48, 91]. Снижение концентрации альбуминов в крови до 10 г/л свидетельствует о нарушении белкового питания. Резкое снижение приводит к понижению в крови метионина, лизина, триптофана и цистина [23, 48, 111]. Отношение фракций альбуминов и глобулинов в сыворотке коров обусловливается направленностью и эффективностью обмена веществ. Альбумины по содержанию в сыворотке крови преобладают над глобулинами [15]. Начальный этап дефицита белка кормов происходит благодаря увеличению содержания глобулинов и снижению содержания альбуминов, что в свою очередь умешает значение альбумино-глобулиннового коэффициента. Если в сыворотки крови наблюдается резкое снижение альбумино-глобулинового коэффициента – свидетельствует о патологических изменениях в печени [79, 88, 111, 114, 115]. Содержание и качество протеина, а так же концентрация аммиака в рубце жвачных отражают содержание мочевины в крови. Концентрация мочевины в

30 крови должна быть не менее чем в 10 раз выше, чем её содержание в моче. При содержании мочевины, где до 16-18 мг% свидетельствует о недостатке протеина. При уровне мочевины менее 50 мг%, а все остальные показатели крови находятся в пределах нормы, свидетельствует о том, что в рационе содержится высокая доля расщепляемого в рубце протеина [46, 55, 56, 111, 115]. Степень переваримости углеводов влияет на качество мочевины в молоке. При относительно сбалансированном рационе по протеиновым и энергетическим показателям, которые находятся в пределах нормальных значений, белок молока – 3,3-3,5 %; мочевина – 3,4-4,4 ммоль/л [88]. Основным показателем, отражающим эффективность обмена протеина в организме, являются химические показатели молока и молочная продуктивность коров [25]. При дефиците углеводов и избыточном поступлении в организм протеина или его высокой степени расщепления в молоке повышается содержание мочевины (более 4,4 ммоль/л) и наблюдается уровень белка молока в пределах физиологической нормы [115]. Повышенное содержание общего белка в крови и высокое содержание мочевины в молоке является показателями, отражающими снижение усвоения протеина [88]. Снижение уровня углеводов, поступающих с кормами, приводит к уменьшению синтеза глюкозы в печени, вследствие оптимизации обменных процессов расходуются резервы организма [25]. Введение в состав рациона дополнительных источников белка является причиной содержания и выхода белка до 15 % и увеличение молочной продуктивности на 5-10 % [99]. Наиболее важным периодом по интенсивности обмена веществ у жвачных животных является транзитный период, который составляет 21 сутки до и после отёла, а также период раздоя (22-120 суток) [109]. Предотельный и начало лактации периоды моторная функция прежелудков, в особенности ограничивая функциональность рубца, жвачных находится на

31 низком уровне очень низкая в связи с тем, что происходят процессы усиления роста плода и увеличения содержания околоплодных оболочек и жидкости [91]. В новотельный период в организме коровы наблюдается отрицательный энергетический баланс, который восполняется за счёт запасных резервов организма. В период раздоя коров из организма выносится с молоком и молозивом около: жиров – 2 кг, протеинов свыше 300 г за счёт использования липопротеидов тканей в сутки. Мобилизация липопротеидов приводит к нарушению обменных процессов в печени: окислению жирных кислот, синтезу мочевины, белков, глюкозы, гликогена, а также обезвреживание ядовитых веществ [4, 91, 111]. В свою очередь это ведёт к снижению живой массы коров, которые у высокопродуктивных животных составляют до 85-110 кг и возникновению многих заболеваний, таких как гепатозы, жировое перерождение печени, ацидоз и кетоз, из-за которого в молоке обнаруживаются кетоновые тела: β-гидроксимасляная кислота и ацетон, концентрация которых не должна превышать 0,11-0,20 ммоль/л [18, 109, 124]. У высокопродуктивных молочных коров печень пропускает через себя около 1 600 л крови в сутки, а низко продуктивная только 750 л [91, 115]. Синтез протеина в печени зависит от факторов: активности пищеварительных ферментов кишечника, количества и качества поступающих аминокислот, качества микробного протеина. В печени синтезируются белки: фибриноген, альбумины и факторы свертываемости крови [56, 91, 111, 115]. Снижение стресса у коров в постотельном периоде может быть смягчено методом повышения содержания в рационе: КОЭ (концентрации обменной в сухом веществе), сырого протеина, защищённых аминокислот и минеральных веществ [18, 23, 59, 75, 89, 109, 111, 115]. Во 2-ом месяце лактации при даче энергетической добавки массовая доля жира снизилась на 0,28 %, а без дачи на 0,83 %. Снижение жирности молока вызвано дефицитом энергии в рационе и зависит от состояния брожения структурных углеводов в рубце, образования уксусной кислоты [23, 109]. Введение в состав рациона высокоэнергетического корма способствует повышению концентрации общего белка в сыворотке крови в период раздоя [23, 48, 100, 111].

32 Увеличение произошло за счёт глобулиновой фракции, а альбуминовая фракция – незначительно повысилась на первом месяце и снизилась на втором месяце [109]. Интенсивность катаболических процессов в организме коров является следствием снижения минимального уровня глобулинов при высокой концентрации глобулинов, что в свою очередь приводит к потере живой массы коров [73, 90, 98, 111]. Оптимизация процесса пищеварения в преджелудках жвачных животных с помощью пробиотиков приводит к улучшению метаболизма в рубцово-печеночной циркуляции, оптимизации синтеза высокоценного микробного протеина, образованию витаминов и липидов, которые обладают высокой переваримостью в кишечнике [13, 26, 30, 31, 37, 65, 81, 90, 95, 103, 104]. Введение в состав рациона пробиотика приводит к увеличению эффективности использования аммиака, и снижаются его потери с испражнениями. Пробиотик приводит к повышению концентрации ЛЖК, целлюлозолитичекой и протеолитической активности микроорганизмов и концентрации инфузорий и бактерий, а также изменения их видового соотношения [90, 104]. В опытах В.Н. Романова введение пробиотика стимулировало увеличение уровня простейших в рубцовой жидкости на 5 % [38]. Введение в состав рациона пробиотиков приводит к увеличению концентрации молочнокислых бактерий Lactobacillus sp., Enterococcus sp., а также увеличение представителей родов Clostridium и Actinobacteria [53]. Наблюдается увеличение целлюлозолитических бактерий Ruminococcus flavefaciens, R. obeum, R. Bromii и бактерии семейства Veillonellaceae, которые утилизируют органические кислоты в рубце, а патогенные бактерии и сем. Lachnospiraceae уменьшались [38]. Так же наблюдалось увеличение переваримости сухого вещества на 2,6 %, а сырого протеина – 4,8 % [90]. Различают три метода балансирования распадаемого протеина в кормлении крупного рогатого скота: подбор разных кормов по степени расщепления протеина, обработка белковых кормов химическими веществами и при помощи физических воздействий [48, 66, 94]. Первый способ не всегда возможен и является довольно

33 затратным по сравнению с другими. Из физических способов обработки кормов наиболее эффективным является воздействие высоких температур. Они позволяют снизить распадаемость и расщепляемость сырого протеина в рубце примерно в 2 раза [43, 74, 101]. При химических способах обработки кормов наиболее распространенным является применение формальдегида (0,8-1,0 % от сырого протеина), а также органических кислот: муравьиная, пропионовая, уксусная [73]. 1.3 Потребности в аминокислотах Высокопродуктивные молочные коровы в процессе синтеза молока не могут удовлетворить свои потребности в аминокислотах за счёт синтеза микробного протеина в рубце. В следствие этого возникла необходимость оптимизации рационов кормления с дополнительным введением синтетических аминокислот с целью удовлетворения дефицита незаменимых аминокислот [23, 111, 126]. Жвачные животные способны восполнить потребности в цистине и метионине на 30-40 % за счёт синтеза протеина микробиотой рубца [61, 67]. В рубце находятся в свободном состоянии аминокислоты постоянно: метионин, пролин, глицин и глутаминовая кислота в количестве 0,1-1,4 мг на 100 мл содержимого. Микроорганизмы рубца активно вовлекаются в синтез микробного белка только в присутствии необходимых свободных аминокислот для их жизнедеятельности, особенно, незаменимых [48, 61]. По мнению авторов, дойная корова с суточным удоем более 30 кг молока удовлетворяет потребности в аминокислотах за счёт микробного синтеза в рубце только на 30-40 %, а при среднесуточном удое 15 кг до 75 % [26, 48]. Микробный синтез, по мнению Е.В. Летуновича [и др.] способен удовлетворить потребности крупного рогатого скота в аминокислотах только у коров с молочной продуктивностью до 23 кг [67]. Недостаток лизина и метионина снижает синтез бактериями и инфузориями рубца микробного протеина [52]. При дополнительном введении в состав рациона этих аминокислот наблюдается увеличение синтеза бактериями и инфузориями

34 микробного протеина на 28-81 г/сутки. Наиболее высокие колебания аминокислотного состава белка наблюдалось у простейших, чем у бактерий [48]. При снижении рН рубцового содержимого до 4,0-5,0 ед. наступает расстройство процесса пищеварения, атония, снижается доля инфузорий. Аминокислоты разлагаются с образованием тирамина, гистамина, кадаверина, которые всасываются в кровь и могут привести к возникновению ламинита [46, 69, 91]. Методом дезаминирования аминокислот в рубце образуются α-кетокислоты, которые путём окисления превращаются в жирные кислоты. Из незаменимых аминокислот: валина, гистидина, аргинина и серина синтезируются пировиноградная кислота, которая является прекурсором глюкозы и гликогена [91]. В крови коров наибольшее количество свободных аминокислот: аргинина, гистидина, лизина, валина и лейцина находится в плазме крови и с возрастом увеличиваются [46, 48, 61, 91]. В эритроцитах крови молодых животных содержатся значительно меньше метионина, лейцинов, лизина, цистина и гистидина по сравнению со взрослыми животными [48, 94]. Наиболее ценным по аминокислотному питанию является обменный протеин, который поступает в кишечник не подвергшейся ферментации рубцовой микрофлорой [97]. По мнению Б.Д. Кальницкого и Е.Л. Харитонова скорость распада аминокислот распадаемого нерастворимого протеина может значительно различаться (в 3 раза). Например, скорость распада составляет: лизина 6,2 %/ч, аргинина 2,0 %/ч, метионина 2,5 %/ч [5]. По мнению Ижболдиной С.Н. при введении в рацион дойных коров кормового концентрата лизина приводит к улучшению воспроизводительной способности жвачных животных, переваримости питательных веществ рациона и вследствие этого молочной продуктивности [61]. Аминокислотный состав крови зависит от физиологического состояния организма коров, так как эритроциты служат депо аминокислот в крови. Так же суммарное число аминокислот в предродовой и до 90 суток раздоя снижается и после 91 суток до девятого месяца лактации возрастает. Наибольшее содержание

35 аланина, треонина, метионина и лейцина, а также глутаминовой кислоты обнаружено в сердце по сравнению с другими мышцами. В печени высокое содержание метионина, глицина, треонина, лейцина, фенилаланина и гистидина. На образование молока приходится более 70 % поступивших в организм аминокислот [96, 97, 98]. Из исследований, проводимых на лактирующих коровах с продуктивностью 6-8 тыс. кг с жирностью молока 3,4 %, при сбалансированном составе обменного протеина потребность в незаменимых аминокислотах таких, как метионин и лейцин были дефицитными [5]. По мнению Ю.В. Сизовой на поддержание жизни используются аминокислоты в количестве: лизин – 36,9 г/сутки, метионин – 6,9, фенилаланин – 10,7, и лейцин – 24,7 г/сутки [98]. Увеличение содержания триптофана приводит к увеличению 3-оксиантраниловой и ксаннтуреновой кислот, гистамина, гистидина, является причиной возникновения фиброза, которых характеризуется снижением синтеза альбуминов и увеличением – алфа- и гаммаглобулинов [4, 56, 91, 98]. Избыточное поступление глицина с кормами ведет к повышенной концентрации кислот – глиоксиловой и щавелевой и могут служить причиной возникновения родильного пареза [46, 56, 91]. 1.4. Источники кормового протеина Поступление в организм крупного рогатого скота кормового протеина происходит благодаря использованию протеина белкового происхождения и небелковым азотистым соединениям [14, 23, 69, 111]. К небелковым источникам азота относят: кислотные амиды (мочевина, аспарагин), органические основания (бетаин, креатин, креатинин), аммиак, аммониевые соли, нитраты, продукты разложения и синтеза протеина [14]. 1.4.1 Небелковые азотистые соединения Карбамид (синтетическая мочевина) представляет собой порошок белого цвета, без запаха, солоновато-горького вкуса, содержит до 46,5 % азота, содержание энергии 250 ккал в 100 граммах [47]. Попадая в рубец, под действием уреазы он распадается на свободный аммиак и углекислоту. Токсическое действие

36 заключается при избыточном введении в рацион, так как это приводит к большому уровню всосавшегося в кровь аммиака [26, 111]. У мочевины и силоса степень растворимости и разщепляемости равны [76]. Один килограмм мочевины равен 2,5 кг сырого протеина. Максимальная суточная дача не должна превышать 100-150 граммов на голову в сутки [1, 23, 24, 26, 47, 111]. При разовой даче мочевины более 80 г приводит к возникновению алкалоза рубца у коров [67]. При отравлении мочевиной в сыворотке крови повышается концентрация неорганического фосфора, метгемоглобина, аммиака, азота, и снижение общего белка крови, концентрации кальция [91]. По данным сотрудников ВИЖа им. Л.К. Эрнста эффективно использовать мочевину совместно с цеолитовот туфом в соотношении 1:1,5 [98]. Сульфат аммония содержит 25,9 % серы и 21,2 % азота, хорошо растворим в питьевой воде. Лучше всего усваивается при скармливании сульфата совместно с карбамидом в соотношении 1:2,0-2,5 соответственно [26, 47]. Диаммонийфосфат белый порошок, иногда с желтым оттенком с характерным запахом аммиака, хорошо растворим в воде, содержит до 23,5 % фосфор и около 19-20 % азота. Наиболее эффективно скармливать совместно с мочевиной в соотношении 1:2,0-2,5, это позволит рационально балансировать потребности в фосфоре и азоте. В Казани разработан новый вариант данной добавки ДАФ (жидкий диаммонийфосфат) с содержанием фосфора 22,7 % и азота не мене 8 % [23, 26, 47]. Аммиачная вода – раствор, образуемый при взаимодействии аммония и воды. Различают в сельском хозяйстве 2 вида аммиачной воды с концентрацией аммиака не менее 20 и 25 % [26, 47]. Нестойкое соединение при контакте с воздухом разрушается. На эффективность использования азотистых веществ небелкового происхождения оказывают влияние обеспеченность организма медью, кобальтом, магнием, кальцием, фосфором и серой [47].

37 1.4.1.1 Нитраты и нитриты Нитраты и нитриты, так же являются у жвачных животных источником азота. Они накапливаются в процессе роста и развития растений, которые попадают туда путём внесения азотных и органических, преимущественно навоз крупного рогатого скота, удобрений. Наибольшее количество нитратов обнаруживается в молодых растениях и доля в составе протеина растений может достигать 50-70 % [13, 21, 24]. При длительных воздействиях солнечных лучей концентрация нитритов и нитратов снижается [13, 24]. Оптимальное потребление нитратов должно быть не более 0,25 % от сухого вещества и содержание в рубце здоровых животных находится на уровне 5 мг% [24]. При избыточном поступлении нитратов и нитритов с кормами приводят к угнетению микрофлоры рубца, торможению синтеза витаминов А, Е, В1, В2, и характеризуется нарушением процесса пищеварения [54]. Включение в состав рациона дойных коров с явными признаками нитратного токсикоза (субтоксичная доза NO3–) смеси антиоксидантов вида Flavobacterium vitarumen на 23,3 %, что в свою очередь являлось стимулом протеолитической активности микроорганизмов рубца (повысилась на 3,25 %), так же наблюдалось увеличение выхода молочного белка на 0,17 % [107]. Нитраты и нитриты способствуют увеличению концентрации метгемоглобина в крови, тем самым приводят к нарушению дыхательной функции у жвачных животных, в следствие снижается молочная продуктивность. В молоке наблюдается аномальная дисперсность и размер жировых шариков возрастает удельная плотность поверхностного белка молока [24, 26, 107]. 1.4.2 Зернобобовые культуры и корма микробиологического синтеза Содержание сырого протеина в бобовых культурах колеблется в пределах 18-40 %. Протеин бобовых культур преимущественно состоит из глобулинов, среди которых доминируют вицилин и легумин [8]. Лимитирующими аминокислотами в протеине зерна бобовых культур является серосодержащие, а именно, метионин и цистин [8, 44, 58].

38 На территории Российской Федерации в Центральном черноземном районе наиболее эффективными и пригодными кормовыми культурами к выращиванию на серых лесных и черноземных почвах считают – горох посевной, люпин белый и сою [11]. Зерно белого люпина, сои и рапса состоят в основном из двух видов белка: альбуминов, которые растворимы в воде и глобулинов – растворимых в солевых растворах [115, 129]. Дрожжи кормовые содержат сырого протеина – 40-65 % и переваримого протеина – 35-50 %. На 1 кг кормовых дрожжей приходится около лизина – 42 г, триптофана и метионина 6 граммов соответственно. В состав рациона для дойных коров норма ввода составляет 50 граммов на голову в сутки [23, 26]. 1.4.2.1 Горох кормовой Горох является одной из распространённых кормовых культур в Российской Федерации. В зависимости от условий выращивания и сорта содержит в 1 кг зерна сырого протеина около 180-240 г, лизина 12-15. Белок зерна гороха содержит в своём составе до 38 % водорастворимой, растворимой фракции, в солях фракций протеина – 51 % [58]. Протеин зерна гороха состоит на 60-80 % из водорастворимых альбуминов и глобулинов [30]. Основной белок гороха – легумин (более 60 %), который богат незаменимыми аминокислотами: лизином (6-10 %), серином, треонином, но мало триптофана (3,2 г/кг) и метионина (4,5 г/кг) [30, 44]. Зерно дефицитно по содержанию аминокислот: метионину, триптофану, гистидину и цистину. При скармливании дерти гороха совместно с метионином и цистином его биологическая ценность повышается [30, 58, 83]. Содержит в 1 кг натурального зерна: около 12,0 МДж обменной энергии, лизина – 15,3 г, метионина с цистином – 4,7, триптофана – 1,7, клетчатки – 57 и сахаров – 44 г [98]. Содержание клетчатки колеблется в пределах 6 %: В зерне гороха содержится жира – 1,0-1,5 %, ненасыщенные жирные кислоты представлены: линолевой – 36,3 %; олеиновой – 15,4; линоленовая 6,7 %, а на долю насыщенных кислот приходится: пальмитиновая – 12,9 % и стеариновая – 2,1 % [30, 58]. В зерне

39 наблюдается высокое содержание витаминов: В1, В2, В6, РР, К, D, С (25-38 мг%), холин и провитамин А (1,0-1,7 мг%) [30]. При физических методах обработки зерна гороха, с содержанием белка 207 г, расщепляемость протеина снижается с 84, 9 % до 54,7 % при этом на 1 кг зерна приходится расщепляемого протеина 31,3 и 93,8 г соответственно. Применение барогидротермической обработки (БГТО) зерна снижает распадаемость протеина в рубце коров на 36,5 % ниже, чем по отношению к натуральному зерну гороха, степень защиты протеина составила 43 % [77]. Аминокислотный состав зерна при БГТО изменяется незначительно. Скармливание зерна жвачным животным после обработки приводило к снижению амилолитической активности микробиоты рубца и увеличению поступления глюкозы из тонкого кишечника жвачных животных. Содержание антипитательных веществ, ингибиторов химотрипсина и трипсина в зерне гороха составляет 0,2-0,45 мг/г [8]. Ингибиторы трипсина, содержащиеся в зерне гороха, приводят к снижению отщепления аминокислот, особенно метионина, от молекулы белка. По мнению Пономаренко Ю.А. содержание ингибиторов трипсина в зависимости от сорта составляет 40-160 мг на 100 граммов [83]. По мнению Харитонова Е.Л. зерно гороха, несмотря на то, что у него низкая распадаемость протеина, не является хорошим источником протеина, так как только 15 % белка может всосаться в кишечнике [5]. Для дойных коров включают зерно гороха в комбикорма до 25 % [69]. Оптимальная норма ввода в состав комбикорма для крупного рогатого скота составляет до 10-15 % [83, 98]. При скармливании гороховой дерти в пределах 8-15 кг/сутки может привести к возникновению алкалоза [69]. 1.4.2.2 Соя кормовая Соя – является культурой обладающей наиболее биологически ценным протеином. Содержание сырого протеина в зерне превосходит все зернобобобовые культуры мира. Зерно сои содержит: протеина – 33-45 %, углеводов – 25-27,

40 липидов до 20-25, клетчатки – 7, лизина до 1,3 % (может содержать свыше 30 г/кг сухого вещества) [30, 83, 93, 98]. Белок соевого зерна обладает высокой степенью растворимости, которая составляет около 80 %, а по биологической ценности протеина является самым ценным, по отношению к другим зернобобовым культурам [93]. По энергетический питательности соя содержит 14-15 МДж и до 19 % сырого жира в 1 кг зерна [98]. В Российской Федерации на 2010 год производство зерна сои составляет 1 млн. тонн, при средней урожайности 10 ц/га [78]. Показатели питательности сои зависят от способов ее обработки (тостирование, автоклавирование, прожаривание, экструдирование и т.д.), например, полножирная соя после обработки содержит сырого протеина – 34-38,5 %, а сырой клетчатки – 5-9,5 % [34]. Соя содержит в своем составе высокий уровень белка глицинина, имеет большое количество серы, углерода и низкое – азота [30]. Производство сои, около 90 % всего производства соевых бобов в мире сосредоточено в США, Аргентине и Бразилии. Стоимость выращивания люпина на кормовые цели равняется 3 000-4 000 рублей за тонну, а зерна сои – 14 000-17 000 за 1 тонну, а при выращивании данных культур наиболее предпочтительней является люпин, так как он в 4,5 раза дешевле по сравнению зерном сои [78]. Аминокислотная питательность соевых бобов составляет: лизина 21 – 23 г, а метионина совместно с цистином – 9,6 г в 1 кг зерна [93]. После физического метода обработки зерна бобовых культур содержание обменной энергии увеличивается на 15 %, а доступность аминокислот увеличивается с 79 до 85 % [5, 58] По данным В.Г. Рядчикова на долю сои в мировом производстве приходится 6,9 %, а по содержанию лизина способно обеспечит более одной четверти потребностей в нем. Бразилия, Аргентина, США, Китай являются главными производителями соевых бобов, и приходится более 88 % мирового производства. Основной район возделывания зерна в Российской Федерации является Дальний

41 Восток и Северный Кавказ, урожайность которого находится в пределах 10 ц/га [5, 44, 64]. Соевые бобы по содержанию протеина и незаменимых аминокислот, приближаются к белку животного происхождения и в ФАО ООН он был принят за эталон растительного белка [5, 64]. По мнению Лукомца В.М. [и др.] на протяжении 13 лет (до 2002 года) возделывание зерна сои на Кавказе (Краснодарский и Ставропольский край) увеличилось с 35 до 59 тыс. га, а продуктивность зерна составила приблизительно 100 тыс. тонн [5]. Витаминная питательность сои заключается в содержании высокого количества каротина и витаминов таких, как В1, В2, В3, В11, С, РР, К, холин и витамин Е [30, 81]. Исходя преимуществ сои, ограничивается включение ее в рацион сои более 10 % из-за наличия антипитательных веществ – 0,6-1,4 %, которые являются ингибиторами протеаз, на долю ингибиторов трипсина приходится 1,0-3,2 % [81, 83, 114]. В необработанных соевых бобах содержатся белковые фракции, угнетающие процесс пищеварения в кишечнике: лектины в количестве – 1,3 % и гемагглютинины – 1-3 %, а также сапонины 0,5 %, оказывающие гемолитическое (агглютинирующее) влияние на эритроциты, ухудшают потребление и качество корма [30, 43, 83]. Сою можно скармливать в чистом (необработанном) виде в составе комбикормов для дойных коров до 15 % [83]. Содержание антипитательных веществ, ингибиторов химотрипсина и трипсина в зерне гороха составляет 11,2-38,0 мг/г [8]. Может скармливаться в рационах крупного рогатого скота в виде силоса, сенажа, жмыха и шрота, муки и зелёной массы. При введении в состав рациона жвачным животным сои 25 % наблюдается снижение расщепляемости в рубце в течение суток с на 12,5 % выше, чем при введении других источников сырого протеина [5, 44, 58, 76]. После прохождения экструдирования у сои снижается степень расщепления сырого протеина, в процессе пищеварения увеличение содержания сахаров, а так

42 же снижение влияния антипитательных факторов зерна. Тостированная соя содержит: сырой протеин – 38 %, линолевую кислоту – 8,05, клетчатку 5 % [83]. Соя содержит высокую долю нерастворимой распадающейся фракции протеина, скорость распада которой может колебаться от 28 до 58 % [5]. В тостированной сое содержится: протеина – 34 %, треонина – 1,11, метионина – 0,41, лизина – 1,72 %, обменной энергии в 100 граммах – 1 297 кДж. Общее содержание клетчатки составляет 9,5 %. В состав комбикорма для лактирующих коров вводят в количестве 15 % [47, 58, 59, 83]. Жмых и шрот из соевых бобов по биологической ценности протеина приближается к рыбной муке. По содержанию биологически ценного сырого протеина могут достигать до 42 % в сухом веществе зерна. Концентрация энергии составляет около 12,1-13,6 МДж. Суточная норма ввода в состав рациона не более 2-2,5 кг на голову [23, 52, 111]. Долгосрочное неиспользование соевого шрота приводит к возникновению чрезмерного перекисного окисления липидов и продуктов его метаболизма [34]. 1.4.2.3 Люпин кормовой Люпин – ценная высокобелковая кормовая культура, которая незначительно уступает зерну сои по биологической ценности протеина [6, 7, 8, 10, 22, 74, 108]. Люпин как представитель семейства зернобобовых содержит около 18 тысяч видов, в России используют наиболее распространённые три вида кормового люпина: изменчивый (L. mutabilis), синий или узколистный (L. anqustifolis), жёлтый (L. luteus) и белый (L. albus) [10, 34, 40, 113, 115, 131, 132]. По возделыванию люпин является неприхотливой кормовой культурой по отношению к почвенным условиям и обладает повышенной урожайностью зелёной массы и зерна, обладает высокими кормовыми и вкусовыми качествами, способностью связывать азот воздуха и 80 % своих потребностей благодаря азотфиксации [44, 62, 74, 113, 131, 132]. Люпин находится в симбиозе с Rhizobium lupini (клубеньковыми бактериями), исходя из этого, растение способно фиксировать атмосферный азот до 300 кг на 1

43 гектар посева [115, 131, 132]. Развитая корневая система люпина дает возможность по отношению к другим культурам использовать люпину труднорастворимые (малодоступные) фосфаты и калий (например, калий из биотита) [11, 102, 103, 128, 131]. По мнению И.П. Такунова все виды и сорта люпина являются высокими по продуктивности зеленой массы, зерна и относятся к высокобелковым культурам [102]. Растение люпина обладает густой облиственностью, листья на длинных черешках пальчатосложные, очередные, высота стебля до 1,5 м. Плод – боб, который содержит до 5-6 семян и не облает характерным для люпинов, предрасположенности к растрескиванию бобов [34, 113]. По мнению авторов [6] введение в комбикорм люпина совместно с рапсом по кормовым и технологическим качествам, биологической ценности протеина и содержанию питательных веществ не уступают полножирной сое, но и по стоимости зерна соя в 2,5 раза дороже [6, 7, 12]. По данным А.И. Артюхова наиболее эффективная площадь для посева люпина на кормовые цели на юге Нечерноземной зоны России, для производства собственных кормов и на получение годовой молочной продуктивности коров 7000 кг составляет 12 %, а на горох и кормовые бобы приходится 8, на рапс – 6 % [11]. По содержанию обменной энергии и сырого жира люпин уступает сое, концентрация которой в 1 кг зерна составляет 10,3 МДж [98]. По мнению автора [131] белый люпин содержит в своем составе: сухого вещества – 896 г/кг сухого вещества, 11,8 МДж/кг доступной энергии. Зерно люпина в среднем содержит: 49 г азота [81, 83], 95 г/кг сырого жира, 428 г/кг свободного азота, сырой клетчатки – 103, НДК – 172 г/кг, КДК – 143 г/кг сухого вещества [131]. Ввод зерна люпина в рацион жвачным животным способствовал увеличению скорости осеменения на 37 % и наиболее эффективному поступлению в плазму крови гормонов, пролактина и инсулина [131]. Зерно белого люпина (Эфиопия) содержит в своем составе крахмал в количестве 5-12 %, но его содержание от условий выращивания

44 может повышаться до 50 %, содержит сырой жир до 13,6 % и минеральных веществ – 4,3 % [132]. Динамика содержания сырого протеина в люпине всех сортов наблюдается в: зерне 35-46 %, зелёной массе – 18-20 % в сухом веществе [10, 26, 29, 34, 40, 70, 74, 83, 86, 112, 113, 131]. В некоторых сортах однолетнего желтого люпина, по мнению В.Н. Мазурова [70], содержание сырого протеина может достигать 50 % [10, 29, 128]. В зерне люпина содержится жира – 3,2-5,8 %, ненасыщенные жирные кислоты представлены на 75 % масляной фракцией, в том числе кислоты: линолевая – 35, линоленовая 4,5 %, а также высокая доля сахаров в сухом веществе [39, 44, 74, 83]. Основная доля протеина зерна люпина состоит из глобулинов, на которую приходится свыше 50-60 %, а уровень альбуминов составляет – 26-40, глютаминов не более 12 %. Скармливать зеленую массу люпина крупному рогатому скоту можно не более 30 % от общей питательности рациона, силосовать совместно со злаковыми культурами [96]. Зеленую массу люпина можно скармливать крупному рогатому скоту, по мнению В.Н. Мазурова, в виде: силоса, травяной муки, свежем, зерносенажа, гранул и брикетов [70]. В Италии современные сорта сладкого белого люпина являются альтернативным источником соевого белка, и они являются неприхотливыми к почвенным условиям, с содержанием сырого протеина в зерне 38-42 % [122]. Использование зеленой массы люпина совместно с другими травосмесями на силос при сравнении с кукурузным силосом способствовало увеличению среднесуточных приростов живой массы на 17,4 % и удоя на 20 % и одновременное снижение затрат на производство одной единицы продукции до 15,4 % [51]. Биологическая ценность протеина люпина составляет 78 %, распадаемость в рубце коров составляет 80,5 %, а переваримость колеблется в пределах 80-89 % [37]. Зерно люпина дефицитно по содержанию триптофана и метионина, которые составляют 0,6 и 1,3 % соответственно [7, 12, 74, 101]. По мнению Л.А. Забодалова протеин люпина на 36,7 % состоит из незаменимых аминокислот: лейцин –

45 5,9-7,1%, лизин – 4,1-7,5, валин – 3,1-4,3, тирозин совместно с фенилаланином до 9,6 % [128]. Динамика содержания сырого жира составляет 3,6-20 % в среднем по люпину, а в узколистном люпине составляет 3-5 % [29]. Наиболее часто в кормлении крупного рогатого скота используется вегетативная масса синего (узколистного) и желтого люпинов [102]. Содержание лизина находится в пределах 4-7 % от сырого протеина зерна люпина или 19 г лизина в 1 кг сухого вещества. Содержание аминокислот: метионина, цистина, лейцина и изолейцина в зерне белого люпина больше чем в соевых бобах [113]. По общему (валовому) содержанию незаменимых аминокислот люпин (153,6 г/кг зерна) уступает сое незначительно (6,4 г/кг), а вика (103,8 г/кг) и кормовые бобы (103,3 г/кг) находятся на одном уровне, горох занимает последнее место и содержание незаменимых аминокислот составляет – 99,1 г/кг натурального зерна [34, 35, 36, 102]. Белок люпина не включает в себя такие вещества, как лактозу и холестерин, проламин, вызывающий нарушение углеводного и липидного обменов. Люпин содержит высокую концентрацию кальция, магния, калия и железа, а также богат β-каротином и витаминами группы B [112]. Зерно люпина содержит в своем составе 2 основных белка: α-конглютин, который совместно с дисульфидными связями представляет около 35-37 % от концентрации глобулинов, β-конглютин концентрация которого самая высокая и составляет 45 % от валового содержания глобулинов [115, 118, 129]. При экструдировании снижает растворимость азота на 57 %, увеличивает продуктивность дойных коров (с 87 до 30 %) [70]. Зерно люпина относительно других бобовых культур содержит, значительно, невысокую долю крахмала, но богато клетчаткой, которая составляет основу клеточной стенки семядолей и содержит пектиноподобные вещества [44]. Содержание сырой клетчатки в люпине колеблется в пределах 13,5 % [83, 96]. В клеточной стенке содержится значительное количество олигосахаридов: раффиноза, стахиоза, вербаксоза. В состав люпина входит до 40 % некрахмалистых

46 полисахаридов, которые в основном представлены гемицеллюлозой – 18 % и пектином – 17 % [32, 78, 83]. По мнению Л.А. Забодаловой [и др.] полисахариды люпиновой муки представлены из гемицеллюлозы и пектиновых веществ – 10,2 %, сырой клетчатки – 11-18 и крахмалом – 3,97 % [128, 132]. Замещение подсолнечного шрота зерном люпина способствовало оптимизации содержания в рационе триптофана, лизина и олеиновой кислоты [109]. По содержанию и качеству сырого протеина люпин не уступает только сое, а содержание жира достигает 8 %, в зерне белого люпина до 12 % липидов [11]. По мнению А.В. Подобедова при скармливании люпина и соевых бобов в соотношении сои и люпина (50:50) в составе концентрированной кормовой добавки (комбикорма) содержание ингибиторов трипсина сои снижается в 2 раза, а также алкалоидов люпина по сравнению с использованием этих кормов индивидуально [78]. Преимуществами люпина является более низкая стоимость, а также культура превосходит все остальные по выходу протеина с гектара. Люпин по отношению к другим зернобобовым относительно долго хранится, так как не подвергается поражениями насекомых, и редко подвергается контаминацией плесневыми грибами. Скармливать молочному скоту можно в виде цельного или молотого зерна, хлопьев [32, 44, 57, 58, 78, 83, 131]. По мнению В.Н. Мазурова, скармливание зерна однолетнего люпина (25 %) вместо овса и ячменя, входивших в состав зернофуража (4 кг концентрированной смеси), повышает переваримость основных питательных веществ на 1,05-4,28 % [70]. Средняя урожайность современных сортов люпина составляет 40-50 ц/га семян, с содержанием сырого протеина 32-36 % в ядре, а в кожуре до 8, алкалоидов – 0,02-0,03 % [39, 74]. По отрицательному действию ингибиторов протеолитических и гидролитических ферментов уступает гороху и сое. По концентрации алкалоидов в зерне может разделить на 3 группы: сладкие с содержанием алкалоидов менее 0,025 %, малоалкалоидные – 0,025-0,1, среднеалкалоидные – 0,1-0,3, горьких (высокоалкалоидные) – более 0,3-1 % [10, 74,

47 81, 83]. Оптимальной концентрацией алкалоидов в люпине считается, что они не должны превышать 0,1 % [70]. Согласно нормам РАСХН (2016) зерно люпина может быть использовано в кормлении жвачных животных, если содержание алкалоидов в нем не превышает 0,025 % [34, 98] Алкалоиды – азотсодержащие органические вещества, по химической структуре – гетероцикличные соединения, обладающие щелочными свойствами, являются солями кислот органических и минеральных [10, 83, 132]. В люпине содержатся алкалоиды: люпинин, люпинидин, гидрокилюпинин, люпанин, спартеин, вернин и их соли солянокислые: спартеин, гидроксилюпанин и люпанин [83, 113, 132]. Наибольшее содержание алкалоидов люпина отмечено в зерне, зелёной массе и соломе [96]. В основном алкалоиды люпина представлены люпинином и спартеином, которые обладают гепатотоксическим действием, в семенах – генистином, доля которого составляет 0,1-0,5 % [83, 114]. Люпинин термостабилен, на вкус горький и обладает хорошей растворимостью в воде [83, 96, 132]. Для крупного рогатого скота токсическое действие алкалоидов на организм проявляется при концентрации 20 мг/кг живой массы, а смертельная – 30 мг/кг [83, 96]. При высоком поступлении алкалоидов в организм животного вызывают сильное возбуждение центральной нервной системы и парализуют ее центры, при хроническом токсикозе наблюдается снижение цинка в организме, нарушается его обмен, а содержание селена и меди в печени возрастает [83, 96]. Алкалоиды люпина обладают фотосенсибилизирующим и гепатотоксическим действиями. При хроническом отравлении алкалоидами люпина нарушается минеральный обмен – снижается количество цинка, а селен и медь в печени повышается [83]. Оптимальная норма ввода кормового люпина в рацион телок и взрослым дойным коровам не выше 10 % от массы концентратов [98]. Современные наиболее эффективный метод снижения доли алкалоидов в зерне – высокотемпературная обработка, позволяющая снизить их концентрацию до 45 % [47, 77, 112]. В состав комбикорма для крупного рогатого скота включаю в размолотом виде без термической обработки [6, 12]. При введении в состав

48 рациона концентрированной смеси гидротермообработанной, содержащей в своем составе зерно люпина и сои, взамен рапсового шрота (в соотношении 1:1 кг) суточный удой увеличился на 1,5-2,0 кг молока [78]. По мнению ВНИИ люпина введение в рацион однолетнего люпина в количестве 20-25 % от общей питательности комбикорма приводит к увеличению молочной продуктивности, повышает переваримость питательных веществ рациона (протеина) и снижает расход кормов на единицу продукции. Оптимальная норма ввода в состав комбикорма однолетнего люпина в кормлении крупного рогатого скота считается до 6 кг на голову в сутки [70]. В люпине также содержатся ингибиторы трипсина и хемотрипсина [81, 83]. Они состоят в основном из термопластичных белков, которые при высокой температурной обработке разрушаются, погибают кишечная палочка и сальмонеллы, происходит консервация витаминов [83]. Алкалоиды зерна желтого люпина в основном представлены: люпинином до 70 %, и спартеином – 30-50 % [10]. По мнению Артюхова А.И. современные сорта люпина обладают высокой продуктивностью, что в свою очередь позволяет экономить расходы на удобрения при возделывании, сбалансированного по белку зерна (35-40 ц/га) и высокобелковой зеленой массой (400-600 ц/га) для заготовки силоса и зерносенажа [9]. Современные сорта люпина, возделываемые на территории Белорусской республики, в среднем, в составе зерна концентрация алкалоидов (%) находится на уровне 0,026-0,27 %, в их число входят сорта: Добрыня (0,06), Ранни (0,035), Ян (0,026), Жодинский (0,05), Кормавы (0,04-0,06) , Михал (0,04), Миртан (0,03-0,05), Дзивны (0,033), Гулливер (0,052), Прывабны [81, 82, 83]. Современные сорта люпина желтого выведенные в республике Беларусь: Мотив 369, Кастрымчик, Родник (совместно с ВНИИ люпина) [12, 57, 102, 106]. Сорт Мотив 369 является скороспелым, вегетационный период до 137 суток, устойчив к полеганию, обладает высокой урожайностью семян (6,5 ц/га) и зеленой

49 массы (136,8 ц/га). Был выведен в Белорусской сельскохозяйственной академии профессором Г.И. Таранухо и др. [57, 106]. Камстрычник – вегетационный период до 105 суток, высокая начальная скорость роста, урожайность зерна 26 ц/га, зеленой массы – 560 ц/га. Устойчив сорт к фузариозу и полеганию [57]. Сорт Родник выведен для универсального использования. Окраска семян мраморная, вегетационный период 115 суток. Высокий урожай зерна до 26,3 ц/га, зеленой массы – 918 ц/га [57, 81]. Современные сорта люпина жёлтого возделываемые на территории Российской Федерации: в центральном чернозёмном районе – Дружный 165, Жемчуг, Бригантина, Надёжный; нечерноземном – Академический 1, Деснянский, Мотив 369, Пружанский, Ресурс 720 и другие [9, 40]. Наиболее устойчивыми сортами желтого люпина к антракнозу являются: Мистер (Польша), Россия – Престиж, Надежда, Пересвет и Демидовский [103]. Узколистный люпин в зерне содержит до 8 % жира, который в составе представлен ненасыщенными жирными кислотами. Сорта узколистного люпина, выращиваемые в РФ: чернозёмной зоне – Кристалл, Витязь, Орловский сидерат, Смена, Ладный, Радужный; нечерноземной – Ладный, Данко, Брянский 13, Немчиновский 846, Бисер, Темир 1 и другие [9, 40]. Сорта Брянский-123, Снежеть и Кристалл по содержанию протеина превосходят зерно гороха (пелюшка и сорт Спрут). Использование люпина узколистного сорта Брянский 123 в составе рациона (силосно-сенажно-корнеплодного) первотелок в период раздоя – 25 % от уровня концентратов в рационе, по мнению Ф.Г. Кадырова, способствовало повышению среднесуточного удоя на 12, 7 % и массовой доли жир до 3,92 % и белка до 3,13 % в молоке [51]. Сорта узколистного люпина Снежеть, Надежда и Кристалл созданы на основе белорусских сортов выведенных Н.С. Купцовым, которые проявляли высокую устойчивость к антракнозу вызываемым микроскопический грибок Colletotrichhum lupini [11, 103]. штаммом COL-1

50 Распадаемость сырого протеина в сорте Кристалл 83,2-91,3 %, сухого вещества 68,3-69,3 %, по сумме незаменимых аминокислот – 83,2-91,3 %, сорта Снежеть до 86,3 %. Содержание алкалоидов в зерне узколистного люпина сорта Кристалл находится на уровне 0,085-0,075 %. При включении его в рацион коров до 19 % от сухого вещества снижается амилолитическая активность микрофлоры, наблюдают снижение уровня мочевины в сыворотке крови на 13-18 % и доля инфузорий в рубцовом содержимом [60]. В рубце коров расщепляемость алкалоидов зерна люпина находится на уровне свыше 50 % [12, 60, 64]. Наиболее устойчивым к заболеванию антракнозу в мире обладают сорта синего люпина, выведенные в Австралии, являются Андромеда и Танджил, но не уступают и такие австралийские сорта, как Вонга и Каля [103]. В зерне узколистного люпина преимущественно содержатся алкалоиды: ангустифолин – 5-20 %, люпанин до 80, 13-гидроксилюпанин – 10 – 20 % [10]. Современные сорта белого люпина дают с 1 га до 55 ц зерна содержанием протеина 37-40 %, жира – 10-12, клетчатки – 7 %. В процессе шелушения зерна, изготовления хлопьев наблюдается значительное увеличение доли протеина на 18 %, а так же снижение содержания сырой клетчатки (на 10 %). Максимальная доля зерна современных сортов малоалколоидного люпина в рационе крупного рогатого скота составляет 15 % [39]. Малоалкалоидные (сладкие) сорта люпина скармливают крупному рогатому скоту в составе комбикормов: молодняку до 10 %, высокопродуктивным коровам – 10, дойным (низкопродуктивным) – 15 % [83]. В Германии на сегодняшний день возделываются сорта люпина узколистного: Борвета, Борута, Бордако, Боливио, Болтензия и другие, которые выведены были на основе сортов Миртан и Першацвет и Митан, обладающие высокой устойчивостью к антракyозу [103]. Сорта белого люпина, выращиваемые на территории Российской Федерации: Деснянский, Старт, Дега, Мановицкий, Гамма, Детер 1, Дельта [9, 32, 35, 40, 102, 103].

51 Зерно белого люпина содержит в основном алкалоиды: люпанин – 50-80 %, мультифлорин – 3-10, 13-гидроксилюпанин – 3-15 % [10]. Сорт Старт является скороспелым, устойчивым к растрескиванию бобов, средняя продуктивность зеленой массы – 30 ц/га, сбором белка с гектар 12 ц, обладает высокой скороспелостью с содержанием алкалоидов – 0,05 %, содержание сырого протеина колеблется в пределах 37-40 %, сырого жира – 10-12 % [32]. Сорт Старт может выращиваться в северных районах, по сравнению с другими сортами белого люпина. Официально районирован сорт в России в 1982-1983 годах. Характеризуется ограниченным ветвлением, низкорослостью и по размеру семя является самым мелкозернистым, но обладает укороченным вегетационным периодом (до 120 суток) по сравнению с другими сортами белого люпина. При благоприятных условиях урожайность составляет 3-4 т/га, сбор белка с 1 гектары до 15 ц, предрасположен к возникновению фузариоза [11, 34, 35, 36, 103, 106]. Сорт Мановицкий, созревает позднее, чем сорт Старт, т.е. является позднеспелым, но обладает высокой продуктивностью зерна (45-50 ц/га) с содержанием сырого протеина 35 %, и высокой продуктивностью зеленой массы, которая превосходит сорт Старт и составляет 500-600 ц/га [32, 34, 35]. Высота растения люпина этого сорта составляет до 90 см, является неустойчивым сортом к фузариозу. Официально сорт Мановицкий зарегистрирован и культивируется с 1993 года [34]. Сорта белого люпина Гамма, Дельта и Дега способны обеспечить юго-западную часть Нечерноземной зоны зерном до 40 ц, а зеленой массой до 800 ц/га [103]. Сорт Детер 1, созревает позднее сорта Гамма на 10 суток, а содержание белка в зерне находится на уровне 36-40 % [32]. Сорт белого люпина – Гамма отличается высокой скороспелостью, низкорослостью, устойчивостью к фузариозу [32, 34, 113]. Максимальная возможная урожайность зерна сорта Гамма, зарегистрированная на территории РФ, составляет 45 ц с гектара, а зеленой массы до 655 ц/га [34]. Содержание сырого

52 протеина в зерне этого сорта люпина находится в пределах 35-37 %, жира – 8-10, сырой клетчатки – 10,0, кальция – 0,5, фосфора – 0,9 %, алкалоидов – 0,03-0,05 % и каротиноидов – 28,77 мг/кг [34, 113]. По аминокислотной питательности – лейцин – 2,38 г/%, фенилаланин – 1,26, сумме незаменимых аминокислот 9,34 г/% [35]. Обеспечивает сбор белка до 15 ц/га без применения минеральных удобрений [34, 35]. Официально зарегистрирован сорт в 1998 году [32, 34, 35]. Сорт белого люпина Деснянский обеспечивал в условиях 2003 года урожай зеленой массы с содержанием в ней сухого вещества – 15 т и белка до 2,7 тонн [103]. Наибольшее содержание сырого протеина в белом люпине отмечалось в двух сортах – Детер 1 (40-41 %) и Дельта (39-40 %), его содержание колеблется в зависимости от условий выращивания, данные сорта по уровню содержания белка превосходили сорт Гамма. Сорт Дега, исходя из данных Г.Г. Гатаулиной, по содержанию кормового протеина занимал промежуточное значение между сортом Гамма (35,5%) и Деснянский (32,8 %) [35, 36]. Сорт Дельта характеризуется высокой долей белка в зерне, которая составляет 40 %, вегетационный период до 130 дней, устойчив к фузариозу, сбор белка с 1 гектара – 14-16 ц без использования азотных удобрений [34, 35, 102]. Сорт белого люпина Дега с влажностью 8,9 % содержит: сырой протеин – 33,4, сырая клетчатка – 10,5, жир 10,7, кальция – 0,47, фосфора – 0,94 %, каротиноиды – 28,47 мг/кг. По аминокислотной питательности сорт Дега находится на уровне – лейцин – 2,24 г/%, фенилаланина – 1,17, по сумме незаменимых аминокислот 8,84 г/% [35, 113]. Содержание алкалоидов составляет 0,03-0,05 %. Самая высокая урожайность зафиксирована: зеленой массы – 660 ц/га, зерна – 45 ц/га, высота растения до 70 см. Бобы формируются на главном стебле и побегах 1-го порядка, окраска цветков голубовато-белая, семена – кремовой, устойчив к фузариозу, сбор белка идентичный с сортом Дельта [32, 34, 35,102, 132]. Скармливание дерти зерна люпина сорта Дега вызывает снижение уровня образования аммиака в рубце на 23 %. При скармливании комбикорма, с

53 содержанием 15 % зерна белого люпина, в первые 21 сутки после отёла наблюдается снижение интенсивности пищеварения в рубце коров, а именно понижение активности целюлозолитических бактерий [108]. Скармливание зерна малоакалоидных сортов люпина снижает себестоимость производства 1 ц молока на 0,5-6,0 % [60]. 1.5 Баланс азота Большое внимание в кормлении высокопродуктивного молочного скота уделяют азотистому обмену, который обеспечивает жвачных протеином и энергией [4, 23, 68, 75, 111]. Азотистый обмен представляет собой совокупность пластических процессов превращений протеина, аминокислот и других азотсодержащих веществ (амидов, пептидов, промежуточных и конечных продуктов распада протеина и аминокислот). Синтез микробного протеина происходит из продуктов (аммиак, пептиды аминокислоты), образовавшихся в процессе жизнедеятельности микроорганизмов [61]. Аммиак в реакциях аминирования используется бактериями рубца как источник α - кетокислот, которые необходимы для синтеза микробного белка. По мнению автора 92 % азота поступившего с рационам преобразуется в рубце до аммиака, концентрация которого может колебаться в пределах 3-60 мг/% [76]. Известно, что до 80 % азота кормов в рубце жвачных животных преобразуется в микробный азот, исходя из этого синтез сырого микробного протеина из белковых кормов – малоэффективен, из-за потери азота в виде аммиака, который поступает в кровь, а аминокислот в пуриновые и пиримидиновые основания, которые составляют 15 % от всего азота микроорганизмов рубца [94, 120]. Микроорганизмы рубца расщепляют 40-80 %, азотсодержащих веществ корма до аминокислот, в том числе незаменимых, и пептиды, необходимые для

54 синтеза микробного протеина [23, 94]. Эффективность синтеза микрофлорой протеина составляет 10-45 г азота 1 кг переваримого органического вещества. Бактерии рубца крупного рогатого скота, такие как Streptococcus bovis, Selenomonas ruminantum, Anaerovibrio lipolytica, Fibrobacter succinogenes расщепляют неструктурные углеводы кормов и используют в качестве источника азота – аминокислоты, а микроорганизмы, ферментирующие структурные углеводы корма, используют аммиак. Аммиак служит основным источником доступного азота для штаммов Butyrivibrio, Succinogenes, Ruminococcus, Bacteroides ruminicola, которые подвергают гидролизу гемицеллюлозу и пектин, а также метаногенные – Methanobacterium ruminantium [4, 21, 23, 24, 26]. В рубцовом содержимом целлюлозолитические штаммы бактерий поглощают аммиак для синтеза микробного протеина, следовательно, при повышении концентрации аммиака в рубце ведет к увеличению концентрация целлюлозолитических бактерий и увеличению переваримости клетчатки [24]. Бактерии L. Fermenti, Streptococcus bovis и инфузории рубца способны использовать небелковый азот для синтеза белков собственного организма [21, 24, 54, 120]. Протеин, образуемый инфузориями рубца, содержит в составе высокую долю лизина [61]. Уровень пропионовой кислоты, которая обладает азотсберегающим действием и используется в качестве субстрата глюконеогенеза, влияет на сохранение азота в организме жвачных [111]. В печени жвачных происходит синтез глюкозы из пропионовой кислоты, образующийся в процессе ферментативной обработки кормов (неструктурные углеводы) микробиотой рубца коров в количестве 1,5 л [114]. Пропионат преобразуется в янтарную кислоту и после в малат, что в свою очередь приводит к образованию оксалоацетата и глюкозы. При увеличении синтеза пропионовой и снижение уксусной кислот приводят к снижению массовой доли молочного жира, снижается β-оксимасленой кислоты, способствует увеличению образования лактата в печени и глюкогеогенезу [90, 91, 94]. В печени

55 избыточное содержание пропионата является ингибитором синтеза цианкобаламина, жирных кислот и увеличением концентрации метилмалоновой кислоты в сыворотке крови [91]. Кроме использования аминокислот, полученных в процессе гидролиза, микроорганизмы способны синтезировать дефицитные аминокислоты из аммиака и органических кислот. После рубцовой обработки в сычуг поступает протеин: синтезируемый микрофлорой рубца, кормовых средств (20-40 %), эндогенный, образующийся в желудочно-кишечном тракте в виде ферментов, желчи, клеточных стенок кишечника и кишечной слизи [1, 23, 39, 48, 61, 75, 91, 94, 117, 121, 128]. Особенностью обмена азота у жвачных животных является рубцово-печеночная система использования аммиака, которая способствует экономии азота для постоянного поступления азота в рубец для восполнения потребностей и сохранения ферментативной активности микрофлоры в связи периодическим кормлением и поступление кормов в сычуг. В рубце образуется аммиак, пуриновые и пиримидиновые основания под действием нуклеаз микроорганизмов на нуклеиновые кислоты, которые содержатся в корме [23, 115]. Нуклеиновые кислоты содержат в своём составе до 16 % азота, фосфора – 10-12 %, а также углерод, водород, кислород. Фосфоэтеразы и нуклазы, синтезируемые в кишечнике и поджелудочной железе, под их действием происходит расщепление нуклеиновых кислот до мононуклеотидов. Фосфатазы кишечного тракта расщепляют образовавшиеся мононуклеотиды до фосфорной кислоты и нуклеозида, который всасывается в кровяное русло через стенки кишечника, либо с помощью кишечных нуклеозидаз расщепляется до образования азотистых оснований и пентоз. Концентрация аммиака в рубцовом содержимом достигает уровня 100-500 мг/л через 2-3 ч после кормления [115, 125].

56 На образование и использование азота в рубце коров существенное влияние оказывает наличие оптимального количество легкоусвояемых углеводов в рационе [4, 59, 61, 75, 90, 92, 100, 109, 111]. Синтез микробного протеина зависит от: степени использования азота аммиака и наличия достаточного количества доступной энергии, выработанной при ферментации углеводов [25, 59, 61, 121, 120]. Оптимальное содержание легкопереваримых углеводов в рационе к переваримому протеину кормовых средств является 0,8-1,2, при этом создаются оптимальные условия для деятельности микрофлоры рубца, увеличения синтеза летучих жирных кислот увеличение синтеза аминокислот и других биологически активных веществ [91, 120]. По мнению авторов [61] наиболее эффективное использование аммиака в рубце происходит при поступлении энергии от зерновых крахмалистых кормов, чем от меллясы, которая содержит высокую концентрацию легкорастворящихся сахаров. Ежедневная потребность дойных коров в обменной энергии должна равномерно и постоянно восполняться с рационом, но на практике из-за неправильного распределения утренней дачи кормов её дефицит может вызывать спад продуктивности на 4-5 % [25, 59, 61, 86, 88]. По мнению Волгина В.И. на сегодняшний день в рационах дойных коров в зимний период наблюдается дефицит сахаров, особенно в Ленинградской области, который может достигать более 50 %. Недостаток сахаров в рационе дойных коров ведёт к снижению эффективности использования каротина, воспроизводства, нарушению обмена веществ (энергетического и углеводно-жирового и йодного обмена) и повышению расхода протеина на 15 %, а при длительном дефиците – 30 % [31, 86, 88]. Согласно нормам РАСХН (2012) потребность жвачных в сахарах составляет 71,8-73,8 %. При скармливании дополнительного количества сахара увеличивает её концентрацию в крови и снижению уровня кетоновых тел [86, 98]. Исследования авторов [25] показывают, что введение в состав рационов патоки (меллясы) ведёт к снижению переваримости сырого протеина, а замена её

57 полисахаридами в количестве 150 г/голову в сутки способствует переваримости: протеина, незначительно повышен и достоверному увеличению переваримости клетчатки. При введении в состав рациона полисахаридов наблюдается снижение уксусной кислоты и повышению содержания бутирата и пропионата, что приводит к снижению рН рубца и угнетению целлюлозолитических бактерий. Бактерии рода Bacteroidetes активно расщеплют крахмал независимо от рН среды и содержание в рубцовом содержимом колеблется в пределах 10-12 %. Лактатсинтезирующие бактерии рода Lactobacillaceae используют в процессе жизнедеятельности глюкозу, а конечным продуктом является – молочная кислота. Синтез протеина микрофлорой рубца колеблется в зависимости от состава рациона и степени его переваривания (усвоения) может колебаться в пределах 0,4-1,5 кг в сутки [28]. Известно, что при концентрации аммиака 2-5 мг% и 10-14 мг% происходит наиболее эффективный синтез микробного протеина в рубце коров [5]. Активность глутаматдегидрогеназы возрастает при высокой доли аммиака в рубцовом содержимом, а также при включении аммония в клетки бактерий при участии этого фермента не расходуется АТФ [5, 111]. При распаде глутаминовой аминокислоты в рубце, образовавшийся в процессе аммиак быстро включается в синтез белков микрофлорой [61]. Аммиак, образовавшийся в рубце, утилизируется в основном целлюлозолитическими бактериями, которые высокочувствительны к уровню: аммиака и рН, исключение составляет только аммиак, полученный при гидролизе легкорастворимой фракции протеина, который выводится из организма животных с мочой и не участвует в микробном синтезе [61, 68, 121]. Высвободившийся аммиак в процессе ферментации кормов в рубце используется для построения белка бактерий до 65 %, а построение тела простейших свыше 65 % [76]. Микрофлора рубца не способна в полной мере использовать образовавшийся аммиак для синтеза микробного протеина, начинает, всасывается в кровяное русло [61]. Образовавшийся в процессе пищеварения, избыточный аммиак через стенки рубца всасывается в кровяное русло, прилежащих сосудов [4, 111]. В сыворотке крови аммиак взаимодействует с глютаминовой кислотой при участии молекул

58 АТФ и образует глутамин. В крови он является доминирующим амидом аминокислот и основным переносчиком аммиака в печень, где происходит процесс распада на аммиак и глутамат. Нормальное содержание глутамина в крови крупного рогатого скота колеблется в пределах 6-10 мг%. Он направляется в печень через портальную вену, где превращается в мочевину, основная часть которой вновь поступает в рубец, через его стенки или со слюной, где под действием микробной уреазы гидролизуется до аммиака [121, 124]. При концентрации аммиака в крови жвачных свыше 15 г% происходит прекращение окислительно-востановительных реакций цикла Кребса. Из цикла используются щавелево-уксусная и α-кетоглутаровая кислоты с образованием аспарагиновой и глутаминовой аминокислот, вследствие чего снижается синтез АТФ [111]. На синтез в печени мочевины влияют факторы: состояние печени и щитовидной железы, а также сбалансированность рациона по содержанию и качеству протеина кормов. Эндогенная мочевина, в рубце вновь распадается до аммиака, повторно используется, являясь источником азота для синтеза микроорганизмами рубца аминокислот и белка [121]. При участии дикарбоновых кислот в присутствии ферментов трансаминазы и глутамат-дегидрогеназы происходит синтез некоторых аминокислот путём восстановительного аминирования α-кетоглутаровой кислоты. При ферментации углеводов в преджелудках жвачных образуются летучие жирные кислоты, участвующие вместе с аминокислотами и другими метаболитами, образовавшимися в процессе пищеварения в синтезе микробного протеина, липидов и углеводов [4, 21, 25, 104, 105]. Главным показателем протеинового обеспечения организма является содержание общего белка в сыворотке крови [3]. При потреблении большого количества концентрированных кормов высокопродуктивными дойными коровами с продуктивностью свыше 3 000 кг и более содержание общего белка находился выше нормального уровня (86,0) [3, 56]. В летний пастбищный период данный показатель у коров с продуктивностью более 5 000 кг находился в норме, а ниже – наблюдалось значительное его снижение [3].

59 Дефицит пропионовой кислоты приводит снижению работы печени, что в последствие приводит к увеличению концентрации аммиака в крови, снижению процесса глюкогеонеза, снижению или полному прекращению образования мочевины из аммиака [114]. Норма по концентрации мочевины в сыворотке крови – 3,0-3,5 ммоль/л [46, 56, 114]. По мнению А.И. Назаренко, Н.Г. Букарова показателем состояния организма, в том числе белкового обмена, количественные и качественные характеристики кормления является состав молока [124]. Одним из главных показателей белкового обмена у лактирующих коров является мочевина в молоке [15, 55, 67]. Избыток сырого протеина в рационе коров приводит к чрезмерному синтезу мочевины, которая выделяется из организма в больших количествах с молоком и мочой. Низкая концентрация мочевины (15 мг в 100 мл молока) в молоке, свидетельствует о дефиците азота в рубце и может стать причиной снижения воспроизводительной способности, потребления корма и молочной продуктивности у коров [69, 124]. Мочевина в молоке является показателем азотного баланса в рубце и если его значение находится на уровне 0-10 граммов, то это соответствует её содержанию в молоке на уровне 20-25 г на 100 мл молока [4, 69, 111]. Важным показателем полноценного кормления высокопродуктивного молочного скота является соотношение жира и белка в молоке, оптимальным считается отношение 1,1-1,5:1 [69]. Если отношение более 1,5 в начале лактации, то это является причиной дефицита энергии в рационе даже, не смотря на мобилизацию жиров из депо организма коров; если данное соотношение наблюдается на протяжении всего периода лактации, то это свидетельствует о преобладании объёмистых кормов над концентратными кормами в рационе [69, 91]. Увеличение доли концентратов и снижение длины резки длинностебельчатых кормов отрицательно действует на микрофлору рубца. Увеличение концентрации пропионовой кислоты и снижение долей ацетата, масляной кислоты, кетогенных аминокислот, избытка аммиака, приводит к изменениям в функционировании печени и нарушению обмена веществ [89].

60 В моче коров, кроме мочевины, содержатся и другие азотсодержащие вещества, такие как: пуриновые и пиримидиновые основания, креатинин, креатин, аммиак, индол, алантоин и другие. Обнаружение в моче коров избыточной концентрации креатинина свидетельствует о нарушении кислотно-щелочного отношения, белкового и липидного обменов, что в свою очередь может привести к возникновению ацидоза[23, 90, 91, 92, 94, 111]. Продуктивность молочного скота зависит от количества, качества сырого протеина и полноценного аминокислотного состава кормов. Следует отметить, что корма, которые способны удовлетворить предъявленные требования по своей характеристике, являются дефицитными и обладают высокой стоимостью на рынке. В состав рационов молочного скота высокобелковые корма необходимо вводить в большом количестве для полного удовлетворения потребности в сыром протеине и незаменимых аминокислотах.

61 2. МЕТОДИКА И МАТЕРИАЛ ИССЛЕДОВАНИЙ 2.1 Цель и задачи исследования Целью исследования являлось изучение включения в состав комбикорма для дойных коров разного уровня зерна белого люпина сорта Дега взамен других белковых кормов. Для решения поставленной цели были сформулированы следующие задачи: провести сравнительный анализ аминокислотного состава зерна белого люпина разных сортов; изучить молочную продуктивность и качественные показатели молока за 305 дней лактации; определить среднесуточный баланс азота у коров; дать рекомендации производству. 2.2 Материал и методика исследований Для реализации поставленных задач в хозяйстве ФГУП «Пойма», Луховицкого района Московской области были отобраны по методу пар-аналогов глубокостельные коровы голштинской породы 2-3 лактации, находившиеся на 9 месяце стельности с живой массой 600 кг и удоем за предыдущую лактацию 8-9 тыс. кг и распределены на 4 опытные группы по 7 голов в каждой (табл. 1). Подопытные животные во время проведения опыта находились в одинаковых условиях содержания и кормления, являлись клинически здоровыми. Таблица 1 – Схема опыта (n=7) 1-контрольная Основной рацион (ОР) + комбикорм-концентрат (КК), содержащий 11,2 МДж обменной энергии и 17 % сырого протеина Группа 2-опытная 3-опытная ОР + КК (18 % ОР + КК (24 % зерна белого зерна белого люпина в составе люпина в составе комбикорма-конце комбикорма-конце нтрата взамен нтрата взамен других белковых других белковых кормов) кормов) 4-опытная ОР + КК (30 % зерна белого люпина в составе комбикорма-конце нтрата взамен других белковых кормов)

62 Животные контрольной группы получали основной рацион, применяемый в хозяйстве, который был сбалансирован по питательности, соответствовал нормам кормления РАСХН (2003) и рассчитан на получение среднесуточного удоя 40 кг молока с учетом раздоя. Основной рацион подопытных животных содержит: сено люцерновое – 1 кг; силос кукурузный – 20; сенаж люцерновый – 13,3; свежая пивная дробина – 15 кг, комбикорм-концентрат для дойных коров КК-61 в количестве 15,9 кг, минеральные корма были в виде соли-лизунца. Питательность комбикорма-концентрата для 1-ой контрольной группы составляла 11,2 МДж обменной энергии, уровень сырого протеина – 17 %. В состав рационов опытных групп коров включали комбикорм-концентрат, содержащий разный уровень зерна белого люпина (18 %, 24 и 30 %) взамен жмыха рапсового и соевого шрота. Комбикорм по содержанию обменной энергии и уровню сырого протеина соответствовал комбикорму контрольной группы (табл. 2). Состав и питательность рациона и комбикорма были рассчитаны с помощью программного комплекса «Корм Оптима». Ввод в состав комбикорма разного уровня зерна люпина осуществляли в соответствии с ГОСТом 9268-2015 «Комбикорма-концентраты для крупного рогатого скота. Технические условия» путем замены других белковых кормов с сохранением энергетической и протеиновой питательности. Для проведения физиологического опыта были отобраны аналогичные животные (по 3 дойные коровы) из каждой опытной группы, находившиеся на 8-ом месяце лактации с живой массой 623 кг и среднесуточным удоем 28 кг, жирностью молока 3,8-4,0 % по методике ВИЖа (М.Ф. Томмэ,1956; А.И. Овсянников, 1976). Основной рацион подопытных коров во время физиологического опыта состоял из сена люцернового – 0,5 кг; силоса кукурузного – 38; сенажа люцернового – 7,0; свежей пивной дробины – 0,4 кг, комбикорма-концентрата

63 для дойных коров КК-61 в количестве 10 кг, минеральные корма были в виде соли-лизунца вволю. Химический состав и питательность комбикормов для подопытных групп коров приведены в таблице 2. Таблица 2 – Химический состав и питательность комбикорма для подопытных животных во время проведения физиологического опыта Группа 2-опытная 3-опытная 35,0 35,0 Кукуруза Норма ввода1 0 – 50 1-контрольная 37,0 Люпин белый 9,5 – 502 – 18,0 24,0 30,0 Ячмень 0 – 40 25,0 20,3 24,0 24,0 Отруби пшеничные 0 – 20 5,0 15 11,0 3,0 Жмых рапсовый Шрот подсолнечный, СП – 34 %, СК – 19 % Соль поваренная 0 – 153 11,2 5,3 1,0 – 0 – 253 20,0 3,0 1,0 – 0–1 0,6 1,0 1,0 1,0 Монокальцийфосфат 0 – 2,5 0,2 1,4 2,0 2,0 Премикс П60-4 № 1 0–3 1,0 1,0 1,0 1,0 Показатель Питательность Обменная энергия Ед. измер. 4-опытная 39,0 В 1 кг содержится: МДж/кг 11,2 11,9 12,3 12,3 Сухое вещество Протеин: сырой переваримый % 88,12 88,88 89,17 89,54 % 17,00 16,98 17,08 17,91 % 13,54 13,88 14,11 15,01 расщепляемый % 10,47 11,47 11,86 12,60 нерасщепляемый % 6,54 5,51 5,22 5,31 Лизин % 0,65 0,71 0,71 0,76 Метионин + цистин % 0,67 0,55 0,51 0,51 Триптофан % 0,21 0,17 0,15 0,14 Сырой жир % 3,53 3,68 3,43 3,39 Сырая клетчатка % 7,76 7,12 6,92 6,80 Сырая клетчатка % 7,76 7,12 6,92 6,80 Кальций % 0,50 0,67 0,75 0,75 1 По данным, представленным в монографии «Корма, биологически активные вещества, безопасность», 2013 [81]. 2 По данным ВНИИ Люпина «Рекомендации по практическому применению кормов из узколистного люпина в рационах сельскохозяйственных животных», 2009 [12]. 3 По данным, представленным в «Рекомендации по детализированному кормлению молочного скота», 2016 [84].

64 Продолжение таблицы 2 Фосфор % 0,61 0,82 0,89 0,82 Калий % 0,63 0,66 0,61 0,56 Хлор % 0,44 0,67 0,67 0,67 Содержание алкалоидов в зерне белого люпина сорта Дега определяли в испытательной лаборатории центра НИИ питания РАМН, а валовое содержание аминокислот в лаборатории ООО «Эвоник Химия». Аминокислоты в зерне белого люпина были определенны на спектрометре Foss AMINONIR DS2500 (прил. Д) в соответствии с ГОСТом 32195-2013 (ISO 13903:2005) «Корма, комбикорма. Метод определения содержания аминокислот». В течение балансового опыта вели учет скармливаемых и остатков кормов, выделения мочи, кала и молока. Отбор проб кормов, молока, мочи и кала, а также их консервирование проводили по методикам, принятым на кафедре кормления и разведения животных РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева (Н.А. Лукашик, В.А. Тащилин, 1965). Исходя их полученных данных после химического анализа кормов, молока, мочи и кала рассчитывали среднесуточный баланс азота. Рис. 3.1. Процесс консервации кала и мочи подопытных коров

65 Средние пробы обирали в соответствии с ГОСТ Р ИСО 6497-2011 и анализировали по ГОСТам и общепризнанным методикам ВНИИФБиП, ВИЖа, а также утвержденным в сертифицированных лабораториях (BLGG AgroExpertus): первоначальную влагу определяли высушиванием образцов при температуре 65°С до постоянной массы; гигроскопическую влагу – высушиванием при температуре 105°С; сухое вещество определяли согласно ГОСТ 31640-2012; сырую золу в соответствии с ГОСТом 13979.6-69, ГОСТом 26226-95, ГОСТ 32933-2014 (ISO 5984:2002) – сжиганием навески в муфельной печи при температуре 500°С; содержание общего азота определяли методом Къельдаля и сырого протеина расчетным методом путем умножения процентного содержания азота на соответствующий коэффициент по ГОСТ Р 51417–99 (ИСО 5983:1997), ГОСТ 13496.4–93, ГОСТ 26889-86; сырой жир – экстрагированием серным эфиром в аппарате Сокслета по методу С.В. Рушковского, ГОСТ Р 53153-2008, ГОСТ 13496.15–97; сырую клетчатку – кипячением в слабых растворах кислот и щелочей по методу Геннеберга и Штомана (ГОСТ 31675-2012); безазотистые экстрактивные вещества – расчетным путем, по разности между количеством органического вещества и содержанием в нем протеина, жира и клетчатки; органическое вещество рассчитывали путем вычитания из сухого вещества золы. Рис. 3.2. Процесс оценки потребления кормов и взятие средних проб кормов

66 Качество молока и продуктивность коров в течение опыта измеряли 3 раза месяц методом контрольных доек. Белок и жир в молоке определяли в соответствии с ГОСТом 25179-90 и ГОСТом 5867-90. Биометрическая обработка экспериментальных данных была произведена с помощью метода математической статистики по Н.А. Плохинскому (1969) и Е.К. Меркурьевой (1970) с использованием современных компьютерных программ (стандартный пакет статистического анализа Microsoft Excel 2007). Разность считали достоверной по отношению к контрольной группе при Р < 0,05. Исследования проводили совместно с аспирантом кафедры кормления и разведения животных Прохоровым Евгением Олеговичем по направлению подготовки 36.06.01 «Ветеринария и зоотехния», программе подготовки «Кормопроизводство, кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов». Автору принадлежит обобщение и анализ обзора литературы по изучаемому вопросу, полученные данные в результате физиологического опыта и по молочной продуктивности коров, их биометрическая обработка, научное обоснование выводов, разработка практических предложений производству.

67 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 3.1 Анализ зерна люпина по аминокислотному составу Биологическая ценность протеина люпина составляет 78 %, его распадаемость в рубце коров составляет 80,5 %, а переваримость колеблется в пределах 80-89 %. Зерно люпина дефицитно по содержанию триптофана и метионина, и их уровень составляет 0,6 и 1,3 % соответственно [72]. По мнению Л.А. Забодалова протеин люпина на 36,7 % состоит из незаменимых аминокислот: лейцин – 5,9-7,1%, лизин – 4,1-7,5, валин – 3,1-4,3,тирозин в сумме с фенилаланином до 9,6 % [72, 78]. Содержание лизина находится в пределах 4-7 % от сырого протеина зерна люпина или 19 г лизина в 1 кг сухого вещества. Содержание аминокислот: метионина, цистина, лейцина и изолейцина в зерне белого люпина больше, чем в соевых бобах [39]. По валовому содержанию незаменимых аминокислот люпин (153,6 г/кг зерна) уступает сое незначительно (6,4 г/кг), а вика (103,8 г/кг) и кормовые бобы (103,3 г/кг) находятся на одном уровне, горох занимает последнее место и содержание незаменимых аминокислот составляет – 99,1 г/кг натурального зерна [34]. Как видно из данных рисунка 1, в белковых кормах наибольшее содержание аргинина отмечено в зерне сои (7,76 %), гороха (7,23 %) по отношению к среднему показателю по зерну люпина было меньше на 1,74 и 2,27, а по отношению к белому люпину сорта Дега ниже на 3,73 % и 3,2 % соответственно. Уровень валина у бобов кормовых, соевых бобов и полножирной сои находился на одинаковом уровне (5,12-5,65 %). Содержание гистидина в зерне люпина, выращенного на территории Российской Федерации, превосходил сою (бобы, полножирная с содержанием 34 % сырого протеина), а по отношению к вике и кормовым бобам превосходил на 1,0 и 0,67 % соответственно. Однако уровень лизина был отмечен в белке зерна гороха и соевых бобов, что составило 6,73 % и 6,64 %, а по отношению к зерну белого люпина сорта Дега на 5,09 % и 5,0 % соответственно.

Рис. 3.1. Содержание незаменимых аминокислот в белковых кормах, % от сырого протеина Аминокислоты Фенилаланин Соя полножирная, 34 % СП Треонин Соя Лизин Бобы кормовые Лейцин Вика Изолейцин Горох Гистидин Люпин сорта сорта Дега Валин Люпин Аргинин 0 1 2 3 4 5 6 68 7 8 9 10 %

69 1,6 Люпин 1,4 Люпин сорта Дега 1,2 1 Горох 0,8 Вика 0,6 Бобы кормовые 0,4 0,2 Соя 0 Метионин Триптофан Рис. 3.2. Содержание метионина и триптофана в белковых кормах, % от сырого протеина Как видно из данных рисунка 2, уровень метионина был самым высоким в соевых бобах и составил 1,4 % от общего содержания сырого протеина. Незначительное меньше содержание лизина наблюдалось в полножирной сое 3,64 г (1,07 %). Среднее содержание лизина в зерне люпина находится на уровне 1 %, уровень в люпине сорта Дега и вики кормовой был одинаковым – 0,84 %. Триптофан в значительной мере влияет на течение обменных процессов в организме лактирующих коров, синтеза белка и витаминов (РР). Наибольшее количество отмечено в бобах сои (1,31 %), полножирной сое с содержанием сырого протеина 34 % (1,07 %), а уровень в люпине в среднем по России и вике находилось на одинаковом уровне (0,92 %), наименьшее в люпине Дега и составил 0,25%. Содержание аминокислот в зерне белого люпина сорта Дега был проведен в лаборатории EVONIK и проведен сравнительный анализ с другими сортами и странами. На основании полученных данных по содержанию незаменимых аминокислот в люпине свидетельствуют, что сорт люпина Дега превосходит по содержанию метионина и цистина среднее значение по России, а по аргинину незначительно уступает Чили (рис. 1, 2).

% 4 Аргинин 3,5 Валин 3 Гистидин 2,5 Изолейцин 2 Лейцин 1,5 Лизин 1 Треонин 0,5 Фенилаланин 0 Россия Англия Германия Польша Австралия Чили Рис. 3.3. Аминокислотный состав белка зерна белого люпина по разным странам мира, % от сырого протеина 70

71 Как видно из данных рисунка 3, люпин, выращенный в Чили, превосходит по аргинину все страны и по отношению к России был выше на 1,0 %. Анализ аминокислотного профиля показал, что по содержанию лейцина люпин, возделываемый в России, незначительно уступал Чили и Англии, при этом разность между ними составила 1,0 и 0,37 % соответственно. Зерно белого люпина, выращенного на территории Российской Федерации, заметно уступает зерну, выращенного в Чили, Польше и Англии. Исходя из анализа данных зерно белого люпина сорта Дега, выведенный в ФГБОУ ВО «Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева» профессором Г.Г. Гатаулиной, не уступает по содержанию аминокислот средние значения по Российской Федерации, а по некоторым показателям даже приближается к значениям люпина, возделываемого в Чили. Например, зерно белого люпина сорта Дега превосходит средние значения по содержанию метионина и цистина в зерне люпина, выращенного в России на 7,59 % (рис 1, 3, 5). % Россия Англия Германия Польша Австралия Чили 0,305 0,3 0,295 0,29 0,285 0,28 0,275 0,27 0,265 0,26 0,255 Рис. 3.4. Содержание триптофана в зерне белого люпина по странам, % от сырого протеина Триптофан оказывает влияние на активность ферментов пищеварительной системы, участвует в окислительно-воставительных реакциях в клетках,

72 регулирует функции гемопоэза и эндокринной системы, половой системы, синтез белков плазмы крови, витамина В3. Дефицит триптофана влияет на увеличение затрат корма на продукцию, снижает функции половых желез, рост молодняка, приводит к снижению резистентности организма, стерильности, повышенной возбудимости, потере живой массы и отрицательному балансу азота. Полученные данные аминокислотного состава зерна показывают, что наибольшее содержание триптофана отмечено в люпине, выращиваемом в Австралии, который составил 0,3 % от уровня сырого протеина. Содержание в зерне белого люпина, выращенном в Англии и Чили, находились на одинаковом уровне (0,29 %). Метионин + цистин % 0,95 0,9 0,85 0,8 0,75 0,7 0,65 0,6 Россия Англия Германия Польша Австралия Чили Рис. 3.5. Содержание триптофана в зерне белого люпина по странам, % от сырого протеина Анализ по содержанию метионина и цистина в зерне люпина, выращенного в разных странах, показал, что наибольшее их количество отмечено в зерне из Англии (0,93 %), Чили (0,89) и Польши (0,8 %). Однако, люпин, возделываемый в Российской Федерации, находился по аминокислотному составу на уровне Польши и превосходил Германию, Австралию на 1,2 % и 0,09 % соответственно.

% 3,5 Аргинин 3 Валин 2,5 Лизин Лейцин 2 Метионин 1,5 Цистин 1 Фенилаланин 0,5 0 Рис. 3.6. Содержание аминокислот в зерне разных сортов белого люпина, % от сырого протеина 73

74 Исходя из данных анализа аминокислотного и химического состава зерна разных сортов белого люпина, было отмечено, что в сорте Гамма содержание сырого протеина было выше на 4,8 % по сравнению с сортом Дега. Уровень незаменимых аминокислот в зерне лизина сортов Дега и Мановицкий находился на одинаковом уровне, но незначительно уступали сорту Дельта, а по содержанию цистина и метионина сорта Дельта и Дега были на одинаковом уровне (0,5 % от сырого протеина). Наибольший уровень аргинина был отмечен в сорте Детер (3,23 % от сырого протеина), а наименьший у сортов Деснянский и Старт, которые составили 2,69 % и 2,75 % соответственно. Уровень лизина наибольшим был отмечен в сорте Дельта (1,53 %), а сортах Деснянский, Гамма и Дега был на одинаковом уровне – 1,47-1,48 % от сырого протеина. По содержанию метионина и цистина наилучшим оказался сорт Старт, где их содержание составило 0,57 % и 0,55 % соответственно. Анализ литературы по аминокислотному профилю показал, что Сорт белого люпина Дега по содержанию метионина находится на одном уровне с сортом Дельта, но незначительно уступает ему по содержанию цистина. Исходя из полученных данных, сорт Дега по уровню фенилаланина превосходит сорт Деснянский и незначительно уступает сортам Старту, Гамма и Мановицкому. Однако, по содержанию лейцина сорт Дега находился на уровне сорта Гамма и превосходил все остальные перечисленные сорта белого люпина. По валовому содержанию аминокислот сорт Дега превосходил сорта Старт, Деснянский и Мановицкий, однако он уступал сортам Дельта, Гамма и Детер на 0,27 %, 0,47 и 0,71 % соответственно.

75 3.2 Молочная продуктивность и качественные показатели молока подопытных коров Молочную продуктивность за время проведения опыта учитывали в течение всей лактации с момента отела. Учитывали такие показатели продуктивности как среднесуточный удой и валовой удой молока натуральной и 4%-ой жирности (табл. 2), средние значения качественных показателей молока коров учитывали – массовую долю молочного белка и жира, выход молочного белка и жира (табл. 3). Таблица 2 – Молочная продуктивность коров за лактацию, кг (n=7) Показатель 1 контрольная Группа 2 опытная 3 опытная 4 опытная Среднесуточный удой молока 27,3±0,48 28,4±0,48 28,9±0,77 28,1±0,58 натуральной жирности то же в % по отношению – + 4,03 + 5,86 + 2,93 контролю Среднесуточный удой 4%-ной 28,2±0,48 29,8±0,61 29,7±0,79 29,1±0,40 жирности молока то же в % по отношению – + 5,67 + 5,32 + 3,19 контролю Валовой удой натуральной 8362,9±146,45 8703,0±146,5* 8838,7±235,6 8252,0±315,7 жирности то же в % по отношению – + 4,07 + 5,69 – 1,33 контролю Валовой удой молока 4%-ой 8619,2±146,1 8891,5±160,5 9079,2±244,4 8365,9±312,1 жирности то же в % по отношению – + 3,16 + 5,34 – 2,94 контролю Примечание: * – Разность достоверна по отношению к контрольной группе при P < 0,05 Исходя из данных таблицы 2, среднесуточный удой молока натуральной жирности у коров 3 опытной группы был выше по отношению к контрольной группе. Включение в состав комбикорма зерна белого люпина способствовало увеличению среднесуточного удоя молока натуральной и 4%-ой жирности. Удой

76 молока натуральной жирности был выше контрольной во всех опытных группах, и разность составила + 4,03 %, 5,86, 2,93 % соответственно. Однако следует отметить, что введение в комбикорм максимальной доли люпина (30 %) удой по отношению к остальным группам увеличивался незначительно и составил: 2,93 %, 4,03 и 5,86 % соответственно. Разность в среднесуточном удое натуральной жирности молока 2-ой, 3-ей и 4-ой подопытных групп животных составила 1,1 кг (4,03 %), 1,6 (5,86 %), 0,8 кг (2,93 %) соответственно. При включении в состав комбикорма 3-ей опытной группы зерна белого люпина в количестве 24 %, среднесуточный удой после пересчета на молоко 4%-ой жирности был выше по отношению к контролю на 5,32 % соответственно. Однако из полученных данных по молочной продуктивности коров при введении зерна люпина в состав комбикорма 4-ой опытной группы в количестве 30 %, наблюдалось снижение по отношению к 3-ей опытной группе на 2 %, однако удой контрольной группы был ниже по отношению к третьей группе на 5, 1 %. В учетный период валовой удой молока подопытных групп животных, получавшие в составе комбикорма 18 % и 24 % зерна белого люпина был значительно выше, чем у животных-аналогов первой группы. Однако следует отметить, что введение 30 % зерна способствовало снижению валового удоя натуральной и 4%-ной жирности и составили 8252,0 кг и 8365,9 кг молока соответственно (рис. 3.7). За 10 месяцев лактации отклонение валового удоя молока натуральной жирности в подопытных группах составил по отношению к контрольной группе: + 340,1 кг (4,07 %), + 475,8 кг (5,69 %), – 110,86 кг (– 1,33 %) соответственно. Валовой удой молока натуральной жирностью жирности был достоверно выше во 2-ой опытной группе по отношению к контролю и составил 8703,0 кг молока. Следует отметить, что валовой удой 4-опытной группы был на 448 кг ниже по сравнению с животными, получавшие 18 % зерна люпина в составе комбикорма.

77 9200 9000 8800 1 контрольная группа 8600 2 опытная группа 8400 3 опытная группа 4 опытная группа 8200 8000 7800 Валовой удой молока натуральной жирности Валовой удой молока 4%-ной жирности Рис. 3.7. Валовой удой 4%-ной и натуральной жирности молока в подопытных группах коров, кг Как видно из данных рисунка 3.7 наибольший валовой удой молока 4%-жирности отмечался в 3 опытной группе, и он составил 9079,2 кг. Вторая опытная группа по валовому удою натуральной жирности и жирностью 4% молока превосходили 4 опытную и контрольную группы на 53,1 кг, 147,5 кг и 75 кг, 123,6 кг соответственно. При пересчете валового удоя натуральной жирности на молоко 4%-ой жирности наблюдалась тенденция к повышению этого показателя в опытных группах. Увеличение валового удоя по сравнению с контрольной в опытных группах составили во 2-ой – 4,07 %, в 3-ей – 5,69 %, а аналоги 4-ой опытной группы на 1,33 % меньше молока. Введение в состав комбикорма для дойных коров зерна белого люпина в опытных группах оказало незначительное влияние на содержание массовой доли молочного жира и находилось на одном уровне с контрольной группой.

78 Таблица 3 – Выход белка, жира с молоком коров за лактацию, кг Показатель 1 контрольная (n=7) Группа 2 опытная 3 опытная (n=7) (n=7) 4 опытная (n=7) Среднесуточный удой молока 27,3±0,48 28,4±0,48 28,9±0,77 28,1±0,58 натуральной жирности Массовая доля 3,36±0,02 3,41±0,03 3,52±0,01* у 3,40±0,01** белка молока, % Выход белка молока 278,7±5,56 294,8±5,62 310,2±8,56* 279,7±11,35 Массовая доля жира 4,21±0,03 4,21±0,02 4,27±0,01у 4,21±0,01 молока, % По отношению к – + 5,77 + 11,30 + 0,36 контролю, % Выход жира молока 351,6±6,04 365,6±7,02 375,7±10,45 346,3±13,33 По отношению к – + 3,98 + 6,85 – 1,51 контролю, % Примечание: * – Разность достоверна по отношению к контрольной группе при P < 0,05; ** – Разность достоверна по отношению к 3-ей опытной группе при P < 0,05; у – Разность достоверна по отношению ко 2-опытной группе при P < 0,05 Данные, полученные в период опыта, свидетельствуют о том, что у дойных коров 3-ей опытной группы, получавшей в составе комбикорма 24 % зерна белого люпина, в суточном удое молока увеличилось массовая доля молочного жира, которая составила 4,27 %, что было выше контрольной группы на 0,06 % (табл. 3). В молоке во 2-ой и 4-ой опытных групп этот показатель находился на одинаковом уровне. Количество же молочного белка в опытных группах возросло по сравнению с животными аналогами контрольной группы. Следует отметить, что в 4-ой опытной группе коров массовая доля белка в молоке бала значительно выше, чем у животных контрольной группы и незначительно уступали по данному показателю 2-ой опытной группе коров. У животных 3 опытной группы наблюдалось самое высокое содержания белка в молоке – 3,52 % , однако в контрольной оно находилось на уровне 3,36 % Необходимо отметить, что, несмотря на незначительную разность массовой доли белка в молоке наблюдали повышение выхода молочного жира во 2-ой, 3-ей опытных группах по сравнению с 1-ой группой.

79 Наибольшее повышение по выходу жира молока наблюдается у коров 3-ей опытной группы, что составило 6,86 %, а в группе животных, получавшей в составе комбикорма 18 % зерна люпина, показатель увеличился на 3,98 %. Однако у аналогов 4-ой отмечалась тенденция к снижению содержания молочного жира на 1,5 % по отношению к дойным коровам контрольной группы. Молочная продуктивность коров 3-ей опытной группы составила по уровню получения белка наибольшее значение, что на 11,3 % больше по сравнению с молоком животных из контрольной группы. Одновременно этот показатель в 2- и 4-опытной группах повысился и превосходил значения контроля на 5,77 и 0,36 % соответственно. Как видно из данных рисунка 3.8, что массовая доля молочного жира в молоке подопытных коров по месяцам лактации у животных было неодинаковым. Анализируя данные о содержании жира в молоке коров в 2-, 3- и 4-ой опытных групп с 3 месяца лактации наблюдалось увеличение. Наибольшее значение по данному показателю показатель на 4-ом месяце лактации было у животных 3-ей опытной группы, и по отношению к контролю составил 0,11 %, а у аналогов 2-ой и 4-ой групп практически были на одинаковом уровне. Установлено, что наибольшая массовая доля жира в молоке подопытных коров находилась на 9 и 10 месяцах лактации и составила 4,41 % и 4,47 %, а по отношению к контролю 0,33 % и 0,39 % соответственно. Во время учетного периода за 3 и 5 месяц лактации у коров 2-ой опытной группы отмечено наименьшее значение массовой доли жира в молоке и по отношению к контролю был ниже на 0,02 % и 0,16 % соответственно. Можно отметить, что данный показатель у животных-аналогов 2 и 4 четвертой опытной был выше контрольной группы.

4,5 4,47 4,45 4,41 4,4 4,38 4,37 4,35 4,33 4,31 4,3 4,29 4,28 4,27 4,26 4,22 4,2 4,19 4,2 4,2 4,28 3-опытная 4,23 4,27 4-опытная 1- контрольная 4,22 4,2 4,18 4,16 4,14 4,13 4,15 4,1 2-опытная 4,28 4,19 4,18 4,18 4,34 4,26 4,24 4,25 4,15 4,4 4,17 4,15 4,12 4,12 4,11 4,08 4,08 4,08 4,05 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Рис. 3.8. Массовая доля молочного жира в молоке подопытных коров по месяцам лактации 80

81 Известно, что на массовую долю и выход молочного белка влияет качество и ценность кормового протеина рациоSyntax Error: Missing or invalid 'Bounds' entry in stitching function на. У высокопродуктивного молочного скота на уровень белка в молоке влияет энергетическая обеспеченность рациона животных. Для оптимизации рубцового пищеварения в рационах дойных коров должны находиться легкопереваримые неструктурные углеводы, богатые энергией, необходимой микрофлоре для использования аммиака и синтеза микробного протеина. При нарушениях процесса пищеварения и несбалансированности кормления, то есть сниженным поступлением питательных веществ, необходимых для синтеза составных компонентов молока. Анализируя данные таблицы 3.9, полученные в результате контрольных доек, можно предположить, что в период с 1 по 8 месяц лактации животные 3-ей и 4-ой опытных групп по содержанию массовой доли белка молока превосходили своих сверстниц из контрольной группы. Однако, в период с 9 месяца и до завершения лактации животные контрольной превосходили все опытные группы коров. Наибольшее значение отмечено у животных во время 10 месяца лактации у 2-ой и 3-ей опытных групп и составил 3,62 % и 3,59 % соответственно. Исходя из вышеизложенного, выход молочного белка в течение опытного периода (табл. 3.10) наблюдается тенденция к снижению. Однако, наибольшее значение этого показателя отмечается у животных третьей опытной группы, а наименьшее на 8-10 мес. лактации у животных 4-ой опытной группы, получавшие 30 % зерна белого люпина в составе комбикорма, и по отношению к контрольной группе были ниже на 12,07 %, 16,33 % и 16,14 % соответственно.

% 3,8 3,75 3,7 3,62 3,6 3,54 3,52 3,51 3,49 3,5 3,46 3,44 3,443,44 3,4 3,36 3,35 3,25 3,23 3,21 3,58 3,5 3,47 3,44 3,41 3,38 3,33 3,29 3,2 3,56 3,33 3,32 3,3 3,55 3,54 3,49 3,42 3,41 3,38 3,53 3,59 3,57 3,31 3,28 3,28 3,21 3,19 3,1 3 1 2 3 2-опытная 4 5 4-опытная 6 3-опытная 7 8 1- контрольная 9 Рис. 3.9. Массовая доля молочного белка в молоке подопытных коров, % 82 10

кг 300 283,89 280 264,65 261,94 260 247,9 238,44 240 232,4 228,03 229,5 220 214,3 209,2 207,71 200 189,4 182,6 183,2 262,4 180 246,1 240,33 166 228,1 160 217,74 161,4 160,4 205,77 152,9 153,7 155,5 127,93 130,41 180,76 140 145,97 120 252,11 243,6 242,01 228 219,94 203,88 180,31 177,56 162,83 153 100 июнь июль август 2-опытная группа сентябрь октябрь 3-опытная группа ноябрь декабрь 4-опытная группа январь 1-контрольная группа Рис. 3.10. Выход молочного белка за лактацию, кг 83 февраль март

84 3.3 Баланс азота подопытных животных Использование животными азота находится в зависимости от качества кормовых средств, физиологического состояния и уровня продуктивности животного. Азотистый обмен представляет собой совокупность пластических процессов превращений протеина, аминокислот и других азотсодержащих веществ (амидов, пептидов, промежуточных и конечных продуктов распада протеина и аминокислот). Синтез микробного протеина происходит из продуктов (аммиак, пептиды, аминокислоты), образовавшихся в процессе жизнедеятельности микроорганизмов [1, 4, 5]. При избытке (высокой доли) расщепляемого протеина в составе рациона можно наблюдать отрицательное воздействие на переваримость питательных веществ и использование азота. Во время проведения физиологического опыта баланс азота изучали одновременно с переваримостью питательных веществ рациона у дойных коров. Поступление азота в организм крупного рогатого скота зависит от его содержания в рационе совместно с легкодоступными углеводами, минеральными веществами и витаминами и т.д. Значительная роль в балансе азота принадлежит качеству сырого протеина, степени его расщепления, содержанию аминокислот, а также способу подготовки кормов к скармливанию. Снижение одного или нескольких показателей приводит к увеличению потерь азота с калом и мочой []. Переваримый азот, всосавшийся в кровь, используется для восстановления и обновления тканей организма коров, на рост плода и молочную продуктивность, а избыток выделяются с мочой. Анализируя данные среднесуточного баланса азота, следует отметить, что он у подопытных животных был положительным (табл. 3). У дойных коров 4-ой опытной группы, в состав комбикорма, которого включали 30% зерна белого люпина, наблюдается увеличение поступления азота с рационом на 2,5 % по отношению к контрольной группе, что, вероятно, обусловлено высоким потреблением кормов рациона. Следует отметить, что поступление азота с

85 рационом и было наибольшим в 4-ой опытной группе. С калом наименьшее его выделение из организма отмечено у животных 2-ой опытной группы. Однако переваримость азота у коров 2-ой опытной группы, получавшей 24 % зерна белого люпина в составе комбикорма, была выше по отношению к контрольной группе. При этом переваримость азота в 4 группе была наименьшая по отношению к контролю и 2-, 3-ей опытным группам и составила 70,9 %. Наивысшая переваримость азота отмечена у коров 3-ей опытной группы, получавших 24 % зерна белого люпина сорта Дега в составе комбикорма. Установлено, что наибольшее выделение азота с мочой наблюдали у животных во 2-ой и 4-ой группах. Выделение азота с мочой в 3-ей опытной группе к контрольной группе выше, превышение составляет менее 3 %. Таблица 3 – Среднесуточный баланс азота у дойных коров (n=3), г Группа Показатель 1-контрольная 2-опытная 3-опытная 4-опытная Принято азота с рационом 460,1 ±4,57 460,4±2,05 467,5±4,11 471,4±3,56* Выделено азота с калом 129,3±8,78 120,9±2,70 123,7±3,90 136,8±7,46 Переварено азота 330,2±9,49 339,5±4,10 343,7±3,41 334,1±10,99 Коэффициенты переваримости, % 71,8±1,90 73,7±0,65 73,5±0,71 70,9±1,79 194,8±17,65 205,2±6,52 199,4±1,74 206,9±6,56 25,2±2,08 25,5±1,83 27,4±1,40 24,5±0,90 Выделено азота с мочой Среднесуточный удой молока, кг Выделено азота: всего 130,7±8,35 134,1±2,97 144,3±2,19 127,3±4,50 с молоком 129,1±10,59 130,3±3,18 142,6±2,37* 124,7±5,76 на прирост + 1,6±4,56 + 3,8±1,01 + 1,7±0,20 + 2,6±1,93 Выделено азота с молоком: % от принятого 28,1±2,44 28,3±0,81 30,5±0,31 26,5±1,04 % от переваренного 39,0±4,33 38,4±1,22 41,5±0,38 37,3±0,80

86 Продолжение таблицы 3 Усвоено азота всего 134,1±8,35 134,2±2,97 144,3±2,19 127,2±4,50 % от принятого 29,2±1,86 29,2±0,78 30,9±0,29 27,0±0,75 % от переваренного 40,5±3,65 39,5±1,26 42,0±0,32 38,1±0,2 Примечание: * – Разность достоверна по отношению к 2-ой группе при P < 0,05 Данные контрольных доек свидетельствуют о том, что наибольшая молочная продуктивность коров, во время проведения физиологического опыта, наблюдалась в 3-ей опытной группе, которая получала 24 % зерна белого люпина в составе комбикорма и составила 27,4 кг молока, что по отношению контрольной группе было выше на 8,7 %. Животные 1, 2, 4 подопытных групп незначительно отличались между собой по молочной продуктивности. Однако следует отметить, что содержание 30 % зерна люпина в составе комбикорма, способствовало снижению молочной продуктивности коров на 2,8 %. Коровы 3-опытной группы по среднесуточному удою молока натуральной жирности превосходили животных, получавших 30 % зерна люпина в составе комбикорма, на 11,8 %. У аналогов из 2, 3 опытных групп наблюдали тенденцию к увеличению усвоения азота в организме дойных коров (рис. .3.11). 400 350 330,2 339,5 343,7 334,1 300 250 200 134,1 150 134,2 144,3 127,2 100 Переваренно азота 1-контрпольная группа 2-опытная группа Усвоено азота 3-опытная группа 4-опытная группа Рис. 3.11. Поступление азота с рационом и его усвоение животными аналогами опытных групп, г

87 Наибольшее количество азота, пошедшее на прирост живой массы коров, было отмечено во 2-ой опытной группе, получавшей 18 % зерна белого люпина в составе комбикорма. Возможно, что наибольшее использование азота на прирост массы коров обусловлено более интенсивным ростом плода. В связи с тем, что наибольшее количество азота, выделенного в виде составных компонентов молока, отмечено у животных получавших 24 % зерна люпина в составе комбикорма, то и значения выделенного азота с молоком, как от принятого, так и от переваренного были наибольшими у коров 3-ей группы и составили 30,5 и 41,5 % соответственно. Однако наименьшие значения по данным показателям отмечались у аналогов 4-ой опытной группы, получавшие 30 % в структуре комбикорма зерна люпина сорта Дега. Как видно из данных рисунка 3.11, что наибольшее количество переваренного азота, как отмечалось ранее (339,5 г) у животных, получавших в составе комбикорма 18 % зерна люпина, однако наибольшим значение усвоенного было у животных третьей опытной группы, получавшей 24 % зерна люпина, и составило 144, 3 г, что на 7,6 % выше контрольной группы. Процент усвоенного от принятого азота в 1-ой контрольной и 2-ой опытной группах находился на одном уровне (29,2 %), а у коров 4-ей группы, он был значительно ниже, и составил 27 %, однако по отношению к животным контрольной группы был ниже на 2,2 %.

89 ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ С целью увеличения молочной продуктивности и повышения использования азота рациона рекомендуется вводить в комбикорм для коров зерно белого люпина сорта «Дега» в количестве 24 %.

90 БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК 1. Азимов, Г.И. Анатомия и физиология сельскохозяйственных животных / Г.И. Азимов, В.И. Бойко, А.И. Елисеев – М.: Колос, 1978. – 415 с. 2. Аксенова, В.М Физиология систем пищеварения / В.М. Аксенова, А.П. Осипов. – Пермь: Изд-во ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА, 2013. – 104 с. 3. Александров, Ю.А. Динамика биохимических показателей крови коров с разным уровнем молочной продуктивности / Ю.А. Александров // Вестник марийского государственного университета. Серия: сельскохозяйственные науки, экономические науки. – 2015. – № 3 – С. 5 – 9. 4. Алиев, А.А. Обмен веществ у жвачных животных / А.А. Алиев. – М.: НИЦ «Инженер», 1997. – 419 с. 5. Аминокислотное питание животных и проблема белковых ресурсов. – Краснодар, Кубанский ГАУ, 2005. – 410 с. 6. Артюхов, А. Люпин – ценный источник белка в комбикормах / А. Артюхов, Н. Гапонов // Комбикорма. – 2010. – № 3. – С. 65 – 66. 7. Артюхов, А. Люпин – эффективный источник белка / А. Артюхов // Животноводство России. Спецвыпуск по молочному и мясному скотоводству. – 2014. –№ 1 – С. 55 – 57. 8. Артюхов, А. Люпин: способы обработки и результаты скармливания / А. Артюхов, А. Сорокин // Комбикорма. – 2015. – № 9. – С. 81 – 82. 9. Артюхов, А.И. 20 лет творческого пути Всероссийского научно-исследовательского института люпина / А.И. Арюхов // 20 лет Всероссийскому научно-исследовательскому институту люпина. Сборник научных трудов Всероссийского ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город». – 2007. – С. 3 – 8. 10.Артюхов, А.И. Количественное определение алкалоидов в люпине методические рекомендации / А.И. Артюхов, Т.В. Яговенко [и др.]. Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город», 2012. – 16 с. 11.Артюхов, А.И. Люпин в адаптивной интенсификации растениеводства / А.И. Артюхов // 20 лет Всероссийскому научно-исследовательскому институту

91 люпина. Сборник научных трудов Всероссийского ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город». – 2007. – С. 10 – 15. 12.Артюхов, А.И. Рекомендации по практическому применению кормов из узколистного люпина в рационах сельскохозяйственных животных / А.И. Артюхов, Е.П. Ващекин, Е.А. Ефименко [и др.]. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город», 2009. – 80 с. 13.Асташева, Н.П. Основы производства экологически безопасной сельскохозяйственной продукции / Н.П. Асташева. – М.: ФГОУ ВПО МГАУ, 2005. – 75 с. 14.Афанасьев В.А. Руководство по технологии комбикормовой продукции с основами кормления животных / В.А. Афанасьев, А.И. Орлов, Л.Я. Бойко [и др.]. Воронеж: ОАО «Всероссийский научно-исследовательский институт», 2007. – 389 с. 15.Афанасьева, А.И. морфобиохимические Влияние структуры показатели крови рациона и кормления уровень на молочной продуктивности коров красной степной породы / А.И. Афанасьева, В.Г. Огуй, С.А. Галдак // Вестник алтайского государственного аграрного университета. – 2007. – № 9 (35). – С. 36 – 40. 16.Батоев, Ц.Ж. Эволюционные аспекты питания и физиологии пищеварения / Ц.Ж. Батоев, С.Е. Санжиева. – Улан-Удэ: Изд-во Бурятского госуниверситета, 2010. – 106 с. 17.Бобков, А.А. Физиологические основы использования в кормлении коров зерна малоалкалоидного люпина: автореф. дис. ... канд. биол. наук : 03.00.13 / Бобков Андрей Алексеевич. – Нижний Новгород, 2009. – 23 с. 18.Букаров, Н.Г. Оценка состояния обмена веществ дойных коров по составу молока / Н.Г. Букаров, Е.Е. Кисель, А.Н. Белякова // Молочное и мясное скотоводство. – 2015. – № 4. – С 16 – 18. 19.Буряков, Н. Белый люпин в комбикормах для коров / Н. Буряков, Е. Прохоров // Комбикорма. – 2016. – № 10. – С. 71 – 74.

92 20.Буряков, Н.П. Безалкалоидный люпин сорта Дега в кормлении коров / Н.П. Буряков, Е.О. Прохоров // Кормопроизводство. – 2017. – № 1. – С. 40 – 44. 21.Буряков, Н.П. Влияние нитратов на микрофлору рубца и продуктивность животных / Н.П. Буряков // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. – 2012. – № 3. – С. 42 – 46. 22.Буряков, Н.П. Использование безалкалоидного люпина в кормлении лактирующих коров / Н.П. Буряков, Е.О. Прохоров // Молочная промышленность. – 2017. – № 1. – С. 38 – 41. 23. Буряков, Н.П. Кормление высокопродуктивного молочного скота: монография / Н.П. Буряков. – М.: Изд-во «Проспект», 2009. – 416 с. 24.Буряков, Н.П. Нитраты в кормлении крупного рогатого скота: монография / Н.П. Буряков. – М.: Изд-во РГАУ – МСХА, 2012. – 370 с. 25.Буряков, Н.П. Полисахариды в кормлении молочного скота / Н.П. Буряков, А.В. Косолапов, М.А Маликов, Т.В. Данькова // Молочная промышленность. – 2016. – № 11. – С. 20 – 23. 26.Буряков, Н.П. Рациональное кормление молочного скота / Н.П. Буряков, М.А. Бурякова. – М.: Изд-во РГАУ – МСХА, 2015. – 314 с. 27.Васильевский, Н.В. Изменение переваримости отдельных групп питательных веществ под воздействием перехода с раздельной раздачи кормов на кормосмеси / Н.В. Васильевский, В.В. Цюпко, Т.А. Елецская [и др.] // Актуальные проблемы биологии в животноводстве: Материалы пятой Международной конференции, посвященной 50-летию ВНИИФБиП (г. Боровск,14-16 сентября 2006 г.). Боровск, ВНИИФБиП, 2010, С. 20 – 21. 28.Ваттио, М.А. Основные аспекты производства молока / М.А. Ваттио, В.Т. Ховард [и др.], Медисон: U.S. Livestock Genetics Export, 2003. – 139 с. 29.Веденикова, Г.А. Кормовые достоинства и энергетическая оценка сортов люпина узколистного / Г.А. Веденикова, Кормопроизводство. – 2003. – № 6. – С. 23-27 В.В. Коломейченко //

93 30.Вертипрахов, В.Г. Физиологические основы использования белковых балансирующих добавок в рационе животных / В.Г. Вертипрахов. – Чита: Забайкал. гос. гум.-пед. ун-т., 2012. – 90 с. 31.Волгин, В.И. Оптимизация питания высокопродуктивных молочных коров / В.И. Волгин, Л.В. Романенко, З.Л. Федорова // Достижения науки и техники АПК. – 2010. – № 9. – С. 38 – 40. 32.Вронкова, Ф. Особый аспект кормления / Ф. Вронкова, З. Зверкова, О. Мокрушина // Животноводство России. – 2015. – № 1. – С. 57 – 58. 33.Гатаулина, Г.Г. Белый люпин – биологические и селекционные аспекты / Г.Г. Гатаулина // Люпин его возможности и перспективы: сборник материалов Международной научно-практической конференции «Культура люпина – его возможности и перспективы, посвященный 25-летию со дня основания ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город», 2012. – С. 63 – 71. 34.Гатаулина, Г.Г. Белый люпин и его использование в кормлении птицы / Г.Г. Гатаулина, А.С. Цигуткин, А.Л. Штеле [и др.]. – Тамбов: Изд-во ТОГБУ «РИКЦ АПК», 2011. – 32 с. 35.Гатаулина, Г.Г. Изучение биологии, создание новых форм и разработка приемов возделывания видов и сортов люпина в Тимирязевской академии / Г.Г. Гатаулина // 20 лет Всероссийскому научно-исследовательскому институту люпина. Сборник научных трудов Всероссийского ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город». – 2007. – С. 69 – 88. 36.Гатаулина, Г.Г. Характеристика исходного материала и новых сортов белого люпина / Г.Г. Гатаулина // 20 лет Всероссийскому научно-исследовательскому институту люпина. Сборник научных трудов Всероссийского ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город». – 2007. – С. 88 – 104. 37.Головин, А.В. Фундаментальные основы питания молочного скота. Молочное скотоводство России / Составители: Н.И. Стрекозов, Х.А.

94 Амерханов, Н.Г. Первов [и др.]. – 2-е изд. перераб. и доп. – М., ВИЖ, 2013. – 616 с. 38.Головин, А.В. Потребности молочного скота в энергии и питательных веществах: справочное пособие / А.В. Головин, А.С. Аникин [и др.]. – Дубровицы: ВИЖ им. Эрнста. – 2015. – 138 с. 39.Голушко, В. Люпин – альтернатива сое / В. Голушко, А. Голушко // Животноводство России. – 2016. – № 1. – С. 49 – 50. 40.Гулидова, В.А. Люпин. Современные технологии возделывания; практическое руководство / В.А. Гулидова, С.М. Князева, Г.Я. Сергеев [и др.]. – Воронеж, 2015. – 46 с. 41.Гурин, В.К. Переваримость питательных веществ у бычков при разных уровнях селена в рационах / В.К. Гурин, А.Н. Кот, Е.П. Симоненко [и др.] // Актуальные проблемы биологии в животноводстве: Материалы пятой Международной конференции, посвященной 50-летию ВНИИФБиП (г. Боровск, 14-16 сентября 2006 г.). Боровск, ВНИИФБиП, 2010. – С. 32 – 33. 42.Гуринович, Г.В. Белковые препараты и пищевые добавки в мясной промышленности / Г.В. Гуринович, Н.Н. Потипаева, В.М. Поздняковский.–М.; Кемерово: Издательское объединение «Российские университеты»: «Кузбассвузиздат: АСТШ», 2005. – 362 с. 43.Детков, Д. Экспандирование полножирной сои. Доступный растительный белок / Д. Детков // Комбикорма. – 2015. – № 7-8. – С. 34 – 36. 44.Жученко, А.А. Зернофураж России / А.А. Жученко, Е.Г. Лысеко, П.А. Чекмарев [и др.]; под ред. В.М. Косолапова. – М.-Киров: ОАО «Дом печати – ВЯТКА», 2009. – 384 с. 45.Забодалова, Л.А. Исследование процесса получения концентрата белков люпина с использованием мультиэнзимных композиций / Л.А. Забодалов, М.Л. Доморощенкова, Т.Ф. Демьяненко, Л.М. Кузнецова // Люпин его возможности и перспективы: сборник материалов Международной научно-практической конференции «Культура люпина – его возможности и

95 перспективы, посвященный 25-летию со дня основания ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город», 2012. – С. 266 – 271. 46.Зайцев, С.Ю. Биохимия животных / С.Ю. Зайцев, Ю.В. Конопатов. – СПб.: Изд-во «Лань», 2004. – 382 с. 47.Зарипова, Л.П. Научные основы рационального использования протеина в животноводстве / Л.П. Зарипова. – Казань: «Фэн», 2002. – 240 с. 48.Ижболдина, С.Н. Обмен веществ и энергии крупного рогатого скота: монография / С.Н. Ижболдина. – 2-е изд., перераб. и доп. – Ижевск: ФГБОУ ВПО Ижевская ГСХА, 2012. – 164 с. 49.Ильина, Л. Изучение бактериального сообщества рубца коров с помощью T – RFLP – анализа / Л. Ильина, А. Балакирева, Е. Йылдырым, Г. Лаптев // Молочное и мясное скотоводство. – 2011. – № 2. – С. 24 – 27. 50.Использование животных: пробиотика Целобактерин-Т методические рекомендации. в кормлении жвачных – Дубровицы: ГНУ ВИЖ Россельхозакадемии, 2011. – 52 с. 51.Кадыров, Ф.Г. Рационы с включением кормов из узколистного люпина для крупного рогатого скота / Ф.Г. Кадыров, Н.В.Кадырова // 20 лет Всероссийскому научно-исследовательскому институту люпина. Сборник научных трудов Всероссийского ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город». – 2007. – С. 246 – 257. 52.Калашников, В.В. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных. Справочное пособие / В.В. Калашников. – Дубровицы: ВИЖ им. Л.К. Эрнста, 2003. – 456 с. 53.Карамаев, С.В. Адаптационные особенности молочных пород скота: монография / С.В. Карамаев, Г.М. Топурия, Л.Н. Бакаева [и др.]; под общ. ред. профессора С.В. Карамаева. – Самара: РИЦ СГСХА, 2013. – 195 с. 54.Китаева, Е.А. Особенности рубцового пищеварения у коров голштинской породы в процессе адаптации / Е.А. Китаева // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. – 2014. – № 1. – С. 85 – 89.

96 55.Кокаева, М.Г. Влияние биологически активных препаратов на гематологические показатели коров / М.Г. Кокаева, Д.О. Гурциева // Сборник научных трудов Северо-Кавказского научно-исследовательского института животноводства. – 2016. –Т. 2. – № 5. – С. 80-85. 56.Кондрахин, И.П. Методы ветеринарной клинической диагностики: справочник / И.П. Кондрахина, А.В. Архипов, В.И. Левченко [и др.]. М.: КолосС, 2004. – 520 с. 57.Кононов, А.С. Люпин: технология Возделывания в России. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город», 2003. – 212 с. 58.Косолапов, В.М. Нетрадиционные зерновые и зернобобовые культуры и их использование в кормлении сельскохозяйственных животных и птицы / В.М. Косолапов, А.И. Фицев, А.П. Гаганов [и др.]. – М.: ФГУ РЦСК, 2009. – 30 с. 59. Косолапов, В.М. Организация полноценного кормления высокопродуктивных коров: рекомендации / В.М. Косолапов, Н.Г. Григорьев [и др.]. – М.: ФГУ РЦСК, 2008. – 59 с. 60.Кот, А.Н. Изменение показателей рубцового пищеварения бычков при различных уровнях расщепляемости протеина / А.Н. Кот, А.М. Глинкова, В.О. Лемешевский, Е.П. Симоненко, А.Н. Шевцов // Ученые Записки ВГАВМ, 2015. – Т. 45, – вып. 1, – ч. 1. – С. 62 – 66. 61.Кулинцев, В.В. Незаменимые аминокислоты в кормлении молодняка сельскохозяйственных животных / В.В. Кулинцев. М.: Изд-во РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева, 2011. – 169 с. 62.Купцов, Н.С. Люпин (генетика, селекция, гетерогенные посевы) / Н.С. Купцов, И.П. Такунов. – Брянск, Клинцы: Изд-во ГУП «Клинцовская городская типография». – 2006. – 576 с. 63.Курепин, А.А. Переваримость питательных веществ кормов в период раздоя при различном уровне сырого протеина в рационах коров / А.А. Курепин, А.И. Саханчук, С.А. Кирикович // Актуальные проблемы биологии в животноводстве: Материалы пятой Международной конференции,

97 посвященной 50-летию ВНИИФБиП (г. Боровск, 14-16 сентября 2006 г.). – Боровск: ВНИИФБиП, 2010, – С. 54 – 55. 64.Лаптев, А.В. Люпин на полях Кузбасса / А.В. Лаптев // Кормопроизводство. – № 4. – 2007. – С. 16. 65.Лаптев, Г.Ю. Нормы содержания микрофлоры в рубце крупного рогатого скота. – СПб.: БИОТРОФ, 2016. – 46 с. 66.Летунович, Е.В. Использование «защищённого» различными способами протеина корма при кормлении коров / Е.В. Летунович, Н.А. Яцко // Зоотехническая наука Беларуси. – 2012. – Т. 47. – № 2. – С. 148-163. 67.Летунович, Е.В. Физико-химические свойства протеина корма и молочная продуктивность коров / Е.В. Летунович, Н.А. Яцко // Зоотехническая наука Беларуси. 2012. Т. 47. №2. – С. 163 – 172. 68.Ли, В. Белковое питание высокоудойных коров / В. Ли // Животноводство России. – 2013. – № 4. – С. 30 – 32. 69.Лобков, В.Ю. Технология выращивания крупного рогатого скота : монография / В.Ю. Лобков, А.И. Фролов. – Ярославль: Издательство ФГБОУ ВО Ярославская ГСХА. – 182 с. 70.Мазуров, В.Н. Эффективность использования люпина в кормлении коров / В.Н. Мазуров, З.С. Санова, Н.Е. Джумаева // Люпин его возможности и перспективы: сборник материалов Международной научно-практической конференции «Культура люпина – его возможности и перспективы, посвященный 25-летию со дня основания ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город», 2012. – С. 262 – 266. 71.Максимюк, Н.Н. Физиология кормления животных / Н.Н. Максимюк, В.Г. Скопичев. – СПб.-М.-Краснодар: Лань, 2004. – 186 с. 72.Многофункциональное адаптивное кормопроизводство: Средообразующие функции кормовых растений и экосистем / Российская академия сельскохозяйственных наук, Всероссийский научно-исследовательский институт кормов им. В.Р. Вильямса. Москва, 2014. Том Выпуск 1 (49). 128 с.

98 73.Организация научно-обоснованного кормления высокопродуктивного молочного скота. Практические рекомендации. Боровск, 2008. – 105 с. 74.Перов, А. Переработка семян люпина / А. Перов // Комбикорма. – 2008. – № 1. – C. 50 – 50. 75.Пивняк, И.Г. Микробиология пищеварения жвачных / И.Г. Пивняк, Б.В. Тараканов. – М.: Колос, 1982. – 247 с. 76.Погосян, Д.Г. Качество протеина в кормах для жвачных животных: монография / Д.Г. Погосян. – Пенза: РИО ПГСХА, 2014.– 133 с. 77.Погосян, Д.Г. Распадаемость протеина в рубце бычков при физических способах обработки кормов / Д.Г. Погосян, В.В. Чудайкин // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. – 2011. – № 6 (80). – С. 64 – 67. 78.Подобедов, А.В. Производство композиционного белково-энергетического концентрата «ТЕРМОБОБ» на основе отечественного люпина и сои. Создание комплекса региональных бобовоперерабатывающих предприятий / А.В. Подобедов // Люпин его возможности и перспективы: сборник материалов Международной научно-практической конференции «Культура люпина – его возможности и перспективы, посвященный 25-летию со дня основания ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город», 2012. – С. 256 – 261. 79.Покровский, Б. Лечение и профилактика болезней печени / Б. Покровский. – М.: АСТ, 2007. – 62 с. 80.Пономаренко, Ю. А. Безопасность кормов, кормовых добавок и продуктов питания: монография / Ю. А. Пономаренко, В. И. Фисинин, И. А. Егоров; Министерство сельского хозяйства и продовольствия Республики Беларусь, Российская академия сельскохозяйственных наук. – Минск: Экоперспектива, 2012. – 864 с. 81.Пономаренко, Ю.А. Корма, биологически активные вещества, безопасность: монография / Ю. А. Пономаренко, В. И. Фисинин, И. А. Егоров; Российская

99 академия сельскохозяйственных наук, Национальная академия наук Беларуси. – Минск; Москва; Белстан, 2013. – 872 с. 82. Пономаренко, Ю.А. Нетрадиционные корма и биологически активные вещества в рационах цыплят-бройлеров и кур-несушек // Пономаренко Юрий Александрович. – дисс. ... канд. биол. наук. Сергиев-Посад, 2016. – 437 с. 83. Пономаренко, Ю.А. Питательные и антипитательные вещества в кормах: монография / Ю.А. Пономаренко. – Минск: Экоперспектива, 2007. – 960 с. 84.Рекомендации по детализированному кормлению молочного скота: справочное пособие / ВИЖ им. Л.К. Эрнста: А.Г. Головин, А.С. Аникин [и др.]. – Дубровицы: ВИЖ им. Л.К. Эрнста. – 2016. – 242 с. 85.Роженцов, А.Л. Биохимия и микробиология пищеварения животных / А.Л. Роженцов. – Йошкар-Ола: Мар. Гос. ун-т; 2011. –340 с. 86.Романенко, Л.В. Состав и питательность кормосмесей для коров с высокой продуктивностью / Л.В. Романенко, В.И. Волгин, З.Л. Федорова, Е.А. Корочкина // Генетика и разведение животных. – 2015. – № 3. – С. 30 – 38. 87.Романенко, Л.В. Углеводное питание коров с удоем 9000 кг молока за лактацию и выше / Л.В. Романенко, В.И. Волгин, З.Л. Федорова // Генетика и разведение животных. – 2014. – № 4. – С. 40 – 45. 88.Романенко, Л.В. Уровень обменных процессов в организме коров с продуктивностью свыше 10000 кг молока / Л.В. Романенко, Ы.В. Пристач, З.Л. Федорова // Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. – 2016. – № 42. – С. 125 – 134. 89.Романов, В.Н.. Современные подходы к обеспечению полноценного питания высокопродуктивных коров и сохранению их здоровья // В.Н. Романов, Р.В. Некрасов, Г.Ю. Лаптев [и др.] // В сборнике материалов международной научно-практической конференции. Сер. "Научные труды ВИЖа «Проблемы увеличения производства продуктов животноводства и пути их решения». – 2008. – С. 294-296. 90.Романов, В.Н. Оптимизация пищеварительных и обменных процессов в организме крупного рогатого скота с применением биологически активных

100 веществ / В.Н. Романов, С.В. Воробьева, В.А. Девяткин // Достижения науки и техники АПК. – 2013. – № 3. – С. 23 – 26. 91.Романов, В.Н. Оптимизация пищеварительных, обменных процессов и функций печени у молочного скота / В.Н. Романов, Н.В. Боголюбова, М.Г. Чабаев, [и др.]. – Дубровицы: ВИЖ им. Л.К. Эрнста, 2015. – 152 с. 92.Романов, В.Н. Повышение продуктивности крупного рогатого скота при использовании в рационах многокомпонентной кормовой добавки / В.Н. Романов, Н.В. Боголюбова, В.А. Девяткин, С.В. Воробьева, Г.Ю. Лаптев // Молочное и мясное скотоводство. – 2015. – № 3. – С. 13 – 15. 93. Рябиков, А.Я. Октябрев Н.М. Соевые бобы в рационе жвачных / А.Я. Рябиков, Н.М. Октябрев // Омский научный вестник. – 2012. – № 2 (114). – С. 145 – 147. 94. Рядчиков, В.Г. Питание высокопродуктивных коров. Рекомендации – методическое пособие / В.Г. Рядчиков, Н.И. Подворок, А.С. Потехин. Краснодар: Изд-во КубГАУ, 2002. – 84 с. 95. Рядчиков, В.Г. Экспрессия генов эукариот при аминокислотной имбалансе: монография / В.Г. Рядчиков, В.К. Плотников. – Краснодар: КубГАУ, 2014. – 375 с. 96. Сизова, Ю.В. Биологическая эффективность использования белковых добавок в кормлении молочных коров // Вестник Бурятской государственной сельскохозяйственной академии им. В.Р. Филиппова. – 2015. – № 2 (39). – С. 42 – 47. 97. Сизова, Ю.В. Влияние белковой добавки на молочную продуктивность коров / Ю.В. Сизова // Вестник НГИЭИ. – 2013. – № 12 (31). – С. 83 – 87. 98. Сизова, Ю.В. Лимитирующие аминокислоты в кормлении молочных коров / .В. Сизова // Вестник биотехнологии. – 2016. – № 1. – С. 4-12. 99. Сизова, Ю.В. Метаболизм азота и аминокислот у коров и их молочная продуктивность при изменении аминокислотного состава обменного протеина в рационе // Вестник НГИЭИ. – 2011. – Т. 2. – № 4 (5). – С. 32 – 39.

101 100. Сизова, Ю.В. Молочная продуктивность и азотистый обмен у коров в первую фазу лактации при разном уровне нейтрально-детергентной клетчатки в рационе // Вестник НГИЭИ. – 2011. – Т. 2. –№ 2 (3). – С. 193 – 210. 101. Сорокин, А. Зерно люпина белого заменит сою / А. Сорокин // Животноводство России. – 2016. – № 9. – С. 45 – 46. 102. Такунов, И.П. Безгербицидная ресурсоэнергосберегающая технология возделывания люпина и злаковых культур в смешенных посевах:научно-практические рекомендации / И.П. Такунов, Т.Н. Слесарева. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город», 2007. – 60 с. 103. Такунов, И.П. Люпин – настоящее и будущее / И.П. Такунов // 20 лет Всероссийскому научно-исследовательскому институту люпина. Сборник научных трудов Всероссийского ВНИИ люпина. – Брянск: ЗАО «Издательство «Читай-город». – 2007. – С. 15 – 41. 104. Тараканов Б.В. Механизмы действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных / Б.В. Тараканов // Ветеринария. – 2001. – № 1. – С. 47 – 54. 105. Тараканов, Б.В. Методы исследования микрофлоры пищеварительного тракта сельскохозяйственных животных и птицы / Б.В. Тараканов. – М.: Научный мир, 2006. – 188 с. 106. Таранухо, Г.И. состояние и перспективы люпиносеяния в Беларуси// Состояние и перспективы развития люпиносеяния в XXI веке. Горки, 2002. – 110 с. 107. Темираев, Р.Б. Способ оптимизации рубцового и промежуточного обмена у лактирующих коров при денитрификации / Р.Б. Темираев, М.Г. Кокаева // Известия Горского государственного аграрного университета. – 2015. – Т. 52.– № 1. – С. 72-77. 108. Филиппова, О.Б. Натуральное зерно люпина в рационах коров / О.Б. Филиппова, Н.И. Маслова // Зоотехния. – 2016. – № 12. – С. 11 – 15.

102 109. Фомичев, Ю.П. Обмен веществ и состав молока у молочных коров при включении в рацион высокоэнергетического корма в транзитный период / Ю.П. Фомичев, Н.И. Стрекозов, И.В. Гусев, А.М. Гаджиев, Н.Н. Сулима, И.Ю. Ермаков // Молочное и мясное скотоводство. – 2015. – № 4. – С 27 – 31. 110. Хамидулин, И.Р. Микробиоценоз рубца крупного рогатого скота в разные периоды содержания / И.Р. Хамидулин, А.К. Галиуллин, Б.Ф. Тамимдаров, Ш.К. Шакиров // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – 2015. – № 224. – С. 242-244. 111. Харитонов, Е.Л. Физиология и биохимия питания молочного скота / Е.Л. Харитонов. – Боровск: Изд-во «Оптима Пресс», 2011. – 372 с. 112. Хрулев, А.А., Белок из люпина: технологии, применение, перспективы / А.А. Хрулев, Н.А. Бесчетникова // Пищевая промышленность. – 2015. – № 12. – С. 63 – 65. 113. Цыгуткин, А.С. Аминокислотный состав зерна белого люпина сорта Гамма и Дега / А.С. Цыгуткин, А.Л. Штеле, Е.Н. Адрианова, Н.В. Медведева // Достижение науки и техники АПК. – 2011. – № 9. – С. 41 – 43. 114. Чернышев, Н.И. Антипитательные факторы кормов / Н.И. Чернышев, И.Г. Панин, Н.И. Шумский, В.В. Гречишников. – Воронеж, 2013. – 187 с. 115. Чернышев, Н.И. Кормовые факторы и обмен веществ / Н.И. Чернышев, И.Г. Панин, Н.И. Шумский. – Воронеж: Изд-во ООО «РИА « ПРОспект», 2007. – 188 с. 116. Claudia Barchiesi-Ferrari, René Anrique Ruminal degradability of dry matter and crude protein from moist dehulled lipin and extruded rapeseed meal // Chilean Journal of agricultural research. – 2011. – № 71 (3). – pp. 430 – 436. 117. D. Liu, P. Wu, P. Jiao Researching rumen degradatio behaviour of protein by FTIR specroscopy // Czech J. Anim. Sci., 60, 2015 (1): 25 – 32. 118. Duranti M., Consonni A., Magni Ch., Fessa F. and Scafoni A. 2008 / The major proteins of lupin seeds: characterization and molecular properties for use as

103 functional and nutraceutical ingredients. Trends if Food Science & Technology 19 : 624 – 633. 119. Engedaw L.Y., 2012. Potential of Lupins (Lupinus spp. L.) fo Human Use and Livestock Feed in Ethiopia. 1st. End., Auflage, Koster, Berline, Germany, ISBN-13: 9783895747892, P. 198. 120. Lyle M. Rode Maintaining a healthy rumen review // Advances in Dairy Technology (2000), Vol. 12. pp. 101–108. 121. Lypsylehmän ruokinta Painos: 1. painos/ Juho Kyntäjä; Sanna Nokka Taina Harmoinen (toim.) – ProAgria Keskusten Liitto. 2010. P. 140 122. Masussi, F. Effect of Lupinus albus as protein supplement on yield, constituents, clotting properties and fatty acid composition in ewes , milk / F. Masucci, A. Di Francia, R. Romano [et al.] // Small Ruminant Research 65 (2006). pp. 251 – 259. 123. National Ressearch Council. .2001. Nutrientrequirements of dairy cattle. 7th edn. National Academy Press, Washington, USA 124. Overton T.R. Nutritional management of transition dairy cows. Strategies to optimize metabolic health / T.R. Overton, M.R. Waldron // J. Dairy sci. – 2004. – № 87 (E. Suppl.): Р. 103 – 119. 125. P. McDonald Animal Nutrition Seventh Edition / P. McDonald, R.A. Edwards, J.F.D. Greenhalgh, C.A. Morgan, L.A. Sinclair, R.G. Wilkinson. USA: Washington, 2001. – 408 с. 126. Ruminant physiology: digestion, metabolism, growth and reproduction / edited by P. Cronje; assoc. editors, E.A. Boomker, P.H. Henning, W. Schultheiss, J.G. van der Walt. CAB International. – 2000. – P. 474 127. S. Seo, H.J. Kim, S.Y. Lee, J.K. Ha Ruminal protein Degradation characteristics of cell mass from lysine production // Asian-Aust. J. Anim. Sci. Vol. 21, № 3 : 364 – 370, March 2008. 128. S. Terramoccia, S. Bartocci, A. Amici, F. Martillotti Protein and protein-free dry matter rumen degradability in buffalo, cattle and sheep fed diets with different forage to concentrate ratios // Livestock Production Science 65 (2000) 185 – 195.

104 129. Sadecghi, A., and Shawrang, P. 2006. Effects of microwave irradiation on ruminal degradability and in vitro digestibility of canola meal. Animals Feed Science and Technology 127 : 45 – 54. 130. Solomon W.K., 2007. Hydration kinetics of lupin (Lupinus albus) seeds // Journal Food Process Eng., 30 : 119 – 130. 131. Yilkal Tadele. White Lupin (Lupinus albus) grain, a potential sourse of protein for ruminants: A review // Research Journal of Agriculture and Environmental Management. Vol. 4 (4), pp. 180 – 188, April, 2015. 132. Zerichun Nigussie. Contribution of Lupin (Lupinus abus L.) for Food Security in North-Western Ethiopia: A Review // Assian Journal of Plant Science, 2012. pp. 1 – 6.

105 ПРИЛОЖЕНИЯ Приложение А Нормы введения люпиновой дерти в рационы крупного рогатого скота (по данным исследований ГНУ ВНИИ люпина, 2009) % от количества концентратов в рационе % от энергетической питательности рациона Дойные коровы 25-50* 9,5-16,5* Нетели 20-25 до 7,0 Молодняк на выращивании и откорме 25-35 7,5-13,5 Телята до 6-мес. возраста 25-45 9,0-17,5 Группа *- при необходимости количество люпиновой дерти в рационе может быть увеличено до 35% от его энергетической питательности и даже быть единственным концентрированным кормом, при условии обеспеченности животных всеми необходимыми питательными веществами за счет дополнительных кормов. Приложение Б Рис. 1. Комбикорм-концентрат для подопытных животных во время физиологического опыта

106 Приложение В Рис. 2. Внешний вид зерна и растения белого люпина

107 Приложение Г кг МДж 0,43 4,2 9,5 95 3,15 27,4 93,5 71,1 70,1 23,4 3,65 3,65 2,2 5,85 0,8 12,45 108,0 140,3 131,9 8,5 8,5 17,0 0,75 1,3 7,65 1,55 1,55 8,0 0,9 86 4,0 1,0 0,1 1,5 0,15 0,005 25,5 950 513 760 190 26,6 15,2 11,4 26,6 7,6 380 2850 676,4 5434 304 228 532 10,64 31,54 53,2 15,2 19 110,2 15,2 2318 38 228 0,76 152 2,28 0,84 760 12,75 380 118,5 0,18 68,5 1,9 1748 1,15 182 г г г г г г г г г г г г г г г г г г г г г г г мг мг мг мг мг мг мг мг тыс. МЕ МЕ мг Норма ввода 3 43,6 24,9 19,2 14,0 Рацион 0,5 38 7 0,4 10 Дробина Сенаж Сухое вещество Обменная энергия Протеин: сырой переваримый расщепляемый нерасщепляемый Лизин Метионин Цистин Метионин + цистин Триптофан Сырой жир Сырая клетчатка КДК НДК Крахмал Сахара ЛПУ Натрий Хлор Кальций Фосфор Магний Калий Сера Железо Медь Цинк Кобальт Марганец Йод Селен Каротин Витамин: А D Е Ед. измер. Силос Показатель Ед. измер. кг кг кг кг кг Сено Корм Сено люцерновое хорошего качества Силос кукурузный Сенаж люцерновый Дробина пивная свежая Комбикорм КК-61 (0 % люпина) Комбикорм Итого Норма 0,1 0,96 8,8 109 21,98 236,56 21,6 225 1700 1361 1047 654 65 34 33 67 21 353 776 695 2160 3780 368 4149 27 4,4 53 61 23 63 17 1388,8 100 800 20 700 18 2 32,5 3278,4 2217,4 2274,9 1004,5 136,03 59,55 47,4 117,35 36,1 860,05 4640,7 1822 9596,7 4122,6 2039,5 4871,6 44,89 53,38 158,5 89,6 52,25 238,65 41,85 5149,8 175 1154 21,2 954,7 20,8 3,0 1060 3282 2302 2161 1121 155 78 2,5 150 663,8 177 – 5,6 20 200 23,2 2204,1 20,1 823 511,7 23,2 255,5 17,2 383,6 14,2 128,1 9,0 39,9 0,88 0,2 6,5 0,4 0,4 17,5 0,4 6,3 0,4 107,8 6,8 891,1 15,6 292,3 18 1834 36,8 30,1 – 143,5 – 173,6 – 6,3 0,2 16,1 0,04 43,4 1,25 9,1 2,75 7,7 1,0 56,7 0,75 7,0 1,75 1232 125 28,0 5 70,0 55 0,35 0,012 98,0 3,2 0,35 0,024 0,19 0,0008 237 5 55 742 4405 4901 7360 1684 2014 5381 47 145 36 36 150 47 1624 209 1351 16,7 1343 18,8 6,5 956

108 Приложение Д Рис. 3. Анализатор кормов и фуража NIRS™ DS2500

109 Приложение Е

110 Приложение Ж

111

112 Приложение И

113 Приложение К

114 Приложение Л

115 Приложение М

116 Приложение П

117

118 Приложение С

119 Приложение Т

120 Приложение Ф

121 Приложение Х

122 Приложение Ц

123 Продолжение приложения Ц

124

125

126

Рецензии:

Авторизуйтесь, чтобы добавить рецензию

Рецензия от Ксения Юртаева

Рецензия д.с.-х.н., профессора А.Т. Мысика.

больше 6 лет назад

Рецензия от Анна Кулагина

Рецензия доцентов В.И. Остроуховой и Л.П. Табаковой

больше 6 лет назад

Рецензия от Николай Петрович Буряков

Отзыв и согласие научного руководителя на выпускную квалификационную работу Алешина Дмитрия Евгеньевича на тему: «Баланс азота у лактирующих коров при включении в рацион разного уровня белого люпина», представленную на конкурс выпускных квалификационных работ Ассоциации интернет-издателей (webpublishers.ru). Научный руководитель: Буряков Николай Петрович, доктор биологических наук, профессор, ...

больше 6 лет назад

Отзывы:

Авторизуйтесь, чтобы оставить отзыв

19.76

Наталия Сохина

Все четко, емко и по существу.

2.5

Александр Бессонов

Мой комментарий, наверное, уже будет не актуален, но мне очень-очень нравятся подробные работы, особенное если они выполнены на актуальных темах. Советую почитать тому, кто решил сюда заглянуть.

0.5

Алексей Толоконцев

Хорошая работа. Выполнена на высоком методическом уровне и заслуживает положительной оценки. Представляет широкий практический интерес для сельскохозяйственных предприятий производящим молоко-сырье и занимающимся разведение крупного рогатого скота молочного направления продуктивности.

0.5

Ivan Vinogradov

Работа актуальная. Особенно важно донести ее содержание до производства. В условиях подорожания белковой составляющей рационов, люпин это отличное решение!

Николай Петрович Буряков

Хорошая работа. Подробно описаны процессы пищеварения и физиология коров, все данные подтверждены современными источниками. Выполнена лаконично, интересно и исследование альтернативных сое белковых кормов является актуальным в современных условиях импортозамещения.

Наталья Коготкова

Увлекательная работа, материал интересный, актуальный. Рекомендую к прочтению

Наталья Коготкова

Увлекательная работа, материал интересный, актуальный. Рекомендую к прочтению

0.5

Иван Медведев

Интересная работа. Подробно описаны процессы пищеварения и физилогия коров, все данные подтверждены современными источниками. Доступно описано влияние тех или иных веществ на микрофлору рубца, пищеварение и продуктивность. Правильная методика эксперимента и его результаты, говорят о высокой актуальности и новизне опыта.В данной работе был грамотно проведен анализ собранной литературы. Было интересно узнать о влиянии разного уровня люпина в рационах на молочную продуктивность лактирующих коров.

0.5

Юлия Коновалова

Работа емкая,содержательная,для прочтения полезна. Узнала много нового.

0.5

Alexander Syrtsev

Очень содержательная работа. Подчерпнул много нового как специалист в кормлении.