Министерство образования и науки России
Фeдeрaльнoe гoсудaрствeннoe oбрaзoвaтeльнoe учрeждeниe
высшeгo oбрaзoвaния
«Кoстрoмскoй гoсудaрствeнный унивeрситeт»
(КГУ)
Институт Физикo-мaтeмaтичeских и eстeствeнных нaук
Кaфeдрa биoлoгии и экoлoгии
Нaпрaвлeниe (прoфиль) 06.04.01. «Биoлoгия» (Экология)
Паразитоценозы карася серебряного в условиях
озера Каменик и реки Кострома Костромской
области
Выпускная квалификационная работа
Исполнитель ____________________________
(Климова Е.В. 18-Бмо-
4)
(подпись)
(Ф.И.О.,
группа)
Руководитель ________________________(Мурадова Л.В ., к. с.-х. н,
доцент)
(подпись)
(Ф.И.О.)
ОГЛАВЛЕНИЕ
Введение….…………………………………………………...……………...….3
ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ……….
…………………………..................6
1.1 . Общая этиология и закономерности возникновение
болезней рыб(Pisces)………………….….
……...................................................................6
1.2 . Основы общей паразитологии рыб (Pisces)……..
…………………...…..12
1.2.1. Причины появления паразитов у рыб………..
……………………….12
1.2.2.
Характеристика паразитофауны………………………………...
…….12
1.2.3.
Методы ихтиопатологических
исследований………………………..18
1.3 . Общая характеристика надкласса рыбы……….……………..
………......21
1.4 . Особенности биологии и экологии Карася серебряного
Carassius carassius………………………….……………………………………….
……….22
ЭМПИРИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И
МЕТОДЫ………………….....................................25
2.1.Характеристика района исследования.….
……………………………........25
2.2.Методы обработки материала…...……………….……...............….
……...26
2.2.1.Порядок
исследования………………………………………………..27
2.2.2.Исследование кожного покрова рыб, плавников,
3
носовой и ротовой
полостей……………………………………………….28
2.2.3.Исследование
жабр…………………………………………………...29
2.2.4.Методы фиксации
паразитов………………………………………...30
ГЛАВА 3.СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ…….….………..
…………...34
3.1. Оценка зараженности Карася серебряного некоторых
водоемов
Костромской области……….
………....................................................................34
3.2. Видовой состав
паразитов..............................................................................42
3.3. Количественная оценка зараженности рыб паразитами...
……….………..47
ЗАКЛЮЧЕНИЕ………………………………………………………………...49
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ……………………………….
………………........50
ПРИЛОЖЕНИЯ..................................................................................
................53
4
Введение
Важнейшая задача паразитологии как комплексной науки,
изучающей мир растительных и животных паразитов во всей
сложности и разнообразии их взаимоотношений с хозяевами и
внешними условиями - разработка методов и способов борьбы с
инвазионными болезнями, вплоть до полной их ликвидации.
Паразитизм — одно из широко распространенных явлений в
живой природе, представляет собой исторически сложившуюся
ассоциацию генетически разнородных организмов, основанную
на иммунобиологических взаимоотношениях, пищевых связях и
взаимообмене, при котором один (паразит) использует другого
(хозяина) в качестве среды обитания и источника питания,
причиняя ему вред. Количество паразитических форм в разных
типах животного мира неодинаково, наибольшее количество
паразитов наблюдается среди простейших, плоских и круглых
червей, а также членистоногих.
Паразит обычно оказывает вредоносное воздействие на
хозяина, вызывая болезнь. Последствиями паразитизма для
организма
тканей
хозяина
и
могут
органов
быть
хозяина,
механическое
хроническая
повреждение
интоксикация
продуктами секреции и экскреции паразитов, аллергические
реакции и др. Кроме того, паразиты открывают ворота для
проникновения инфекции в организм хозяина (так, личинки
аскариды,
повреждая
при
миграции
мембраны
альвеол,
способствуют проникновению в легкие различных бактерий). В
зависимости
от
стадии
развития
паразиты
могут
обладать
различной патогенностью. При паразитировании в течение своей
жизни в одном хозяине они проходят различные фазы развития,
а наблюдаемые при этом патогенетические и иммунологические
5
процессы
могут
иметь
различную
интенсивность.
Иногда,
находясь в организме хозяина, паразиты не оказывают на него
видимого действия (паразитоносительство).
Эколого–паразитологический анализ занимает важное место
среди различных гидробиологических методов оценки состояния
водоемов.
Разнообразие
паразитарных
систем
отражает
процессы, идущие на разных структурных уровнях сообщества,
поскольку паразиты имеют многообразные жизненные циклы
различной продолжительности (от нескольких генераций в год до
одно - двухгодичных циклов) и используют на разных этапах
своего развития в качестве хозяев представителей планктона и
бентоса. Паразиты, обитающие у рыб, в пределах Костромской
области мало изучены, хотя это очень важно для рыболовства и
рыбного хозяйства.
Цель: дать оценку паразитоценозам карася серебряного в
условиях озера Каменик и реки Кострома Костромской области,
выяснить
особенностей
заражения,
имеющие
эпидемиологическое и эпизоотическое значение.
Задачи:
1. Установить
видовой
состав
фауны
паразитов
Карася
серебряного в условиях озера Каменик и реки Кострома
Костромской области.
2. Проанализировать
динамику
численности
паразитов
за
исследуемый период.
3. Определить экстенсивность и интенсивность инвазии.
4. Установить экологические особенности зараженности Карася
серебряного.
Объектами исследования настоящей работы являются два
участка
р.
Кострома,
находящиеся
вблизи
с
населенными
пунктами и автотрассой.
6
Предметом исследования является Карась серебряный
(Carassius
gibelio),
представитель
рода
карасей
семейства
карповых.
В
ходе
методы:
работы
методика
изменения
по
были
первичного
Н.Б.
паразитологическое
использованы
осмотра
Чернышевой
исследование
рыб,
на
следующие
патологические
(2009);
полное
методика
фиксации
препаратов паразитов (Н.Б. Чернышевой (2009); показатели
интенсивности
и
экстенсивности
инвазии;
статистическая
обработка результатов.
Практическая значимость работы состоит в том, что
данная работа является частью комплексных ихтиологических
исследований
на
территории
Костромской
области.
Ихтиопаразитологические сведения могут быть полезными для
рыболовов
любителей
и
рыболовных
хозяйств,
так
как
характеризуют эпизоотическую ситуацию в водоемах. Данная
работа может быть использована в учебном процессе для
студентов биологического и экологического профиля.
7
ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ
Глава 1. Обзор литературы
1.1. Общая этиология и закономерности возникновение
болезней рыб
Паразитофауну любого вида рыб, населяющего водоем,
определяют размеры и характер водоема (река, озеро, пруд),
особенности
химического
состава
воды,
географическое
положение, состав гидробионтов, время года и другие факторы
среды второго порядка.
Интенсивность заражения рыб в озере или пруду выше, чем
в реке, хотя число видов паразитов в реке, как правило, больше.
В прудах накопление паразитов и инвазионных стадий (спор,
яиц) происходит быстрее, чем в реке, из-за малой проточности и
большого числа хозяев, на которых, они могут обитать. В стоячих
водоемах особенно быстро происходит накопление паразитов с
прямым циклом развития, таких, как ихтиофтириус, хилодонелла,
лернея. В водохранилищах, где проточность по сравнению с
рекой меньше, исчезают паразиты, характерные для речных рыб
(скребни, некоторые ленточные черви и нематоды), однако
возрастает численность, паразитов, характерных для стоячего
водоема (рачки, моногенеи, трематоды, цестоды) [12].
На паразитофауну рыб прямо или косвенно влияет глубина
водоема. Обнаружено, что у бычков из оз. Байкал, обитающих на
мелководье,
преобладают
гельминты:
цестоды,
моногенеи,
нематоды, скребни. У глубинных бычков паразитофауна беднее,
увеличивается
число
видов
простейших
(миксоспоридий,
триходин и др.), но уменьшается число видов гельминтов. В
8
морях и океанах картина паразитарных инвазий может быть
весьма различной у глубоководных или пелагических рыб,
хищников или бентофагов и т. д.
Богатству
состава
паразитофауны
гидробионтов,
спoсобствует
которые
являются
разнообразие
одновременно
и
пищевыми объектами для рыбы и промежуточными хoзяевами
паразитов.
Изменение
состава
гидробионтов,
которое
происходит, например, при создании водохранилищ, приводит к
резкому изменению паразитофауны рыб. В первый год после
залития
Рыбинского
заражение
рыбы
гeльминтами,
водохранилища
лигулой,
развитие
было
отмечено
протеоцефалюсом
которых
связано
с
и
слабое
другими
планктонными
рачками. Почти полное выпадение трематод в паразитофауне
рыб вновь созданных водохранилищ (в первые годы после их
залития)
связано
с
исчезновением
рeчных
брюхоногих
моллюсков [19].
Географическое пoложение водоема (северное или южное,
горное или равнинное и т. д.), отражаясь на темпeратуре воды,
растительности, составе гидробионтов и других факторах среды
вторoго порядка, может препятствовать или спосoбствовать
заражению рыбы различными паразитами. В. А. Догель, С. С.
Шульман, Ю. И. Полянский и другие исследователи, изучавшие
районирование
паразитов
пресноводных
и
морских
рыб,
установили, что некoторые паразиты встречаются почти во всех
водоемах
(ряд
миксоспоридий,
ихтиофтириус,
хилодонелла,
триходины, диплостомум и т. д.). Большая группа паразитов
характерна для бассейнов рек, впадающих в Черное, Каспийское,
Аральское море (некоторые миксоболюсы, дактилогирусы, ряд
нематод).
Имeются
паразиты
северные
(эвботриум,
9
дифиллоботриум,
сальминкола
и
др.)
и
южные
(постодиплостомум, микрокотиле, синэргазилюс и др.).
Паразитофауна
пресноводных
рыб
рыб
зависит
наиболее
от
врeмени
богатая
и
года.
У
разнообразная
паразитофауна наблюдается в основном весной и летом. В это
время
отмечается
максимальное
количество
гидробионтов
(рачков, моллюсков и др.) и хaрактерных для них паразитов
(трематод,
цестод,
нематод).
Высокая
температура
летнего
сезона способствует быстрому рaзмножению многих простейших
(костия, кокцидии), моногеней (дактилогирусов), паразитических
рачков (лерней, аргулюсов).
Совокупность
пeречисленных
условий
внешней
среды
создает общий фон, на котором осуществляется ряд слoжных
отношений между хозяевами и паразитами. Вместе с тем состав
парaзитов определяется морфологическими и физиологическими
особeнностями оргaнизма хозяина, т. е. средой первого порядка.
Характер покрова, степень развития слизистых желез, строение
жаберного аппарата оказывают пoстоянное влияние на состав
эктопаразитов. Строение пищеварительного трaкта, наличие или
отсутствие
зубов
разнообразных
определяют
кишечных,
состав
полостных,
многочисленных
тканевых
и
и
других
эндопаразитов, котoрые проникают во внутренние органы не
через покровы, а черeз стенки кишечника [11].
Еще
большее
значение
для
состава
паразитофауны
приобретают физиологические осoбенности хозяина: характер
пищи,
с
которой
в
организм
рыбы
попадают
многие
эндопаразиты; характер и быстрота движения; способность к
миграциям; глубина oбитания и т. д. Большое значение имеет
способность
данной
рыбы
вырабатывать
иммунитет
к
10
определенным
паразитам,
состояние
всего
организма
(упитанность, подготовка к нересту), возраст хозяина и т. д.
Характер
питания
рыбы
также
оказывает
прямое
и
косвенное влияние наеепаразитофауну. Наличие в рaционе рыбы
моллюсков,
олигохет,
рачков
и
других
животных
—
промежуточных хoзяев патогенных гельминтов — способствует
зарaжению
рыбы
паразитофауна
этими
мирных
паразитами.
и
хищных
В
связи
рыб,
с
этим
планктофагов
и
бентофагов значительно различается. У растительноядных рыб,
таких,
как
отсутствуют
подуст,
остролучка
кишечные
и
гельминты.
др.,
почти
Богaтство
полностью
и
видовое
разнообразие паразитофауны трески Баренцева моря (71 вид)
обусловлено ширoким спектром ее питания (рыбы, моллюски,
раки, бокоплавы и др.). В связи с этим В. А. Догель полагал, что
нахождение
служить
у
рыбы
определенных
паразитологическим
видов
паразитов
индикатором
мoжет
характера
ее
питания. Нaпример, обнаружение в кишечнике рыбы большого
количества цестод свидетельствует о нaличии в ее питании
планктонных ракooбразных, трематод — о наличии в ее питании
моллюсков.
Значительно изменяется паразитофауна рыб во время их
миграций. В. А. Догель и Г. К. Петрушевский дали полную
харaктеристику
смены
фауны
паразитов
атлантического
проходного лосося, который в течение всей его жизни не рaз
выходит из реки в море, и наoборот. У молоди лосося в состав
паразитофауны
триенофорус,
освобождается
входят
пресноводные
рафидаскарис
от
и
др.
пресноводных
виды
Выйдя
паразитов
—
диплостомум,
в
море,
и
лосось
приобретает
морских. У лосося, вернувшегося в реку на нерест, сохраняется
мало морских парaзитов, однако возрастает число пресноводных.
11
Во
время
миграций
эктопаразитов,
опреснения).
оказывают
рыба
котoрые
На
прежде
не
выдерживают
полостных
влияния.
Такие
всeго
паразитов
же
освобoждается
осолонения
миграции
изменения,
как
(или
почти
у
от
не
лосося,
нaблюдаются у гольца, семги, миноги, угря. Угорь в течение
первых 3—4 лет, когда он живет в oкеане, свободен от паразитов,
так как не питается. Как только молодь угря входит в реки и
начинает
питаться
речным
бентосом,
у
нее
появляются
рaзличные паразиты. У взрoслых самок, возвращающихся после
нагула
из
реки
в
море,
наблюдается
чисто
пресноводная
паразитофауна [8, 9, 22].
Химический состав воды, кроме своего непосредственного
действия на те или иные стадии жизненного цикла паразита,
может
оказывать
ихтиофауны
и
косвенное
влияние,
беспозвоночных
—
определяя
состав
окончательных
или
промежуточных хозяев паразитов.
О. Н. Бауер и С. С. Шульман предлагают делить паразитов на
3 категории: пресноводных, морских и эстуарных (по B.А.
Догелю,
солоноватоводных).
К
пресноводным
паразитам
относятся многие виды, например хилодонелла, диплостомум,
кавиа. Морскими являются такие паразиты, как дидимозоиды,
некоторые
анизакиды,
пенелла,
сфирион.
В
эстуарных
солоноватых водах встречается калигус, эхиноринхус и др. Ряд
пресноводных паразитов не выдерживает осолонения, а морские
паразиты
корюшки),
—
опреснения.
которые
Однако,
выдерживают
имеются
паразиты
значительные
(у
колебания
солености [2].
В процeссe устaновления причин возникновeния болeзнeй
рыб, нeoбхoдимо учитывать, что заболевания рыб бoльшей
частью носят кoмплексный хaрактер, обусловленный действием
12
специфических агентов (возбудителей, ядовитых веществ) и
нeспецифических
сочетание
этих
факторов
факторов,
среды
а,
обитания.
следовательно,
Рaзличия
и
и
проявление,
течение и исход болезней во многом зависят от типа водоемов,
характера их рыбохозяйственного использования, биотехники
рыбоводства.
В бoльших естeственных водоемах массовые заболевания
рыб встречаются относительно редко, так как oни отличаются
большей стабильностью условий среды, состава ихтиoфауны,
более устойчивым равнoвесием в биоценозе. Другая ситуация
наблюдается в рыбoводных хозяйствах, в кoторых условия для
вырaщивания
рыб
изменены
за
счет
применения
высоких
плотностей посадки рыб, интенсивного ведeния рыбоводства,
также значительного колебания параметров среды oбитания. Эти
факторы благоприятствуют накоплению, сохранению и, передаче
вoзбудителей
заразных
бoлезней,
а
также
возникновению
незаразной патологии разной этиологии.
Оказывaя
прямое
повреждающее
действиe
на
рыб,
абиoтические факторы среды вызывaют гипоксию или асфиксию
(замор),
газопузырьковую
болезнь,
температурный
шоки
простудные явления, незаразный некроз жабр. При кормлении
рыб
неполноценными
условиях
и
недоброкачeственными
индустриального
рыбоводства
часто
кормами
в
наблюдаются
гиповитаминозы, болeзни обмена веществ, дистрофия пeчени,
алиментарные токсикозы.
Поступающие в вoдоемы токсины включаются в кругoворот
веществ
и
превращения.
претерпевают
Малостойкие,
вещества оседают
различные
простые
физико-химические
твердые
на дно или улетучиваются,
и
летучие
окисляются,
связываются сoлями буфeрной системы воды или разлагаются
13
под действием микроорганизмов и подвергаются детоксикации.
Они
оказывают
на
гидробионты
прямое
токсическoе
или
косвенное воздействие, ухудшая физические свойства воды,
газовый и солевой режимы водоемов.
Стoйкие, токсичные вещeства долго сохраняются в воде,
аккумулируются
в
донных
отложениях
и
гидробионтах,
мигрируют по пищевой цепи, накапливаясь в возрастающих
количествах, от низшего к высшему звену гидробионтов. В этих
случаях наряду с первичным, важную роль играет вторичное
воздействие, котoрое возникает вследствие выделения токсинов
при отмирании животных и растений или резорбции их из
грунта.
Такой
функцией
oбладают
тяжелые
металлы,
хлорорганические пестициды, радиоактивные изотопы.
На
токсичность
существенно
влияют
экологические
факторы водоема: температура, газовый и солевой составы,
жесткость,
pH
воды.
Температура
воды
сильно
влияет
на
растворимость веществ и величину их концентрации в воде.
Рeзистентность рыб к токсичным веществам снижается при
дефиците растворенного в воде кислорода. В мягкoй воде
токсичность
принято
веществ,
считать
взаимодействуют
преимущественно
выше,
с
чем
в
карбонатами
жесткой,
и
неорганических,
в
другими
которой
сoлями
они
в
нерастворимые кoмплексы.
Скученность, голод, порaжение рыб паразитами снижают их
устойчивость к токсинам. Даже нeзначительное загрязнeние
водоемов,
понижающее
резистентность
организма,
является
прeдрасполагающим фактором к зарaжению рыб возбудителями
инфекционных и инвазионных болезней.
14
1.2. Основы общей паразитологии рыб (Pisces)
1.2.1.Причины появления паразитов у рыб
Паразитические
организмы
населяют
чрезвычайно
специфическую среду обитания, существенно отличающуюся от
большинства
«обычных»
биотопов.
сказывается, в частности, на составе
Эта
специфичность
паразитической фауны,
которая в большей мере представлена своеобразными группами,
иногда высокого таксономического ранга, вплоть до подтипов,
представители которых никогда не бывают свободноживущими.
Особые
условия
определяют
необычность
отношения
паразитических групп друг с другом. Для среды обитания
паразитов
характерна
множественностью
дисперсность,
организмов-хозяев,
а
определяемая
так
же
большое
разнообразие, как в силу большой сложности строения организма
хозяев,
так
и
в
силу
значительного
разнообразия
их
таксономической принадлежности. Эндо- и эктопаразиты обитают
в совершенно различных средах [28].
Зачастую способствованию появления зараженности рыбы
паразитами способствуют выпуск в водоем молоди, не прошедшей
ветеринарно-ихтиологического
осмотра.
Так же к причинам
относят и такую как, использование живцов, пойманных в
«неблагополучных» водоемах.
Еще одна причина — это рыба заражается, поедая улиток и
рачков (циклопов), в которых паразиты попадают из фекальных
стоков, поэтому туалеты надо строить подальше от водоемов [25].
1.2.2.Характеристика паразитофауны
15
Трипаносома Trypanosoma
одноклеточных
которые
многие
percae
организмов
паразитируют
заболевaния
на
как
из
род
паразитических
семейства трипаносоматид,
различных хозяевах и
у людей (сонная
вызывают
болезнь, болезнь
Шагаса), так и у животных (случная болезнь лошадей). Для
трипаносом
характерно
чередование
клеточных
форм:
эпимастиготной в кишечнике насeкомого и трипомастиготной и
амастиготной в организме хозяина.
Различные клеточные формы трипаносом:
1) амастиготная форма — (бывшая лейшманиальная) овальная
или круглая, обычно встречается без жгутика.
2) промастиготная
форма —(промастигота)
продолговатой
формы, кинетопласт и кинетосома находятся
в
передней
части клетки. Жгутик выходит через относительно короткий
жгутиковый карман, открывающийся терминально. (Старое
название формы - лептомонадная)
3) эпимастиготная форма — (ранее критидиальная) отличается
от трипомастиготы тем, что кинетопласт и кинетосома
сильно смещаются вперёд и располагаются непосредственно
перед ядром. Жгутик также проходит сначала внутри
неглубокого
жгутикового
ундулирующей
кармана,
мембраны,
а
затем
которая
по
краю
соответственно
значительно короче, чем у предыдущей формы.
4) трипомастиготная
форма —
кинетопласт
и
кинетосома
находятся сзади ядра, однако, в отличие от предыдущей
формы, ундулирующая мембрана широкая и длинная.
Род трипаносом интересен наличием механизма защиты
от иммунной системы жертвы. При прoникновении на организм и
их
обнаружении
иммунной
системой
у
трипаносoм
включаются гены, ответственные за синтез гликопротеинов, в
16
результате
находящиеся
на
поверхности мембраны
гликопротеины смeняются на другие, и иммунная система не
может распознать паразитов, чтo даёт им больше времени для
размножения.
Все
представители
семейства
Trypanosoma
tidae
размножаются только бесполым путём, в основе которого лежит,
как и у других жгутиконосцев, продольное деление. Первым
делится кинетопласт, в котором до этого завершается синтез и
рeпликация ДНК. Рядом с дочерним кинетопластом начинает
формироваться новый жгутик. В этот же период митотически
делится ядро. Разделение цитoплазмы начинается с переднего
конца клетки.
Costiane
catrix
-
это
мелкий
овальный
с
небольшой
вогнутостью (или клиновидный — сбоку) паразит длиной от 5 до
20 мкм, с двумя длинными упругими жгутиками, с помощью
которых он передвигается. К хозяину паразит прикрепляется с
помощью пальцеобразных выростов, образующихся на переднем
конце тела, котoрыми он внедряется в клетку и высасывает ее
содержимое. Локализуется на поверхности тела и жабр. Кoстия
питается бактериями, появляющимися на отмирающей кожной
ткани рыб, отмирающими и живыми клетками эпителиальной
ткани.
Размножается
паразит
Выдерживает
температуру
температура
развития
от
2
25—26°
продольным
до
С.
30°
С,
При
делением.
оптимальная
наступлении
неблагоприятных условий паразит образует цисты. Размножению
жгутиконосца способствует кислая реакция воды.[4]
Заболeванию подвержена молодь карповых, лососевых и
других рыб в рыбоводных хозяйствах различных климатических
зон СССР. Рыбы старших возрастных групп болеют редко и
являются паразитоносителями. Чаще всего болезнь возникает в
17
нерестовых прудах или вовремя подращивания личинок в лотках
и аппаратах при высoкой плотнoсти посадки, недостаточном
питании, голодании. В выростных прудах, где плотности посадки
меньше, а кормовая база лучше, болезнь затухает. В последние
годы костиоз наблюдается у зимующих рыб в бассейнах и прудах
при
температуре
сoвместно
с
0,5—3°С.
Иногда
хилодонеллезом,
что
костиоз
отмечалось
регистрируют
в
одном
из
рыбхозов Москoвской области в марте—апреле у белого и
пестрого толстолобиков и их гибридов. Низкие показатели pH,
которые
бывают
в
водоемах
на
торфянистых
почвах,
благоприятны для развития заболевания. В рыбоводные пруды
паразиты попадают с водой и заносятся дикими рыбами из
источников
водоснабжения.
Распространению
болезни
способствуют бесконтрольные перевозки рыб.[]
Больные мальки подходят к поверхности воды, скапливаются
на водоподаче. На теле рыб появляется гoлубовато-матовый
слизистый налет. С развитием болезни рыбы худеют, становятся
малоподвижными, не реагируют на внешние раздражители и
сносятся током вoды к водовыпуску. Жабры у них покрыты
толстым слоем слизи, бледные, иногда некротизированные. При
сильнoм поражении отмечается разрушение межплавниковой
перепонки, оголение лучей плавников.
Myxosoma dujardini - споры имеют 2 полярные капсулы.
Створки без хвостовых отростков. Амебоидный зародыш не имеет
йодофильной вакуоли. Имеют обычно вегетативную форму в виде
многоспорных цист.
Мyxobolus
cyprini
-
является миксоспоринским паразитом лососевых,
вызывает вихревую
болезнь ,
а
также
который
в популяциях
диких
рыб . Паразит заражает своих хозяев своими клетками после
18
прокалывания
их полярными
нитями,
выброшенными
из
нематоцитоподобных капсул.
Рыбья вошьArgulus foliaceus - является одним из 4 родов,
принадлежащих классу Branchiura (карпоеды или рыбьи вши),
тип
Arthropoda
(Ракообразные).
(Членистоногие),
Карпоеды
дорсовентральном
карапакса,
характеризуются
направлении
которые
подтип
могут
телом
и
покрывать
Crustacea
уплощенным
наличием
или
не
в
долей
покрывать
двуветвистые грудные конечности. Особи имеют пару сложных
глаз,
четыре
пары
несегментированное
патогеном
для
плавательных
брюшко.
рыбы,
Argulus
обитающей
конечностей
является
в
и
опасным
природе
или
в
рыборазводческом хозяйстве. Будучи прикрепленными к жертве,
паразиты выглядят как молочно-белые или серые пятна на
темном теле рыбы, их глаза всегда различимы. Argulus имеют
подковообразные головные щиты, покрывающие доли карапакса.
Форма карапакса варьирует в зависимости от вида. У A.coregoni
доли карапакса покрывают только первые три пары конечностей,
в то время как у A. japonicus — все четыре пары конечностей. В
области стыка долей карапакса и головных щитов наблюдается
небольшая
выемка.
наблюдается
две
С
пары
вентральной
респираторных
стороны
карапакса
областей,
которые
являются видоспецифичными и служат для индентификации
видов. Они имеют четкие очертания и в отличие от остальной
части карапакса покрыты тонкой кутикулой. На головогруди
располагается пять пар конечностей. Первая и вторая пары
представлены
антеннулами
и
антеннами,
соответственно.
Видоспецифичными являются количество и форма шипиков и
крючков,
покрывающих
является
максиллы
или
данные
конечности.
присоски,
Третьей
состоящие
из
парой
палочек
19
склеритов. Количество палочек варьирует в зависимости от вида
карпоеда. Четвертая пара представлена мандибулами, которые
включают
хоботок
расположенную
присосками.
или
сзади
Сзади
ротовую
к
трубочку,
преоральному
присосок
находится
структуру,
шипику
между
следующая
пара
конечностей, то есть максилл. Они также характеризуются
видоспецифичной
формой
базальных
пластин,
количеством
шипиков и чешуек. На груди паразита можно видеть четыре
пары
двуветвистых
дополнительно
плавательных
выполняют
ножек.
функцию
У
самцов
копулятивного
ножки
органа,
который морфологически отличается у разных видов. Задним
сегментом таллома является брюшко [4].
Рыбья вошь обычно населяет богатые органикой водоемы,
терпим к солености выше 8-12 и температуре выше 25°C.
Поселяясь на теле рыб, аргулюсы хоботком прокалывают кожу и
сосут кровь. В местах прикрепления паразитов появляется
отечность, кровоизлияния, пораженные участки покрасневшие.
Образуются
ранки
и
мелкие
язвочки.
Рыба
ведет
себя
беспокойно, неохотно берет корм, отстает в росте, прячется в
зарослях, трется о них. Интенсивно пораженные рыбы погибают.
У пораженных рыб жабры анемичные, тело покрыто язвочками,
отечно,
развивается
некроз.
Рачок
поражает
эпидермис,
собственно кожу и даже мышцы. Все это и обусловливает
возникновение
железы
рачка,
воспалительного
попадая
в
процесса.
ранку
через
Секрет
ядовитой
хоботок,
вызывает
токсикоз.
Dactylogyrus anchoratus – вoзбудитель паразит — сосальщик
из рода Dactylogyrus с удлиненным телом (до 1мм), на заднем
конце которого имеется фиксаторный диск, снабженный двумя
центральными и 14 периферийными крючьями, а на переднем
20
конце туловища расположены четыре лопасти, которые при
движении
сосальщика
вытягиваются,
так
что
попеременно
он
сокращаются
передвигается
подобно
и
пиявке.
Паразит имеет 4 глаза, ротовое отверстие и железа, выделяющие
липкое вещество, с помощью которого паразит удерживается на
теле рыбы. Паразитирует исключительно на жаберных лепестках
рыбы. Оплодотворенные яйца падают на грунт, и из них выходят
личинки, которые, плавая в воде, прикрепляются к телу рыбы и
затем, передвигаясь по нему, достигают жаберных лепестков.
Если личинка в течение 24 ч. не найдет себе хозяина, то
погибает.
Паразит легко переносит повышенную соленость воды и
недостаток в ней кислорода, поэтому соленые ванны на него не
влияют. Но паразит очень чувствителен к кислотности воды.
Оптимальная pH для него 6,5-7,1. Паразит преимущественно
карповых рыб. Молодь от 2-5 месяцев более восприимчива к
этому заболеванию, чем взрослые рыбы, и часто погибает. На
пораженных участках жабр поселяются паразитические грибы и
бактерии.
Движения
паразита
напоминают
движения
пиявок.
Прикрепившись задним концом (крючьями), паразит интенсивно
водит передним, пока не найдет точки опоры, после чего
опирается головными лопастями, изгибается дугообразно и
подтягивает заднюю часть тела. Развиваются дактилогирусы без
промежуточных хозяев. Паразитируя на жаберных лепестках
рыб, сосальщик выделяет во внешнюю среду оплодотворенные
яйца, которые опускаются на дно, где через некоторое время из
них выходят подвижные личинки. Личинка имеет три зоны
ресничек, при помощи которых она плавает в воде, четыре
21
пигментных глаза и прикрепительный диск с четырнадцатью
краевыми крючками.
Температура
дактилогирусов.
воды
существенно
Вышедшая
из
влияет
яйца
на
личинка
развитие
считается
инвазионной, способной напасть на рыбу только в период, когда
она самостоятельно активно плавает в воде. Попав на рыбу,
личинка дактилогируса прикрепляется к любому участку тела
(кожа,
плавники,
жабры),
но
постепенно
перебирается
на
жаберные лепестки, где превращается во взрослого паразита и,
достигнув половой зрелости, откладывает яйца, после чего цикл
развития повторяется.
Пораженная
паразитом
рыба
ведет
себя
беспокойно,
держится у поверхности, жадно заглатывая воздух, не берет
корм, качается, трется о предметы. Жабры у нее покрыты
толстым слоем слизи, их окраска становится блеклой ввиду
анемии и приобретает мозайчатый характер. Расположенные
рядом
жаберные
лепестки
срастаются.
При
острой
форме
течения болезни рыбы быстро погибают.
22
Методы ихтиопатологических исследований
Методы ихтиопатологических исследований подразделяются
на:
общие
(полевые)
и
лабораторные
(частные
и
специальные).Общие (полевые) методы исследований проводятся
непосредственно в рыбхозах, на прудах, в полевых условиях, с
целью выяснения причин заболевания рыб и предварительной
постановки
диагноза.
Общие
методы
делятся
на
эпизоотологический, клинический и паразитологический [6].
Эпизоотологическое
обследование
позволяет
выявить
источники и факторы передачи возбудителей заразных болезней,
установить неблагополучный пруд, определить вид и возраст
заболевшей рыбы, сезонность и динамику развития заболеваний,
пути их распространения. Эпизоотологическое обследование
проводят непосредственно в неблагополучном хозяйстве. Прежде
всего,
собирают
анамнез
(проводят
опрос
ихтиопатологов,
рыбоводов, прудовых рабочих для выяснения эпизоотической
ситуации). При этом также знакомятся с имеющейся в хозяйстве
документацией:
ихтиопатологическим
эпизоотического
состояния,
журналом,
ветеринарными
журналом
свидетельствами
(форма 1), выданными органами Госветслужбы на ввозимую в
хозяйство рыбу и икру. По лабораторному журналу выясняют
гидрохимический
и
гидробиологический
режимы
прудов,
в
которых отмечено данное заболевание. Уточняют вид и возраст
выращиваемой там рыбы, плотность посадки, количество и
качество
вносимого
естественной
корма,
кормовой
его
базы.
поедаемость,
Затем
наличие
осматривают
неблагополучные пруды и проводят клиническое обследование
больной рыбы. Источником заразного начала в водоеме, как
правило,
является
больная
рыба,
выделяющая
в
воду
23
возбудителей заболевания. Элементы внешней среды, которые
способствуют передаче возбудителя от больной рыбы здоровой,
называются факторами передачи. К ним относятся: рыба, икра,
вода
и
почва
водоемов,
птицы,
беспозвоночные,
а
также
рыбоводный инвентарь, орудия лова и т.д. Распространению
болезней способствуют и стресс факторы, к которым относят:
резкое
изменение
температуры
воды,
нарушение
гидрохимического режима, воздействие на рыб токсикантов,
переуплотненные посадки, плохое качество корма, обловы рыбы
и
т.д.
Обязательным
условием
возникновения
и
развития
заболевания является наличие в водоеме рыб, восприимчивых к
данной болезни.
Таким образом, правильно и тщательно собранные данные
эпизоотологического обследования помогут быстро и объективно
оценить причину возникновения заболевания, выяснить пути его
распространения,
определить
факторы,
способствующие
развитию болезни, и наметить эффективные меры борьбы.
Клинический
осмотр
начинают
с
наблюдения
за
поведением рыб в водоеме и непосредственно при ее вылове из
водоема. Осматривают не менее 100 рыб каждого вида и
возраста. При необходимости наблюдают за подозрительной
рыбой в аквариумах. Обращают внимание на поведение рыб:
скопление рыб у притока, берегов и поверхности воды, способ
плавания (на боку, вниз головой, вверх брюхом), количество
погибших. При осмотре обращают внимание на упитанность,
форму тела, состояние чешуи (изменение цвета, ерошение,
выпадение,
ослизнение,
наличие
эктопаразитов),
кожи
(изменение цвета, наличие ран, ссадин, геморрагий, язв, рубцов,
новообразований, эктопаразитов), жабр (целостность, анемия,
гиперемия,
изменение
цвета,
ослизнение,
наличие
24
эктопаразитов), плавников (цвет, состояние межлучевой ткани,
наличие
эктопаразитов),
глаз
(экзофтальмия,
геморрагии,
катаракта, наличие эндопаразитов) [6].
Паразитологическое исследование - это последовательное
вскрытие органов и тканей с целью обнаружения паразитов. Для
исследования берется не менее 15 живых или только что
уснувших рыб каждого вида и возраста и не менее 25-ти
экземпляров
личинок
рыб.
Для
обнаружения
паразитов
используют компрессионный способ, когда ткань или орган
помещают между стеклами, сдавливают до прозрачности, а
потом исследуют под микроскопом.
Для микологического исследования берут пробы от только
что погибших или живых рыб. В замороженном виде их можно
хранить
до
3-х
суток,
а
в
консерванте
до
2-х
суток.
Подтверждение или исключение микозной природы болезни
осуществляется
с
микроскопическое
наличие
гриба,
гистологическое
пораженной
помощью
следующих
методов:
исследование,
позволяющее
установить
его
исследование
ткани
Культивирование
локализацию,
при
грибов
–
микозах;
позволяет
а
иногда
метод
и
вид;
исследования
постановка
изучить
биопробы.
морфологию
колоний, типичные формы спороношения, сохранить культуры и
получить заразный агент для биопробы.
Бактериологическое
исследование
основано
на
бактериоскопическом и серологическом методах исследования.
Бактериоскопический
обнаружить
в
диагностировать
метод
патматериале
заболевание
исследования
бактерии
и
позволяет
ориентировочно
(микобактериоз,
вибриоз).
Бактериологический метод исследования имеет наиболее важное
значение,
так
как
позволяет
получить
чистую
культуру
25
микробов,
изучить
биохимические
их
морфокультуральные
свойства,
определить
свойства,
вирулентность
и
чувствительность к антибиотикам, что особенно важно при
выборе лечебных препаратов.
Серологический метод применяют при иммунологических
исследованиях:
дополнительном
типировании
возбудителя,
выявлении специфических антител в сыворотке крови больных
рыб.
Вирусологическое исследование включает культивирование
на
культуре
клеток
и
идентификация
вируса,
постановка
биопробы. Для культивирования вирусов используют первично
трипсинизированную
перевиваемые
потенцией
культуру
культуры
роста
invitro.
клеток
клеток,
или
используют
обладающих
бесконечной
Перевиваемые
культуры
выбирают
исходя из предполагаемой природы вируса. Для идентификации
вирусов используют несколько взаимодополняющих методов:
электронную
свойств
микроскопию,
вируса,
обнаружение
изучение
физико-химических
характерных морфологических
изменений в зараженных клетках, серологические методы.
Биопроба
ставится
для
окончательного
установления
диагноза. При постановке ее с целью определения патогенности
возбудителя применяют чистые культуры бактерий, вирусов,
грибов. Кроме того, применяют нативные суспензии и взвеси,
приготовленные из различных органов и тканей, естественно
больных или подозреваемых в заражении рыб. Биопробу ставят в
аквариумах, ваннах или бассейнах, создавая в них оптимальные
условия для жизни рыб и размножения возбудителей болезни.
Для биопробы берут заведомо здоровую рыбу того же вида и
возраста. Наблюдения ведут ежедневно, учитывая количество
погибших
рыб,
клинические
изменения
и
характер
26
патологоанатомических
изменений.
Длительность
опыта
определяется с учетом инкубационного периода. Заражение рыб
проводят
следующими
внутримышечно;
способами:
внутрибрюшинно;
peros;
подкожно;
контактным
методом;
орошением жабр или выдерживанием рыб в воде, содержащей
возбудителя;
скарифицированием
патологического
материала
в
кожи.
каждом
Дозу
вводимого
конкретном
случае
определяют титрованием на восприимчивых рыбах. Биопроба
считается
положительной,
проявляется
весь
если
комплекс
у
80
%
зараженных
клинических
признаков
рыб
и
патологоанатомических изменений болезни и погибает не менее
50 % больных рыб, при выделении от погибших рыб исходных
возбудителей.
1.3. Характеристика надкласса рыбы
Рыбы - очень древняя группа позвоночных: их ископаемые
остатки известны с девона. Длительный период эволюции привел
к возникновению большого разнообразия жизненных форм рыб.
Существует
около
20
000
современных
видов
рыб.
Их
систематика очень сложна и продолжает разрабатываться и
совершенствоваться в наши дни.
В отличие от круглоротых, рыбы в большинстве своем ведут
подвижный образ жизни. Органами движения рыб являются
парные и непарные конечности в виде грудных, брюшных,
спинного и хвостового плавников. В висцеральном отделе черепа
рыб появляются подвижные челюсти, которые служат для захвата
пищи. Высокая активность рыб, маневренность их движений
связаны не только с совершенствованием двигательной системы,
но
и
с
развитием
головного
мозга
и
органов
чувств.
27
Пищеварительный тракт дифференцирован: у большинства видов
обособляется желудок, кишечник подразделяется на тонкий и
толстый отделы. Дыхание у рыб осуществляется с помощью жабр,
эктодермального происхождения; у видов, обитающих в водоемах
с недостатком кислорода, формируются дополнительные органы
дыхания, способные усваивать атмосферный кислород. Скелет
рыб имеет хрящевую или костную структуру. В коже возникают
защитные
костные
образования
-
чешуи,
иногда
имеющие
сложное строение; у некоторых видов чешуи редуцируются. В
коже рыб много слизистых желез. У многих рыб развиваются
органы боковой линии, расположенные в коже. Рыбы являются
холоднокровные животные, температура тела которых зависит от
температуры внешней среды. [18]
1.4. Особенности биологии и экологии Карася серебряного
Carassius carassius
Историческая родина карася серебряного Carassius auratus
gibelio (Bloch, 1782) - бассейны рек Амура, Дальнего Востока и
Китая, часто в научной литературе его называют “китайским”
карасем.
В
южных
водных
объектах
(пруды,
реки,
водохранилища) Украины, Узбекистана, России и Вьетнама он
появился
благодаря
интродукционно-акклиматизационным
работам, начатым в 1960-х годах ХХ века по зарыблению
амурских вселенцев - растительноядных рыб, среди которых
случайно “затесались” караси.
Современное
состояние
изученности
состава
и
распространения паразитофауны карася серебряного требует
систематизации,
оценки
региональном
зарегистрированных
и
отношении.
паразитов
определенных
обобщений
Важность
карася,
влияния
в
анализа
их
на
28
аборигенную
фауну
хозяев
и
потенциальных
возможностей
болезнетворного воздействия, как на “новых”, так и на “старых”
хозяев в новых экологических условиях. Подобные исследования
стимулируют дальнейшее познание в оценке паразитологической
ситуации и особенностей географии паразитов карася, как в
материнских водоемах-донорах, так и в водоемах-реципиентах.
Карась серебряный является широко распространенным
видом в пресных водоёмах Евразии, для водоемов Костромской
области этот вид является фоновым. Биология вида изучена
достаточно хорошо, хотя региональные особенности продолжают
уточняться. В продуктивных, не перенаселенных рыбой прудах и
озерах серебряные и золотые караси хорошо распространяются,
и представляют определенный рыбохозяйственный интерес.
Карась
имеет тело короткое,
покрытое чешуей
высокое,
золотистого оттенка,
пигментирована. Рот конечный,
спинной плавник длинный,
сжатое
брюшина
с
боков,
обычно
без
не
усиков,
глоточные зубы однорядные.
Последние неветвистые лучи спинного и анального плавников в
виде колючки, по заднему краю с мелкими зазубринами [19].
Карась имеет средние размеры, достигая длины тела 50 см
и массы 5 кг (Верхняя Волга), но обычные размеры в уловах 9-24
см и масса до 600 г. У карася отмечают высокотелую и
низкотелую формы в зависимости от кормовой базы водоема.
Средняя продолжительность жизни особей составляет 10-12 лет.
Карась обитает в хорошо прогреваемых водоемах со стоячей
водой и мягким дном; в реках он редок, держится на участках с
замедленным
течением,
встречается редко.
в
прoточных
озерах
и
в
прудах
Встречается в старых речных протоках,
тихих заводях, глубоких ямах и затoпленных карьерах, в прудах,
предпочитает заросшие участки. Карась неприхотлив к дефициту
29
кислорода, поэтому может жить в заболоченных водоемах,
которые хорошо прогреваются летом и промерзают до дна зимой.
Большей чaстью держится у дна. Хорошо переносит промерзание
и временное перeсыхание водоемов, зарываясь глубоко в ил.
Питается личинками хирономид (мотыль) и других насекомых,
мелкими моллюсками, червями, водорослями, детритом. При
неблагоприятных
условиях
чaсто
мельчает,
вырождается,
образуя низкорослую карликовую форму.
Половозрелость
у
карася
жизни. Нерест порционный,
наступает
начинается
в
на
4-5-м
году
мае-июне
при
температуре воды не ниже 17-18° С, икрометание в 3-4 приема с
перерывами
в
10
дней. Плодoвитость у
карася
высокая,
составляет 137-300 тыс. икринок. Икра светло-желтого цвета,
приклеивается
на
водную
растительность. Инкубационный
период длится около 6 суток. Личинки при вылуплении имеют
длину 6 мм, сначала подвешиваются к водным растениям, а
после 2 суток переходят в пелагиаль и начинают питаться
зоопланктоном.
Карась – широко распространенный вид – в Европе он
встречается от Великобритании и Скандинавии на севере до
Македонии и Северной Италии на юге. В рeках бассейна
Северного Ледовитого океана (до 68° с.ш.) распространен от
Северной Двины и Печоры на восток до Индигирки, Колымы и
озер верховьев р. Урак (Охотское море). На юге России есть в
Западном Закавказье, Куме, Тереке, низовьях Волги, встречается
в Урале и Эмбе.
30
Рис.1. Распространение Карася серебряного
Семейство
данных
рыб
остается
актуальной
добычей
любителей спортивной рыбалки. Карась часто целенаправленно
разводится как товарная рыба в искусственных условиях рыбных
хозяйств. Являясь всеядным и совершенно нетребовательным к
условиям обитания, карась эффективен в производстве и не
создает лишних хлопот, но на продовольственном рынке он
ценится не очень высоко. Карась серебряный относится к
промысловым видам и является объектом прудового хозяйства.
Осoбенно много крупного карася добывают в озерах Якутии.
Максимальный вылов карася в Якутии был в военные годы (19421945), когда ежегодно добывали 1125-1869 т; в 1960-е годы вылов
был 720-1150 т.
31
Эмпирическая часть
Глава 2. Материалы и методы исследования
2.1.Характеристика района исследования
Отлов материала производился в 2019 году в реке Кострома.
Всего исследовано 40 особей карася серебряного (Carassius
gibelio). При сборе ихтиологического материала применяли
сетный способ (ячейки сетки размером 0,6 см), поплавочная
оснастка.
Кострома — река в Европейской части России, протекает
по Чухломскому, Солигаличскому, Буйскому и Костромскому рай
онам Костромс-кой области, частью на границе с Любимским
районом,
Ярославской
области.
Исторически
левый
приток Волги (устье в городе Кострома). Длина реки - 354 км,
площадь бассейна 16 000 км². Река Кострома берет начало
на Галичской
возвышенности,
села Княжево
Чухломского
в Костромском
района Костромской
болоте у
области,
протекает, сильно петляя, по заболоченной низменности. В
верховьях река относительно узкая и извилистая, но быстро
собирая воду многочисленных притоков, увеличивается в ширине
до 30—40 м. В верхнем и среднем течениях в русле реки
встречаются перекаты. Берега реки лесисты, иногда обрывисты.
У города Буй ширина реки превышает 60 м, река становится
судоходной,
течение
излучины,
начинает
пропадает,
разливы,
водохранилище
сказываться
река
начинает
старицы
основного
подпор
русла
образовывать
вплоть
и
водохранилища,
до
большие
впадения
протоки Глушица.
в
На
протяжении последних 50 км по реке проходит граница между
32
Ярославской
и
Костромской
областями.
Река
Кострома
использовалась ранее для лесосплава, судоходна в нижнем и
среднем течении — до посёлка Малавино в 122 км от устья (ниже
города Буй).
Питание
реки
смешанное,
с
преобладанием
снегового,
средний расход воды у города Буй (124 км от устья) 71 м³/с,
наибольший — 1620 м³/с. Ледостав продолжается с ноября по
апрель — начало мая, ледоход длится около трёх дней, половодье
в апреле — июне, за 53 дня проходит 63 % годового стока.
Рис.2. Месторасположение участков исследования
На рисунке отмечены места лова для исследования: 1- озеро Каменик;
2-участок реки Кострома, п.Прибрежный; 3-участок реки Кострома,
с.Яковлевское.
2.2. Методы обработки материала
Камеральная обработка данных проводилась в лаборатории
гидробиологии и ихтиологии Костромского Государственного
Университета. Изъятая рыба была обработана по методике Н.Б.
Чернышевой (2009). Сначала осматривали ткани или органы,
33
обращая внимание на их цвет, размер, форму, консистенцию и
наличие
патологических
невооруженным
глазом
признаков,
паразитов.
снимая
Затем
видимых
ткани
и
органы
исследуют компрессионным методом под микроскопом МБС. Для
этого ткань или орган переносили на стекло 9 x 12 см, разделив
на небольшие кусочки, продавливая предметным стеклом.
Предметное стекло удобнее держать так, чтобы 1/3 или 1/4
стекла выступала за пределы большого стекла, как рукоятка, с
помощью которой его легче сдвигать при нахождении паразита.
После этого небольшой кусок продавленной ткани переносится на
предметное стекло, накрывается покровным и просматривается
под микроскопом при малом (10 х 20) и большом (10 х 40)
увеличениях.
2.2.1. Порядок исследования
1.Полное паразитологическое исследование рыб проводят в
следующем порядке: кровь, кожа, плавники, носовая и ротовая
полости, жабры, желчный и мочевой пузыри, брюшная полость,
почки,
сердце,
пищеварительный
тракт,
печень,
селезенка,
гонады, головной и спинной мозг, хрящи, мышцы, глаза.
2.
Для
внешнего
осмотра
рыбу
кладут
в
кювету.
С
поверхности тела снимают видимых простым глазом пиявок,
рачков, глохидий. Чёрные пятна на теле карповых рыб могут
заключать
в
себе
цисты
с
личинками
сосальщика
Posthodiplostomum cuticula. В толще чешуи и на плавниках рыб
паразитируют метацеркарии Metagonimus yokogawai. В чешуйных
кармашках
карпов
Philometroides
всех
lusiana.
возрастов
Необходимо
паразитирует
отмечать
все
нематода
найденные
патологические признаки (повреждения, язвы, опухоли, пятна,
налёт, сильное ослизнение, отсутствие слизи на коже рыбы и т.д.).
34
3.
Для
обнаружения
кровепаразитов
кровь
берут
пастеровской пипеткой из сердца, жаберной или хвостовой
артерии и делают мазки (Крылов, 1974). Для предотвращения
свёртывания крови и закупорки её в тонкой части пипетки,
пипетку необходимо промывать лимоннокислым натрием. Мазок
делают тонким шлифованным стеклом. Для этого на край
обезжиренного
стекла
наносят
каплю крови.
Шлифованным
стеклом касаются капли, которая растекается вдоль края стекла.
После этого медленно продвигаем стеклом каплю к другому краю
стекла, для того чтобы элементы крови растеклись в один слой.
Препарат подсушивают, фиксируют, с этикеткой хранят сухими до
окрашивания. В крови рыб могут паразитировать простейшие
(жгутиконосцы родов Trypanosoma и Cryptobia, вегетативные
стадии миксоспоридий) и грегарины.
4.
Подсчет
гельминтов,
количества
глохидий,
цисты
крупных
паразитов
миксоспоридий)
(рачков,
проводят
в
абсолютных числах, а мелких (инфузорий и других простейших) –в
относительных. Количество паразитов подсчитывают в десяти
полях
зрения
микроскопа,
определяют
средний
показатель,
высчитывают экстенсивность и интенсивность инвазии, индекс
обилия по каждому паразиту в отдельности для каждого вида и
возраста рыб.
5. Обнаруженных паразитов фиксируют, этикетируют и
сохраняют для дальнейшей камеральной обработки
2.2.2. Исследование кожного покрова рыб, плавников,
носовой и ротовой полостей
1. При наружном осмотре кожного покрова и плавников рыб
собирают,
паразитов,
предварительно
видимых
определяют
невооружённым
и
фиксируют
глазом
всех
(цисты
35
миксоспоридий,
микроспоридий,
глохидии,
паразитические
ракообразные, пиявки и др.). Затем делают соскоб с поверхности
тела, помещают его на предметное стекло, добавляют в него воду,
накрывают
покровным
стеклом
и
просматривают
под
микроскопом МБС, при малом (видны триходины, хилодонеллы,
апиозомы, ихтиофтириусы, моногенеи и др.), и большом (видны
костии, жгутиконосцы, споры миксоспоридий и др.) увеличениях.
У молоди рыб первого года жизни мазок слизи берут со всей
поверхности тела, у годовиков и старше – с нескольких участков
тела.
2. Плавники отрезают, кладут на стекло в капле воды и
просматривают под микроскопом МБС, растягивая иголками.
Между лучами могут быть цисты миксоспоридий, цисты Dermocys
tidium, метацеркарии трематод, паразитические раки, глохидии.
Далее делают соскоб и просматривают его под микроскопом при
малом и большом увеличениях (видны простейшие).
3.
В
носовой
полости
рыб
возможно
нахождение
паразитических простейших, рачков Paraer gasilusrylovi, мелких
моногеней. В носовые ямки крупных рыб пипеткой впрыскивают
воду, оттягивая обратно с водой слизь с паразитами. У молоди рыб
носовые ямки малы и труднодоступны. С.С. Юхименко (1972)
предложил следующий метод исследования носовых полостей
мелких
рыб.
Следует
под
контролем
микроскопа
МБС,
придерживая голову рыбы, препаровальной иголкой разорвать
носовую перегородку и сделать несколько круговых движений
внутри полости, подрезая и наматывая слизь на иглу. Комочки
слизи исследуют на предметном стекле в капле воды.
4.
В
ротовой
полости
можно
обнаружить
трематод
(Azygialuсia при гибели щуки выходит из кишечника в ротовую
полость), рачков, пиявок, моногеней, метацеркарий трематод и
36
простейших. Для нахождения последних необходимо сделать
мазок и просмотреть его под микроскопом при малом и большом
увеличении.
2.2.3. Исследование жабр
1.Вырезают
жаберную
крышку
и
просматривают
её
с
внутренней стороны, где могут находиться нематоды, моногении,
рачки.
2. Жаберные дуги вырезают, помещают в чашку Петри по
порядку, так как на разных жаберных дугах количество паразитов
различно. Собирают видимых паразитов, их подсчитывают и
фиксируют.
Затем
препаровальными
иглами
перебирают
жаберные лепестки под микроскопом МБС для нахождения
моногеней, цист миксоспоридий, цист дермоцистидиум, личинок
трематод, рачков и др. паразитов. После этого делают соскоб с
жаберных
накрывают
лепестков
его
микроскопом
на
предметное
покровным
при
малом
стеклом
и
стекло
и
большом
в
капле
воды,
просматривают
увеличениях
под
(видны
простейшие, споры миксоспоридий, микроспоридии.
Рис.3. Микроскопирование жабр
Экстенсивность инвазии (Е) рассчитывается по формуле:
Е = n/Nх100%, где
n - число зараженных особей хозяев;
37
N - число исследованных особей хозяев.
Интенсивность инвазии - среднее число гельминтов,
рассчитанное на одну особь зараженного хозяина (I) определяли
по формуле:
I=m/ n, где
m - число обнаруженных гельминтов;
n - число зараженных особей хозяев.
Индекс обилия (М) - среднее число особей данного вида
паразита (или группы видов), приходящееся на единицу учета.
M = m/N, где
m - число обнаруженных гельминтов;
N - число исследованных особей хозяев.
2.2.4. Методы фиксации паразитов
1. Мазки крови фиксируют в стаканчике с метанолом или
смесью спирта и эфира (разведение 1:1) в течение 2-3 минут,
подсушивают на воздухе, этикетируют и хранят в сухом виде,
завернув в бумагу.
2.
Простейших
(инфузорий
родов
Apiosoma,
Scyphydia,
Capriniana, Chillodonella и др.) фиксируют в жидкости Шаудина.
Слизь
с
содержащимися
размазывают
по
в
ней
покровному
паразитами
стеклу,
тонким
прикрепляют
слоем
его
к
расщеплённой спичке и подсушивают до стадии, когда жидкость
не стекает, но мазок ещё влажный. Затем стекло опускают
мазком вниз в бюкс с жидкостью Шаудина на 10 минут. Затем
мазок промывают 70˚ спиртом и переносят на 3- 5 минут в
раствор йода в 70˚ спирте, разведённым до цвета крепкого чая,
для удаления сулемы, входящей в состав фиксатора. После этого
мазок
промывают
70°
спиртом
–5-10
минут
для
удаления
38
остатков йода. Мазки хранят в стаканчике с 70˚ спиртом до
окрашивания.
3. Простейших класса жгутиконосцы фиксировать в смеси
растворов Шаудина с ледяной уксусной кислотой. В 20 мл
жидкости Шаудина капают 1 капля кислоты (непосредственно
перед употреблением), слегка нагревают смесь до появления
паров. Влажный мазок опускают в часовое стекло с подогретой
смесью на 2-5 минут. Далее промывают в 70˚ спирте две минуты,
затем переносят в смесь йод с 70˚ спиртом на две минуты и
споласкивают 70° спиртом. Хранить в стаканчике со спиртом.
4. Триходин оставляют на покровном стекле до подсыхания
слизи,
в
которой
были
найдены
паразиты.
Затем
стекла
переносят в сухую склянку или коробочку, накрывают этикеткой
и хранят до последующей окраски. На дно стаканчика кладут
чистую бумагу, на неё складывают стекло мазком вниз и сверху
кладут этикетку.
5. При обнаружении спор миксоспоридий на предметное
стекло капают жидкий желатин-глицерин и накрывают каплю
покровным стеклом. Если спор много (раздавлена крупная
циста), то можно сделать несколько препаратов. Для этого нужно
снять покровное стекло, капнуть на предметное стекло каплю
смеси желатин-глицерин и накрыть чистым покровным стеклом.
А из покровного стекла со спорами сделать второй препарат (на
чистое предметное стекло, капнуть желатин-глицерин и накрыть
покровным стеклом). Это необходимо для того, чтобы лежали в
один слой.
6.
Кокцидий
фиксируют
методом,
предложенным
Мольнаром (Molnar, 1977). Мазок слизи на предметном стекле
накрывают покровным стеклом, добавляют под него несколько
капель 4 % формальдегида или 2,5 % глютаральдегида и
39
обмазывают
канадским
бальзамом
покровное
стекло
по
периметру. Размер и структура ооцист сохраняется от 4 недель
до 1 года.
7.
Моногеней
(рода
Dactylogirus,
Gyrodactylus
и
др.)
фиксируют в жидком желатин-глицерине (Гусев, 1978, 1983). Для
этого следует положить 2-3 червя с каплей воды на предметное
стекло. Для распрямления живых червей можно добавить каплю
0,5 –1,0 % раствора аммиака или слегка подогреть стекло,
проводя им над пламенем спиртовки до момента вытягивания
червей; отсосать избыток воды, дать подсохнуть, и только после
этого капнуть жидкий желатин-глицерин и накрыть покровным
стеклом. Покровные стёкла должны быть обезжиренными и
тонкими. Класть стекло нужно выпуклой стороной вниз, иначе
при положении вогнутой стороны образуется пузырёк, и слой
желатин-глицерина будет толстым. Глядя в бинокуляр, надавить
иглой на покровное стекло, пока хитиновые образования червей
не станут хорошо видными. Далее следует проверить (под
большим увеличением микроскопа) достаточно ли сплющены
черви, если недостаточно, то, подогрев препарат снизу, нужно
снова надавить иглой покровное стекло над объектами. Для
длительного хранения препараты следует обмазать по краю
покровного стекла горячей смесью воска с канифолью, контроль
работы следует вести под микроскопом МБС.
Для изготовления временных препаратов предложен другой
метод фиксации моногеней (Ergens, 1969). Заранее готовится
смесь пикрат аммония, который капают под покровное стекло
моногенеями. Но следует помнить, что пикрат аммония сохнет
быстрее, желатин-глицерин и если ставить препараты на ребро,
то реактив может вытечь.
40
Моногеней
рода
Diplozoon
фиксируют
методом,
предложенным Хотеновским (1974). Для этого червей кладут на
предметное стекло в капле воды, подогревают, накрывают
покровным стеклом. Затем покровное стекло снимают, на него
переносят червя, избыток воды удаляют. Стекло с паразитом
опускают на предметное стекло с каплей фиксатора Ван-Клива
на 20-30 мин в чашку Петри. Фиксатор добавляют по мере
испарения. Затем паразит переводится в пробирку с 70˚ спиртом
до изготовления препарата. Также для определения паразита до
вида перед фиксацией у червя необходимо отрезать задний отдел
тела, положить его на предметное стекло, капнуть жидкий
желатин-глицерин и накрыть покровным стеклом так, чтобы
были хорошо видны все крючки.
8. Трематод отмывают от слизи, кладут на предметное
стекло, накрывают покровным стеклом и пипеткой подливают
70˚ спирт с одной стороны стекла, а с другой - оттягивают воду
фильтровальной бумагой до тех пор, пока препарат полностью не
заполнится
спиртом.
Фиксация
закончена,
если
гельминт
потерял прозрачность. Затем аккуратно снимают покровное
стекло, и червей переносят в пробирку с этикеткой, заполненной
70˚
спиртом.
Для
фиксации
трематод
можно
использовать
реактив Ван-Клива, который готовится заранее. Предметные
стёкла с паразитами в чашке Петри заливают реактивом.
Фиксация
считается
законченной,
когда
черви
станут
непрозрачными. Затем паразитов переносят в пробирку с 70˚
спиртом.
Метацеркарий
мелких
трематод
(рода
Diplostomum,
Cotylurus, Paracino gonimus и др.) фиксируют и окрашивают
одновременно. Фиксацию и окраску метацеркарий проводят
уксуснокислым кармином путем окраски живых метацеркарий в
41
минимальном
количестве
воды
пробирке
объёмом
4-5
мл.
Соотношение объема краски и воды в пробирке должно быть не
менее 10:1. Все последующие манипуляции с трематодами
осуществляют в той же пробирке путем смены реактивов тонкой
пипеткой. Через 15-20 минут краску сливают, заменив таким же
объёмом 1% раствором соляной кислоты в 70º этиловом спирте
на
5-10
минут.
На
этой
стадии
работы
можно
хранить
метацеркарии трематод для дальнейшей камеральной обработки.
9. Ленточных червей фиксируют также как трематод, кроме
того, что стекла, на которых проводится фиксация 70˚ спиртом,
должны быть толще, а время фиксации больше. Если черви
крупные, то на стекло, следует ставить грузик для большего
уплощения червя.
10. Нематод фиксируют горячим 70˚ спиртом в длинной
пробирке.
При
этом
пробирку
следует
держать
пинцетом
отверстием от себя. После фиксации нематод хранят в пробирке
с 70˚ спиртом и этикеткой. Круглых червей можно фиксировать и
хранить в жидкости Барбагалло.
11. Скребней, ракообразных, глохидий и пиявок фиксируют
70˚ спиртом или 4 % раствором формальдегида в небольшой
пробирке, где они в последующем хранятся с этикеткой. Перед
фиксацией скребней нужно отмыть от слизи и продавить между
стёклами так, чтобы их хоботок вывернулся наружу. Фиксируют
между стёкол до потемнения скребня. Для большего уплощения
червя на стекло ставят грузики.
42
ГЛАВА 3. Собственные исследования
3.1. Оценка зараженности Карася серебряного некоторых
водоемов Костромской области
Рыб,
не
имеющих
паразитов,
практически
нет.
Часто
пресноводная рыба заражена различными видами паразитов.
Карась
-
не
исключение.
Поскольку
паразиты
являются
естественной составной частью биоценоза, отражая процессы на
разных
уровнях
экосистем,
необходима
оценка
структуры,
разнообразия и особенностей функционирования паразитарных
сообществ. Паразиты портят товарный вид рыбы, а также
некоторые виды могут представлять опасность для здоровья
человека и животных.
Таблица 1
Характеристика морфометрических показателей Карася
серебряного
Показатель
оз. Каменик
2016-2017г
Длина тела,
X̅+Sх
25,9 +
см
Длина тела
0,6
20,4 +
до хвоста,
оз. Каменик
2018-2019
X̅+Sх Cv,%
25,4
2,8
Cv, %
5,1
+0,6
18,7+0,5
3,5
4,3
0,5
р. Кострома
участок п.
Прибрежный
X̅+Sх
Cv, %
15,11+0, 4,8
р. Кострома
участок с.
Яковлевское
X̅+Sх Cv, %
17,4
6,4
8
+0,7
15,04+3, 10,6 14,1+0,7
8,7
7
см
Длина
5,3 +0,1
9,6
5,08+0,1
9,4
3,4+0,2
15,0
2,6+0,1
20,7
головы, см
Масса, г
369+9,2
14,4
361+9
9,0
157+7,8
15,2
138+6,4
6,7
В ходе исследования было выявлено, что караси в выборках
озера Каменик более упитанные и имеют больше размеры с
массой тела в среднем 360 – 370 г, и длиной тела - 25 см. Масса
тела карасей в р. Кострома в среднем составила 140-160 г при
длине
тела
15
–
17
см.
Это
свидетельствует
о
более
43
благоприятных условиях в озере и хорошей кормовой базе, что
позволяет особям быстро расти и набирать массу.
44
Таблица 2
Зараженность Карася серебряного реки Кострома
№
Название вида
Место отлова
Пол
Возра
Налич
ст
ие
парази
та
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
1. Участок реки Кострома (п. Прибрежный)
Карась
река Кострома
2
♂
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♂
серебряный
Карась
река Кострома
3
♂
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♂
серебряный
Карась
река Кострома
1
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
1
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
45
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
1
♀
серебряный
2. Участок реки Кострома (с. Яковлевское)
Карась
река Кострома
1
♀
серебряный
Карась
река Кострома
1
♀
серебряный
Карась
река Кострома
1
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
1
♀
серебряный
Карась
река Кострома
1
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
Карась
река Кострома
2
♀
серебряный
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
46
40
Карась
серебряный
река Кострома
♀
2
+
В выборке участка п. Прибрежный лишь у трех особей из
двадцати не было обнаружено паразитов, из которых все трое
являются двухлетними самцами, а на участке с. Яковлевское все
особи заражены. На участке п. Прибрежный выборка состоит из
16 самок и 4 самцов. В возрастной структуре преобладали
двухлетие особи (80% от всей выборки), 3 особи являются
однолетними и одна особь трехлетнего возраста. На участке с
Яковлевское в выборке присутствовали только самки, среди
которых 75% составили двулетние особи и 25% - однолетние.
47
Для
оценки
эпизоотического
состояния
водоема
необходимы знания общих закономерностей существования
паразитических
хозяевами,
а
организмов,
также
их
факторами
взаимоотношений
окружающей
с
среды.
Экологическое благополучие в водоемах можно определять
по видовому составу паразитов и их численности у рыб. При
неблагоприятных
условиях,
например,
при
увеличении
количества органического вещества в воде в период нереста
и последующей гибели рыб, может происходить увеличение
численности
некоторых
видов
простейших
организмов,
которые впоследствии заражают молодь этих рыб. Также
важно знать, какие паразиты опасны только для рыбы, а
какие опасны и для человека.
Таблица 3
Видовой состав эктопаразитов Карася серебряного р.
Кострома
Виды эктопаразитов
Тип Euglenozoa
Trypanosoma percae
Trypanosoma carassii
Тип Myxozoa
Myxosoma dujardini
Myxobolus cyprinid
Myxobolus carassii
Тип Arthropoda
Argulus foliaceus
Тип Mastigophora
Costia necatrix
Тип Platyhelminthes
Dactylogyrus anchoratus
Dactylogyrus сrassus
Количество паразитов
п. Прибрежный с. Яковлевское
Особей
%
Особей
%
47
12
36%
9%
42
6
31
4
6
8
5
4%
6%
4%
10
16
7
7
12
5
5
4%
4
3
5
4%
35
26
23
21
17%
16%
13
3
10
2
В результате наших исследований обнаружено 9 видов
паразитов,
относящихся
паразитических
к
5
организмов
типам.
Разнообразие
определилось
комплексом
сложившихся биологических взаимоотношений в экосистеме
реки
Кострома.
Кроме
того,
на
видовое
разнообразие
паразитов влияет сезон лова, т.к. активность и жизненные
циклы разных видов паразитов могут смещаться. Наши
исследования проводились в осенне-зимний период, видовой
спектр паразитов характерен для данного периода.
Из литературных источников известно, что многим
инвазионным
пресноводных
болезням
рыб
рыб
характерна
сезонность.
богатая
разнообразная
наиболее
и
У
паразитофауна наблюдается в основном весной и летом.
Повышение температуры воды в это время способствует
размножению
многих
паразитических
простейших,
ракообразных, а также промежуточных хозяев гельминтов
(циклопов, моллюсков и др.). Поэтому в весенне-летний
период происходит не только усиленное заражение, но и
вспышки таких летних болезней, как крустацеозы (аргулез),
цестодозы (кавиоз, карио-филез, ботриоцефалез). Весенние
вспышки протозойных болезней (ихтиофтириоза, костиоза),
моногеноидозов часто связаны с температурой, недостатком
кормов,
низкой
резистентностью
организма
и
другими
факторами.
В зимнее время наиболее опасны протозойные болезни
—
хилодонеллез,
триходиноз,
апиозомоз,
возбудители
которых способны размножаться при низких температурах.
49
Рис 4. Процентное соотношение видов паразитов Карася
серебряного (участок с.Яковлевское)
Видовой
участке
спектр
паразитов
р.Кострома
карася
серебряного
(с.Яковлевское)
на
достаточно
разнообразно. Нами были обнаружены две группы паразитов–
эндопаразиты,
представлены
двумя
трипанасомами-
Trypanosoma carassii и Trypanosoma percae, доля которых
составляет
31%
от
всего
количества
паразитов.
Все
остальные организмы принадлежат к группе эктопаразиты и
среди
них
чаще
всех
встречается
Costiane
catrix,
представитель типа Mastigophora, наименьшая встречаемость
отмечена у Argulus foliaceus.
50
Рис 5. Процентное соотношение видов паразитов Карася
серебряного (участок п Прибрежный)
При изучении обилия паразитов, нами установлено, что
наиболее
распространенным
были
представители
типа
Euglenozoa, среди которых 36 % приходилось на Trypanosoma
percae
и
Trypanosoma
carassii,
а
наименьший
процент
встречаемости был у типа Arthropoda (Argulus foliaceus), типа
Mastigophora (Costiane catrix) и типа Myxozoa (Myxosoma
dujardini и Myxobolus cyprinid) - по 4% на каждый вид.
Паразитофауна зависит от многих факторов, в том числе
величины и характера водоема. Интенсивность заражения
рыб в водоемах с медленным течением и стоячих выше, чем в
реке, хотя разнообразие паразитов в реке, как правило,
выше. В озерах накопление паразитов и инвазионных стадий
происходит быстрее, из-за малой проточности и большого
числа хозяев, на которых, они могут обитать. В стоячих
водоемах особенно быстро происходит накопление паразитов
с
прямым
циклом
развития,
таких,
как
ихтиофтириус,
хилодонелла, лернея. Характерными паразитами для речных
экосистем являются скребни, некоторые ленточные черви и
51
нематоды, а также может быть высокая численность таких
паразитов, как рачки, моногенеи, трематоды, цестоды.
Озеро
Каменик
находится
в
районе
Костромских
разливов Горьковского водохранилища и отдалено о них
дамбой.
Проточность
в
озере
невысокая,
течение
практически отсутствует, грунты — илистые и торфяные.
Река Кострома имеет достаточно быстрое течение, собирая
воду из многочисленных притоков, в верхнем и среднем
течении реки встречаются перекаты.
Таблица 3
Сравнительная таблица видового состава
Видовое название
паразита
Piscicola geometra
Argulus foliaceus
Dactylogyrus
сrassus
Trypanosoma
carassii
Myxobolus carasii
Trypanosoma percae
Costiane catrix
Myxosoma dujardini
Myxobolus cyprinid
Dactylogyrus
anchoratus
паразитов
Водоем
Оз.Камен
ик
(20162017)
Оз.
Каменик
(20182019)
р Кострома
участок п.
Прибрежн
ый
(20182019)
р
Кострома
участок с.
Яковлевск
ое
(20182019)
17
5
4
13
2
3
5
21
12
4
3
12
2
12
6
5
45
12
16
2
23
38
5
11
5
47
5
6
8
23
7
42
35
10
16
13
Видовой состав паразитов в течение всего периода
исследования
незначительно
остается
отличаясь
практически
по
водоемам.
постоянным,
За
весь
период
исследования были выявлены следующие классы: поясковые
52
черви (Clitellata), ракообразные (Crustacea) 20%, моногенеи
(Monogenea), жгутиконосцы (Mastigophora), микроспоридии
(Microsporidia). Установлено, что на озере Каменик из 40
особей выборки, заражено паразитами 36 особей, у 17 были
обнаружены
эктопаразиты.
зависит
возраста.
от
Увеличение
Среди
зараженности
зараженных
паразитами
преобладали молодые особи [табл.1 Прил.]. Преобладающий
вид паразитов в оз. Каменик в 2016-2017 г. –Trypanosoma
schulmani, в 2018-2019г. – Costiane catrix. В участках реки
Кострома в период 2018-2019 г.г. зараженными были все
отловленные
особи
паразитов
реке
в
карася.
являются
Преобладающими
Costiane
catrix
у
видами
поселка
Прибрежного и Trypanosoma schulmani у села Яковлевское.
3.2. Видовой состав паразитов
Для
оценки
эпизоотического
состояния
водоема
необходимы знания общих закономерностей существования
паразитических организмов, взаимоотношений между ними и
их
хозяевами,
а
также
факторами
окружающей
среды.
Экологическое благополучие в водоемах можно определять
по видовому составу паразитов и их численности у рыб. При
неблагоприятных
условиях,
например,
при
увеличении
количества органического вещества в воде в период нереста
и последующей гибели рыб, может происходить увеличение
численности
некоторых
видов
простейших
организмов,
которые впоследствии заражают молодь этих рыб, живущую в
том же водоеме.
53
Нами были детально изучены паразиты, обнаруженные в
исследованиях.
Рис.6. Trypanosoma percae
Trypanosoma percae является опасным паразитом не
только рыбы, но и человека. Нами паразит был обнаружен в
крови жабр, обычно его можно встретить во всем кровяном
русле. Заболеть рыба может через кровососущих пиявок,
которые
организм
являются
человека
эктопаразитами.
паразит
При
может
попадании
в
спровоцировать
различные виды трипаносомоза.
54
Рис.7. Сostia necatrix
Сostianecatrix опасный паразит различных видов рыб,
особенно мальков, вызывает тяжелое заболевание - костиоз.
Нами обнаружен в коже и жабрах рыбы, которые являются
органом локализации паразита. У зараженной рыбы на теле
появляются тусклые пятна, которые если не проводить
никаких действий по лечению, увеличиваются в размерах. Со
временем все тело рыбы приобретает серо-голубой цвет.
Прогрессирующая
болезнь
очень
сильно
раздражает
слизистую оболочку тела и жабр рыбы и со временем
приводит к их разрушению. В целом болезнь продолжается
около недели.
Рис.8. Myxosoma dujardini
Опасный
имеет
паразит
широкое
преимущественно
распространение.
карповых
Сильно
рыб
поражаются
мальки. Нами был обнаружен в жабрах, которые являются
органами локализации паразита. Патогенное воздействие
паразита выражается в разрушении хрящевых частей скелета
и органа равновесия, что приводит к нарушению нормального
движения
рыбы
искривлению
и
образованию
позвоночника,
различных
недоразвитию
уродств:
жаберных
крышек, челюстей и т. п.
55
Рис.9. Myxobolus cyprinidае
Являются
локализации
опасным
паразита
паразитом
является
все
рыб.
тело
и
Органом
некоторые
внутренние органы, нами был обнаружен в жабрах. Является
возбудителем злокачественной миксоспоридиозной анемии.
При поражении жабр наблюдается неравномерное мозаичное
окрашивание жаберных лепестков. В крови больных рыб
уменьшается содержание эритроцитов и гемоглобина. Стадия
выхода созревших спор из цист сопровождается массовой
гибелью молоди, гибели рыбы старших возрастных групп не
отмечено,
однако
они
могут
быть
переносчиками
заболевания.
56
Рис.10. Argulus foliaceus
Является
паразитом
рыб,
для
человека
неопасна,
погибает при термической обработке. Нами обнаружен на
коже
и
жабрах
рыбы,
которые
являются
органом
локализации паразита. На теле рыбы вошь напоминает
желто-зеленый склизкий нарост с двумя глазками и заметной
линией
по
центру.
Размер
варьируется
от
нескольких
миллиметров до 3 см. Легко плавает и присасывается к
носителю мощными присосками, питаются слизью, кровью,
выделениями и частичками кожи рыбы.
Рис.11. Dactylogyrus anchoratus
Дактилогирусы опасные и широко распространенные
паразиты карповых. Нами был обнаружен на жабрах и на
теле
рыбы,
что
является
их
привычными
органами
локализации.
При
дактилогирозе
происходит
травматизация
и
разрушение жаберных лепестков, чрезмерное разрастание
жаберного эпителия, сращивание дыхательных складочек,
повышенное
омыванию
слизи
отделение.
жаберных
дыхательную
функцию
Все
лепестков
жаберного
это
водой,
препятствует
что
аппарата.
нарушает
Даже
при
незначительной инвазии у рыбы развивается анемия жабр,
57
они становятся бледно-розового цвета, циркуляция крови
через них нарушается.
Рис. 12. Piscicola geometra
Нами обнаружена на поверхности тела и на жабрах рыб.
Для
человека
совершенно
безвредна.
Паразитирует
на
разных видах рыб, особенно на карповых. На теле одной рыбы
может быть несколько десятков и даже больше сотни пиявок.
Большое количество пиявок на теле рыбы может привести к
большим кровопотерям и как следствие – кислородному
голоданию. Кроме того, пиявки могут занести инфекцию
непосредственно
в
кровоток
или
через
открытую
кровоточащую рану.
3.3.Количественная оценка зараженности рыб
паразитами
Для количественной оценки степени заражения рыб
паразитами применяют такие показатели, как интенсивность
и экстенсивность инвазии, а также индекс обилия паразитов.
Под
интенсивностью
содержание
инвазии
возбудителей
понимают
на одном
количественное
экземпляре рыб,
а
58
экстенсивность — это процентное соотношение зараженных
рыб в стаде, популяции и т. д. Индекс обилия паразитов
рассчитывают путем деления суммы найденных паразитов на
число исследованных рыб. Он более достоверно отражает
интенсивность инвазии в стаде или популяции рыб.
Восприимчивость рыб к инвазионным болезням зависит
также от физиологического состояния организма: возраста,
упитанности,
массы,
а
также
общей
резистентности
организма рыб и др.
В озере Каменик за период исследования отмечена
тенденция уменьшения количества паразитов на одну особь,
а экстенсивность инвазии увеличилась практически в два
раза. Показатель индекса обилия за исследуемый период
времени
увеличился
на
29,7%.
Таким
образом,
за
исследуемый период эпизоологическая ситуация в озере
ухудшилась,
следовательно,
мы
можем
говорить
и
об
ухудшении экологической обстановки.
59
Таблица 4
Сравнительная характеристика индексов зараженности
на исследуемых участках (%)
Водоем
Оз.
ПОКАЗАТЕЛ Оз.Каменик
(2016-2017 Каменик
И
Индекс
обилия
Экстенсивно
сть инвазии
Интенсивнос
ть инвазии
Исследуемые
р Кострома
р Кострома
(п.
(с.Яковлевс
Прибрежный)
кое)
гг)
(20182019)
37
48
58
49
42,5
90
100
85
86
54
58
58
участки
реки
Костромы
относятся
к
акваториям с большей антропогенной нагрузкой, т.к. вблизи
находятся населенные пункты, расположенные сравнительно
близко
друг
паразитами
от
в
друга.
реке
Уровень
несколько
зараженности
выше,
чем
в
карася
озере.
Интенсивность инвазии на обоих участках р. Костромы
одинакова составила 58%, а процент зараженных паразитами
рыб от общего их количества в выборке на исследуемых
участках различался: участок п. Прибрежный имеет 100%
экстенсивность инвазии, на участке с.Яковлевского-85%. Это
объясняется большей антропогенной нагрузкой на участки
водоема и их чистоту. Индекс обилия паразитов в р. Кострома
составил 58% (п. Прибрежный) и 49% (с. Яковлевское). Таким
образом,
эпизоотическая
ситуация
на
р.
Кострома
напряжённая и нуждается в дальнейшем мониторинге.
60
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
На основании проведенных исследований можно сделать
следующие выводы:
1. В результате гельминтологического исследования в р.
Кострома
было
обнаружено
9
видов
паразитов,
относящихся к 5 типам. Среди эндопаразитов самым
распространённым
была
Trypanosoma
percae
(тип
Euglenozoa), среди эктопаразитов чаще всех встречается
Costiane catrix (тип Mastigophora).
2. Зараженность в оз. Каменик за период 2016-2017 г.
составила 42,5 %, а в 2018-2019 году - 92,5% всей
выборки. Зараженность р. Кострома на участке п.
Прибрежный составила 85% от всей выборки, а на
участке с. Яковлевское - 100%.
3. В озере Каменик за период исследования установлено,
что
интенсивность
инвазии
снизилась
на
32
%
и
составила 54%, экстенсивность инвазии увеличилась в
2,1 раза, индекс обилия вырос на 11 %. Интенсивность
инвазии на обоих участках р. Костромы составила 58%,
экстенсивность инвазии на участке п. Прибрежный 100% на участке с. Яковлевского - 85%, индекс обилия
на участках составил - 49% и 58% соответственно.
4. Преобладающим видом паразитов оз. Каменик в 20162017 г. является Trypanosoma percae - 38%, а в 20182019 году – Costia necatrix - 39% от всего количества
паразитов. Преобладающими видами паразитов в реке
Кострома на обоих участках является
Trypanosoma
percae 36% (п. Прибрежный) и 31% (с. Яковлевское).
61
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Ахмеров А.Х., Паразитофауна карповых рыб в прудовых
хозяйствах
Латв.
ССР.
Вопросы
животноводства
и
ветеринарии. / Грапмане Л.К., 1954. Труды АН ЛССР. 3. Рига:
24-31.
2.
Бауер
О.Н.
Взаимоотношения
между
паразитами
и
хозяевами (рыбами) Основные проблемы паразитологии рыб.
Ленинград: 90-108. Бауер О.Н. 1958. Рыбы как источник
гельминтозов человека. Основные проблемы паразитологии
рыб. /1958. Ленинград: 321-341.
3.
Богданова
Е.К.
токсикологической
пособие.
Паразиты
ситуации
ГосНИОРХ:
21
в
с.
как
биоиндикаторы
водоеме.
Методическое
Быховский
Б.Е.
/
1957.
Моногенитические сосальщики их систематика и филогения.
1993. М: 509 с.
4. Быховская-Павловская И.Е. Паразиты рыб. Руководство по
изучению. / 1985. Ленинград: 120 с.
5. Гончарова И .Я. Проблемы современной паразитологии. /
Санкт-Петербург:
128-129..
1981.
/
Паразитические
простейшие пресноводных рыб Латвийской ССР.
6. Гусев А.В. Методика сбора и обработки материалов по
моногенеям,паразитирующим
у
рыб.
АН
СССР.
/1983.
Ленинград:47 с.
7. Догель В.А. Паразитарные заболевания рыб. /1932.
М:
151с.
8.
Догель
В.А.
Паразитофауна
и
окружающая
среда.
Некоторые вопросыэкологии паразитов пресноводных рыб.
Основные проблемы паразитологиирыб. /1958. Ленинград: 954.
63
9.Доровских
Г.Н.,
Степанов
В.Г.
Каталог
паразитов
пресноводных рыб северо-востока Европейской части России.
Простейшие. Сыктывкар, 2015
10. Давыдов О.Н. Этюды о природе паразитизма. К., 2013
11. Исси И.В. Микроспоридии как тип паразитических
простейших. Микроспоридии. /1986. Ленинград: 6-136.
12. Ученые записки ЛГУ. Том 66. / Рига: 129-158.
13. Кеннеди К. Экологическая паразитология. /1978. Москва:
1-230.
14. Маркевич А.П. Методика и техника паразитологического
исследования рыб. / 1950. Киев: 24 с.1
15.
Маркевич
А.П.
Паразитофауна
пресноводных
рыб
Украинской ССР. /1951. Киев: 357 с.
16. Марченко А.М. Влияние трихотеценовыхмикотоксинов на
карпа.Труды зоологического института АН СССР. Вопросы
паразитологии и патологии рыб. Т.171. Л.1987. С.135-148.
17. Митенев В.К. Паразитические простейшие пресноводных
рыб Кольского севера, ПИНРО / 2002. Мурманск: 1-122.
18. Однокурцев В.А. Паразитофауна позвоночных животных
Якутии. Новосибирск, 2015,
19. Определитель паразитов пресноводных рыб. Т. 1. АН
СССР ЗИН. / 1984. Ленинград: 431 с.
20. Определитель паразитов пресноводных рыб. АН СССР
ЗИН. / 1985. Ленинград: 1- 128 с.
21. Определитель паразитов пресноводных рыб. АН СССР
ЗИН. / 1987. Ленинград: 1- 583 с.
22.Петрушевский Г.К. Изменение паразитофауны рыб при их
акклиматизации. Основные проблемы паразитологии рыб. /
Ленинград: 256-266. Полянский Ю.И. (под редакцией), 1969,
64
Эколого-паразитологические исследования на озере Селигер.
Ленинград: 1-223.
23. Пугачев О.Н. Паразиты пресноводных рыб Северо-востока
Азии. / 1984 АН СССР. ЗИН, Ленинград: 1-155.
24. Семенова Н.Н. и др. Паразитофауна и болезни рыб
Каспийского моря. Астрахань,
25.
Стрелков
Ю.А.,
Закономерности
формирования
паразитофауны молоди пресноводных рыб. / Чернышова Н.Б.,
Юнчис О.Н. 1981. АН СССР. Труды ЗИН. Т. 108. 23-30.
26. Стрелков Ю.А. Регуляция численности паразитов в
озерных
животных.
экосистемах
Проблемы
у
разных
экологии
групп
паразитических
паразитов
рыб.
/
1983.
Ленинград:3-16.
27. Успенская А.В. Миксоспоридии. Цитология. Ленинград.
Успенская
А.В.
1985.
Жизненный
цикл
и
физиология
миксоспоридий. VII Всесоюзное совещание по паразитам и
болезням рыб. Тезисы докладов. /1984. Ленинград: 145.
28.Эктопаразиты. Фауна, биология и практическое значение.
Вып. 1. М., 1949,
29.Эктопаразиты. Фауна, биология и практическое значение.
Вып. 2. М., 1950,
30.Юнчис О.Н., Чернышова Н.Б. Некоторые данные по
биологии миксоспоридий с молоди рыб озера Врево. Известия
ГосНИОРХ. Т. 119. / 1977. Ленинград: 134-141.
31. Юнчис О.Н., Влияние высших водных растений на
паразитофауну
молоди
плотвы.
Проблемы
экологии
паразитов рыб. / Нестеренко В.Н., Кононов А.А., Холова А.Н.
1983. Ленинград:39-48.
65
32.
Ятусевич,
медицинской
А.И.
Справочник
паразитологии
/
по
А.И.
ветеринарной
Ятусевич.
-
и
М.:
Техноперспектива, 2011.
33.
Ятусевич,
А.И.
Ветеринарная
и
медицинская
паразитология:
(Энциклопедический
справочник)/А.И.
Ятусевич,
И.В.
Рачковская, В.М.Каплич. – М.: Медицинская литература,
2001.
66
Приложения
Сравнительная таблица зараженности рыб Карася
серебряного (Carassiuscarassius)
№
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
Название вида
Место
отлова
Пол
20162017
20182019
20162017
20182019
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
о.Каме
нник
р.Кост
рома
о.Каме
нник
201
6201
7
Возраст Наличи
е
парази
та
201
8201
9
201
6201
7
201
8201
9
201
6201
7
201
8201
9
♀
♂
3
2
-
+
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♂
3
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♂
4
3
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♂
3
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
1
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
моа
♀
♀
4
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
5
2
+
+
о.Каме
р.
♀
♀
4
2
-
+
67
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
нник
о.Каме
нник
Костр
моа
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
1
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
моа
♀
♀
3
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
5
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
5
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
1
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
5
1
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
1
+
-
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
1
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
-
-
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
1
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
1
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
5
2
-
+
68
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
Карась
серебря
ный
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
+
-
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
-
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
3
2
+
+
о.Каме
нник
р.
Костр
ома
♀
♀
4
2
-
+
Размерные характеристики Карася серебряного
(Carassiuscarassius)
2016-2017гг
№
Lте
ла
Lтел
а до
хвос
та
L
гол
ов
ы
L
гла
за
L 1ого
луча
спинн
иго
плавн
ика
Расc-е
от рыла
до
спинног
о
планик
а
Расcе от
рыла
до
груд
ного
плав
ника
Расc-е
от
рыла
до
аналь
ного
плавн
ика
Расc-е
от
грудн
ого до
брюш
ного
плавн
ика
L от
брюшно
го до
анальн
ого
плавни
ка
L
анал
ьног
о
плав
ника
Lот
пере
днег
о
края
анал
ьног
о
плав
ника
до
сред
ней
лини
M
М
без
огра
нов
69
1
2
3
4
5
6
7
8
9
1
0
1
1
1
2
1
3
1
4
1
5
1
6
1
7
1
8
1
9
2
0
2
1
2
2
2
3
2
4
2
5
2
6
2
7
2
8
2
9
3
0
3
1
3
2
3
3
3
21
25,
1
26,
4
27,
8
26,
4
25,
6
26,
7
28,
3
26,
6
27,
4
27,
7
25,
1
23,
4
26,
3
26,
1
25,
6
24,
5
26,
7
26,
7
25,
4
27,
2
26,
3
26,
1
24,
3
24,
8
27,
1
25,
6
25,
9
26,
9
26,
5
26,
4
24,
7
25,
8
26,
18,1
18,7
4,9
5,9
1
1
4
4
7,1
9,4
4,5
5,2
9,9
16,4
3,9
4,3
5,6
7,5
2
2,7
и
4,2
5,2
304
368
213
278
21,7
5,7
1
3,2
10,3
5,5
16,3
4,8
6,8
2,5
5,1
591
267
22,3
5,3
1,1
3,4
11,4
5,4
17,2
5,1
7,1
2,5
5,4
416
290
20,3
5,7
1,1
3,5
10,4
5,1
16,1
3,9
7,1
2,7
5,5
378
302
20
5,6
1,1
3,3
10,2
5,1
15,3
4,1
6,8
2,5
5,2
346
248
20,6
5,8
1
3,1
10,6
5,1
15,7
4,3
7,6
2,5
5,6
398
281
21,6
6,1
1,1
3,3
10,4
5,4
16,8
4
7,1
2,8
5,5
424
303
20,7
5,3
1
3,7
10,3
5,3
16,2
4,1
7,4
2,6
5,1
367
261
21,4
5,8
1,1
4,3
10,4
5,5
16,1
3,9
7,3
2,7
5,3
401
280
20,9
5,7
1,1
2,2
10,8
5,4
16,1
5,1
7,6
2,4
5,2
432
300
20,4
5,6
1
3
10,1
5,4
14,9
4,1
6,5
2,3
5,2
345
243
19,6
4,3
1
2,9
8,7
3,4
14,8
4,1
4,5
2,4
5,3
294
197
20,6
5,9
1
3,4
10,6
5,5
15,7
3,8
7,6
2,4
5,2
387
276
20,6
5,4
1,1
3,5
10,6
5,6
16,2
3,4
7,1
2,1
5,3
392
287
20,5
4,9
1,1
3,2
10,3
5,4
16,1
4,1
6,3
2,5
5,3
365
257
20,1
4,5
1,1
3,3
9,8
4,5
16,2
4,2
5,3
2,5
5,1
299
198
20,7
5,4
1
3,1
10,4
5,5
16,2
4,2
6,4
2,6
5,2
401
311
20,7
5,6
1
3,2
10,4
5,6
16,1
4,3
6,8
2,6
5,3
389
298
20,7
5,4
1,1
3,2
10,1
5,3
16,1
3,9
7,2
2,7
5,2
364
266
20,8
6,2
1,1
3,7
10,9
5,3
15,9
3,8
7,1
2,4
5,2
413
323
20,4
4,5
1
3,6
10,3
5,4
15,5
4,1
4,3
2,6
5,6
384
259
20,1
5,2
1,1
3,6
9,9
5,1
16,2
4,1
5,7
2,4
5,1
345
258
20,3
4,6
1
3,3
9,5
5,3
16,1
4,1
6,2
2,7
5
278
198
19,9
4,9
1,1
3,3
10
5,3
16,1
3,6
6,2
2,3
4,9
312
234
21,3
6,3
1,1
3,5
10,9
5,4
15,9
4,5
6,6
2,4
5,5
406
322
20,3
5,4
1
3,3
10,1
5,4
15,8
4,1
5,8
2,4
5,2
345
256
20,1
5,5
1
3,2
10,1
5,5
16,3
4,1
5,3
2,5
5,2
385
265
20,7
5,5
1
3,3
10,3
5,5
16,1
4,3
6,1
2,1
5,4
398
278
20,3
5,7
1
3,3
10,5
5,4
16
4,9
6,1
2,3
5,2
381
234
19,9
5,4
1,1
3,2
10,1
5,3
16,3
5,1
6
2,4
5,1
351
242
18,9
4,3
1
3,1
9,3
5,3
16,1
3
5,9
2,4
5,1
295
201
20,8
4,8
1,1
3,2
10,1
5,3
16,1
4,2
6,1
2,3
5,3
297
193
20,6
5,5
1
3,2
10,3
5,4
15,5
4,9
5,6
2,4
5,2
379
295
70
4
3
5
3
6
3
7
3
8
3
9
4
0
7
26,
6
25,
9
24,
5
25,
6
25,
8
24,
7
20,2
5,4
1,1
3,3
10,4
5,3
15,9
3,5
7,1
2,3
5,1
357
276
20,2
5,7
1
3,3
10,5
5,3
16,1
4,1
4,7
2,1
5,2
389
285
19,7
4,8
1,1
2,8
10
5,1
15,7
4,2
5,7
2,7
4,7
332
245
20,7
4,9
1,1
3,2
10,5
5,1
15,8
3,7
7,1
2,4
5,3
356
261
20,5
5,3
1
2,9
10,1
5,2
16,2
4,1
5,6
2,3
5,2
378
267
19,9
4,6
1,1
2,7
10
5,1
15,5
3,5
5,1
2,1
4,7
335
254
Размерные характеристики Карася серебряного (Carassiuscarassius) на
1 участке р. Кострома (п. Прибрежный)
№
Lте
ла
Lтел
а до
хвос
та
L
гол
ов
ы
L
гла
за
L 1ого
луча
спинн
иго
плавн
ика
Расc-е
от рыла
до
спинног
о
планик
а
Расcе от
рыла
до
груд
ного
плав
ника
Расc-е
от
рыла
до
аналь
ного
плавн
ика
Расc-е
от
грудн
ого до
брюш
ного
плавн
ика
L от
брюшно
го до
анальн
ого
плавни
ка
L
анал
ьног
о
плав
ника
1
2
19
17,
1
18,
4
17,
8
18,
4
18,
6
18,
7
16,
3
17,
6
18,
4
18,
7
16,
1
17,
4
17,
3
18,
1
18,
6
17,
5
18,
16,1
15,7
2,9
3,9
1
1
2
2
4,1
5,4
2,2
3,2
6,9
10,4
1,9
2,3
2,6
2,5
15,7
3,7
1
1,2
6,3
2,5
11,3
2,8
14,3
3,3
1
2,4
6,4
2,4
12,2
15,3
3,7
1
1,5
5,4
3,1
14,5
3,6
1
1,3
5,2
15,6
2,8
1
1,1
13,6
3,1
1
13,7
2,3
14,4
3
4
5
6
7
8
9
1
0
1
1
1
2
1
3
1
4
1
5
1
6
1
7
1
M
М
без
огра
нов
2
1,7
L от
пере
днег
о
края
анал
ьног
о
плав
ника
до
сред
ней
лини
и
2,2
2,2
245
178
134
99
2,8
1,5
2,1
161
95
1,1
3,1
1,5
2,4
157
95
11,1
1,9
3,1
1,7
2,5
152
94
2,1
10,3
1,1
3,8
1,5
2,2
149
89
5,6
2,1
10,7
2,3
2,6
1,5
2,6
174
93
1,3
5,4
3,4
10,8
2
2,1
1,8
2,5
143
86
1
1,7
5,3
2,3
10,2
2,1
3,4
1,6
2,1
156
87
2,8
1
1,3
5,4
2,5
10,1
1,9
3,3
1,7
2,3
165
94
20,9
3,7
1
1,2
5,8
2,4
10,1
2,1
3,6
1,4
2,2
132
76
14,4
3,6
1
1
5,1
2,4
10,9
2,1
3,5
1,3
2,2
142
91
14,6
3,3
1
1,9
4,7
1,4
11,8
2,1
2,5
1,4
2,3
153
78
14,6
3,9
1
1,4
5,6
1,5
10,7
1,8
2,6
1,4
2,2
138
78
15,6
2,4
1
1,5
4,6
3,6
10,2
1,4
2,1
1,1
2,3
161
86
13,5
2,9
1
1,2
3,3
2,4
10,1
2,1
3,3
1,5
2,3
159
87
14,1
3,5
1
1,3
4,8
2,5
10,2
2,2
2,3
1,5
2,1
147
76
14,7
3,4
1
1,1
5,4
2,5
10,2
2,2
2,4
1,6
2,2
143
75
71
8
1
9
2
0
7
17,
7
16,
4
15,7
2,6
1
1,2
5,4
2,6
10,1
2,3
2,8
1,6
2,3
141
73
13,7
3,4
1
31,2
5,1
2,3
10,1
1,9
3,2
1,7
2,2
144
71
Размерные характеристики Карася серебряного
(Carassiuscarassius) на 2 участке р. Кострома (с. Яковлевское)
№
Lте
ла
Lтел
а до
хвос
та
L
гол
ов
ы
L
гла
за
L 1ого
луча
спинн
иго
плавн
ика
Расc-е
от рыла
до
спинног
о
планик
а
Расcе от
рыла
до
груд
ного
плав
ника
Расc-е
от
рыла
до
аналь
ного
плавн
ика
Расc-е
от
грудн
ого до
брюш
ного
плавн
ика
L от
брюшно
го до
анальн
ого
плавни
ка
L
анал
ьног
о
плав
ника
1
20,
1
16,
1
17,
2
17,
3
17,
5
18,
7
18,
4
15,
3
16,
6
17,
8
18,
4
16,
4
17,
2
17,
5
16,
3
17,
2
16,
8
18,
3
17,
1
17,
8
16,8
1,9
1
1,9
5,1
1,6
4,9
1,1
2,1
14,6
2,9
1
1,7
4,4
2,6
6,4
1,3
15,7
2,7
1
1,3
5,4
1,4
9,3
14,3
2,3
1
2,1
4,3
2,3
14,3
2,7
1
1,1
4,9
15,5
3,6
1
1,2
14,6
2,8
1
12,6
3,1
12,7
2
3
4
5
6
7
8
9
1
0
1
1
1
2
1
3
1
4
1
5
1
6
1
7
1
8
1
9
2
0
M
М
без
огра
нов
1,5
L от
пере
днег
о
края
анал
ьног
о
плав
ника
до
сред
ней
лини
и
1,2
167
86
1,9
1,7
1,1
143
75
1,6
1,9
1,2
1,1
132
67
8,2
1,1
2,1
1,3
1,2
143
69
2,1
9,1
1,3
2,1
1,5
1,3
138
68
4,2
2,6
9,3
1,1
2,6
1,4
1,1
133
64
2,1
4,6
2,3
8,7
1,3
1,9
1,5
1,2
148
81
1
1,1
3,4
2,4
8,8
1,2
1,1
1,2
1,2
139
65
2,4
1
1,2
5,1
2,6
7,9
1,1
1,4
1,4
1,1
132
61
13,4
2,5
1
1,6
5,4
1,5
7,1
1,3
2,3
1,2
1,1
141
67
15,9
3,3
1
1,8
4,8
1,9
7,9
1,2
2,6
1,5
1,2
132
76
13,4
3,3
1
1,3
4,8
1,4
6,9
1,2
2,6
1,3
1,4
146
84
13,6
3,2
1
1,2
4,1
1,9
8,8
2,1
2,4
1,4
1,1
123
65
13,6
3,2
1
1,1
4,6
2,5
6,7
1,4
2,3
1,4
1,1
136
66
12,6
2,1
1
1,3
3,6
2,6
8,2
1,1
2,8
1,2
1,1
145
71
12,5
2,4
1
1,2
4,3
2,4
7,1
1,3
2,3
1,4
1,3
128
68
13,9
2,4
1
1,2
3,8
3,1
6,2
1,2
2,7
1,3
1,1
133
66
14,7
1,4
1
1,1
4,4
1,5
8,2
1,2
2,2
1,2
1
136
71
14,8
2,2
1
1,2
3,7
1,6
7,5
1,3
2,1
1,2
1,1
142
69
12,9
2,4
1
1,2
3,1
1,3
8,1
1,1
1,2
1,3
1,1
134
67
72
Размерные характеристики Карася серебряного оз. Каменик
2018-2019гг
№
L
тела
Lтел
а до
хвос
та
L
голо
вы
Lг
ла
за
L1ог
о
луч
а
спи
нни
го
пла
вни
ка
Расcе от
рыла
до
спин
ного
план
ика
Расcе от
рыла
до
грудн
ого
плавн
ика
Расс
-е от
рыл
а до
анал
ьног
о
плав
ника
Расс
иеот
груд
ного
до
брю
шно
го
плав
ника
Lот
брю
шно
го
до
ана
льн
ого
пла
вни
ка
L
ана
льн
ого
пла
вни
ка
1
25,1
17,2
4,5
1,1
3,1
8,2
4,1
15,3
3,6
4,5
1,5
Lот
пер
едн
его
кра
я
ана
льн
ого
пла
вни
ка
до
сре
дне
й
лин
ии
3,2
2
24,2
16,5
4,2
1,1
2,5
9,3
3,9
15,2
3,8
6,3
2,1
4,1
3
25,4
18,6
4,7
1,1
3
9,3
5,5
14,1
4,1
6,4
2,4
3,1
4
26,7
19,3
4,3
1,1
2,4
10,4
4,7
15,6
4,5
5,9
1,7
4,4
5
26,3
18,9
4,8
1,1
2,5
8,7
5.3
15,1
3,9
7,1
2,2
5,2
6
26,4
19,7
4,8
1,1
3,3
9,2
4,9
15,2
4,1
6,3
1,5
3,2
7
25,4
18,4
5,3
1,1
2,1
9,6
5,1
14,7
4,2
5,5
2,5
5,4
8
26,1
19,6
5,2
1
2,3
10,4
3,4
15,8
3,8
5,9
2,2
5,5
9
26,5
18,7
4,9
1,1
2,5
10,5
4,8
15,4
4,2
4,8
2,6
4,1
1
0
1
1
1
2
1
3
1
4
1
5
1
6
1
7
1
8
26,3
19,9
4,7
1
2,3
9,8
4,5
14,8
3,9
6,1
1,9
4,3
26,7
18,9
4,9
1,1
3,2
10,3
5,3
15,9
5,1
5,6
2,1
5,2
25,3
18,3
4,7
1,1
3,5
10,2
5,5
15,4
4,2
6,5
2,3
5,5
24,3
17,7
4,8
1,1
2,6
9,5
4,4
14,8
4,1
5,5
1,5
5,4
26,3
19,5
5,8
1,1
3,3
10,7
3,7
15,7
3,6
6,4
1,4
4,2
25,1
18,6
5,9
1
2,4
9,6
4,1
15,2
3,4
6,1
2,2
4,3
26,5
19,5
5,9
1
2,9
8,8
5,2
15,4
3,7
5,3
2,1
5,3
25,6
18,6
5,4
1,1
3,5
10,1
5,1
15,3
4,2
5,4
1,5
4,1
25,5
19,6
4,8
1,1
3,4
8,7
4,2
15,2
4,4
5,4
1,6
5,2
M
М
без
огр
ан
ов
34
9
36
1
36
5
39
6
36
2
35
4
29
3
41
4
36
5
36
5
38
9
41
5
34
2
35
7
34
2
38
5
26
7
37
5
21
3
24
8
23
7
29
7
31
7
23
3
20
4
32
7
22
3
25
9
28
1
32
1
26
8
27
6
28
7
25
7
19
8
31
1
73
1
9
2
0
2
1
2
2
2
3
2
4
2
5
2
6
2
7
2
8
2
9
3
0
3
1
3
2
3
3
3
4
3
5
3
6
3
7
3
8
3
9
4
0
27,1
19,9
5,2
1,1
2,8
10,4
4,9
15,5
3,9
5,8
2,4
4,3
25,4
18,4
5,3
1
3,7
9,1
4,5
15,3
3,7
6,2
2,7
4,2
26,5
19,8
5,6
1,1
2,7
10,3
5
14,6
3,5
5,1
1,7
5,2
25,5
18,4
5,4
1,1
2,6
10,1
4,7
14,1
4,1
4,3
2,2
3,6
25,6
18,9
5,7
1
2,6
9,9
5,1
15,2
4,3
6,3
2,1
4,1
25,3
19,6
5,5
1,1
2,8
10,5
4,9
15,1
4,2
5,2
1,7
4,7
25,4
18,9
3,9
1,1
3,5
9,3
5,1
16,4
3,9
6,1
2,3
4,3
26,2
18,4
5,3
1,1
3,2
9,9
5,1
15,3
4,1
4,6
1,4
5,3
26,4
19,3
5,7
1,1
2,1
9,8
3,5
14,8
4,3
4,6
2,3
4,2
25,6
18,1
5,6
1,1
2,9
9,9
5,1
15,3
4,1
5,3
2,3
6,2
25,7
18,5
5,5
1,1
3,1
10,1
4,7
15,1
4,1
6,1
2,5
3,4
24,6
17,4
4,7
1,1
3,2
10,4
4,5
15,7
3,5
5,1
2,6
5,2
25,7
18,8
4,9
1,1
2,4
10,3
5,1
14,3
3,9
5,9
2,4
4,1
24,6
17,7
4,8
1,1
2,9
10,3
5,3
14,2
4,2
5,1
2,7
3,7
26,7
19,6
5,1
1
3,1
9,1
4,8
14,1
3,4
4,3
2,3
4,7
25,6
18,5
5,3
1
3,6
8,8
5,1
15,1
3,7
5,5
2,3
4,1
26,7
18,3
5,4
1
2,7
9,9
4,9
14,5
4,7
7,1
2,4
5,1
24,8
17,5
5,1
1,1
3,3
10,1
5,2
15,8
5,1
5,7
2,5
5,3
26,4
18,6
5,3
1,1
3,1
8,9
5,2
14,9
3,9
6,7
2,6
4,2
26,5
18,5
4,9
1,1
3,1
10,2
5,2
14,7
3,6
5,1
2,3
4,3
26,7
19,4
4,3
1,1
2,8
9,1
4,7
15,8
4,8
5,1
2,6
5,2
25,6
17,7
5,2
1
2,3
9,5
4,8
15,3
4,1
5,5
2,4
4,8
38
9
35
5
37
8
27
8
38
4
38
5
36
6
41
2
37
6
33
2
35
9
38
1
35
1
37
1
40
2
39
2
35
5
32
9
34
7
35
2
32
8
36
1
29
8
26
6
27
1
17
4
24
2
25
9
28
2
34
1
25
6
21
3
24
2
22
2
24
2
25
3
32
7
28
3
27
6
24
2
24
5
25
5
22
7
23
2
74
Отзывы:
Авторизуйтесь, чтобы оставить отзыв